Введение
Варикозная болезнь нижних конечностей (ВБНК) является широко распространенной сосудистой патологией [1], которая может привести к серьезному ухудшению качества жизни больного [2]. Совершенствование малоинвазивных методов лечения ВБНК вслед за научно-техническим прогрессом способствует сокращению числа послеоперационных осложнений, а также повышает доверие пациентов к лечению [3]. Однако даже набирающие популярность методы гемодинамической коррекции сами по себе не всегда позволяют достичь желаемого результата, несмотря на тщательный отбор пациентов. Подход, основанный на совместном исследовании клинических и молекулярно-генетических данных, способен объяснить причину послеоперационных рецидивов, не связанных с тактическими или техническими ошибками лечения [4]. Тот факт, что исследователи метода ASVAL связывают протяженность рефлюкса с частотой его послеоперационного рецидива [5], приводит к предположению, что связанные с рефлюксом патологические изменения в венозной стенке способны уменьшать шанс успешного исхода лечения. Вышеперечисленное дает возможность использовать протяженность рефлюкса в качестве признака, определяющего принадлежность пациентов к одной из экспериментальных групп.
Предварительные исследования [6] показали, что в группах пациентов с разной протяженностью патологического рефлюкса в большой подкожной вене (БПВ) дифференциально экспрессируются гены, относящиеся к состоянию цитоскелета: ACTA1 и PLXNA4. Участие цитоскелета в развитии заболеваний объясняется его функциями, связанными не только с опорой и формообразованием, но и с обеспечением путей внутриклеточного транспорта, подвижностью клеток и делением. Эта структура является совокупностью микротрубочек, актиновых и промежуточных филаментов, а также связанных с ними белков [7]. Одним из самых важных структурных белков цитоскелета является актин, который участвует в переносе везикул, процессах деления, миграции клеток и ремоделирования хроматина [8]. Актин представлен несколькими изоформами с уникальными клеточными функциями [9]. Основной функцией гена скелетного актина альфа-1 (ACTA1) является обеспечение сокращения скелетной мускулатуры [10], что и определяет его преимущественную экспрессию в скелетных мышцах. Мутации в ACTA1 могут приводить к немалиновой миопатии [11], а нокаут этого гена у мышей летален [12]. Интересно, что нарушение нормального для клетки соотношения экспрессии изоформ актина часто обнаруживается при злокачественной трансформации клеток [8].
Плексин-А4 (PLXNA4) является корецептором семафоринов класса 3, необходимым для передачи сигналов с последующим ремоделированием цитоскелета [13]. Показано, что экспрессия PLXNA4 в эндотелии сосудов снижается при воспалениях, что может быть одной из причин атеросклероза из-за изменения морфологии эндотелиоцитов и их барьерной функции [14]. Его наиболее изученным внеклеточным лигандом является семафорин-3А (SEMA3A), связывающийся с PLXNA4 в комплексе с нейропилином [15], который выполняет множество лиганд-опосредованных функций в сосудах, нейронах и опухолях [16]. Было показано, что уровень белка SEMA3A был повышен в водянистой влаге пациентов с окклюзией вен сетчатки [17].
Цель исследования — изучение экспрессии на уровне мРНК генов ACTA1, PLXNA4 и SEMA3, связанных с ремоделированием актинового филамента, в варикозно измененных (ВВ) и неизмененных (НВ) венозных стенках пациентов с разной протяженностью патологического рефлюкса в БПВ.
Настоящая работа является валидацией предыдущего исследования (выполненного методом массового секвенирования РНК) [6] с помощью ген-кандидатного подхода, осуществляемого с применением метода ПЦР в реальном времени на независимой выборке пациентов.
Материал и методы
Сбор образцов венозных стенок и формирование экспериментальных групп
Исследование было одобрено Этическим комитетом Центра новых медицинских технологий Института химической биологии и фундаментальной медицины (ЦНМТ ИХБФМ) СО РАН (протокол №03 от 06.10.19) и осуществлено в соответствии с принципами, изложенными в Хельсинкской декларации Всемирной медицинской ассоциации. Объектом исследования являлись замороженные парные сегменты ВВ и НВ вен пациентов с ВБНК. Образцы вен, информационные согласия и анкеты пациентов были собраны на базе ЦНМТ ИХБФМ СО РАН в период с марта по ноябрь 2021 г. Критериями исключения пациентов служили посттромботические изменения глубоких вен нижних конечностей и отсутствие видимого варикозного расширения вен. Характеристика пациентов, участвующих в исследовании, приведена в табл. 1.
Таблица 1. Характеристики выборки пациентов
Параметр |
Рефлюкс до н/3 бедра |
Рефлюкс до н/3 голени |
p1 |
||
медиана |
диапазон |
медиана |
диапазон |
||
Возраст, годы |
52,5 |
28—73 |
50 |
28—68 |
0,48 |
Возраст манифестации ВБНК, годы |
40 |
20—40 |
30 |
20—40 |
0,22 |
Продолжительность ВБНК, годы |
19,5 |
3—33 |
21 |
3—30 |
0,91 |
Индекс массы тела, кг/м2 |
28,65 |
18,06—43,06 |
26,30 |
18,52-39,26 |
0,28 |
Мужчины, абс. |
3 |
4 |
0,69 |
||
Женщины, абс. |
10 |
9 |
|||
C22, абс. |
7 |
7 |
0,76 |
||
C32, абс. |
2 |
4 |
|||
C42, абс. |
4 |
2 |
Примечание. 1 — согласно критерию Манна—Уитни; 2 — клинический класс по системе классификации CEAP.
Принцип деления пациентов на группы основывался на исследовании, в котором авторы связали протяженность рефлюкса в БПВ с частотой его рецидивов после проведенной веносохраняющей операции ASVAL [5]. Группы пациентов были сформированы на основе данных о протяженности патологического рефлюкса в БПВ: 1) с протяженностью рефлюкса до нижней трети бедра (до н/3 бедра, 13 пациентов) и 2) с протяженностью рефлюкса до нижней трети голени (до н/3 голени, 13 пациентов) (см. табл. 1). Протяженность рефлюкса определяли с помощью ультразвукового ангиосканирования вен.
Формирование групп/подгрупп для статистической обработки данных описано в пункте «Статистический анализ» ниже по тексту.
Выделение РНК и обратная транскрипция
Для сохранения профиля экспрессии генов на уровне РНК образцы вен помещали в жидкий азот сразу после извлечения. До момента выделения РНК сегменты вен хранили при температуре –80 °C. Тотальная РНК была выделена из гомогенизированных венозных стенок методом фенол-хлороформной экстракции, предложенным P. Chomczynski и N. Sacchi (2006) [18]. Качество и количество выделенной РНК проверяли с помощью электрофореза в агарозном геле и спектрофотометрически.
Для получения кДНК (комплементарной ДНК) 300 нг РНК каждого образца подвергали реакции обратной транскрипции согласно протоколу, представленному в работе [19].
ПЦР в реальном времени
Уровень экспрессии целевых генов определяли с помощью ПЦР в реальном времени. Для этого был выполнен дизайн систем прямого и обратного праймеров на кДНК целевых генов (табл. 2) с использованием программ OligoAnalyzer и Annhyb222, и инструмента BLAST.
Таблица 2. Системы праймеров на кДНК целевых генов
Название гена |
Прямой праймер |
Обратный праймер |
ACTA1 |
5’-CTACCCGCCCAGAAACTAGA-3’ |
5’-GAGCCATTGTCGCACAC-3’ |
PLXNA4 |
5’-GCAGCAGTGCGCTCTTAAC-3’ |
5’-AGACATATGCGATGACAGACGT-3’ |
SEMA3A |
5’-ATGTTTATCGGAACAGATGTTG-3’ |
5’-CTTCCAGCAGAACCTCTTCTA-3’ |
Каждая реакционная смесь, кроме контроля ПЦР (без матрицы) и контроля обратной транскрипции (без обратной транскриптазы), содержала кДНК в количестве, соответствующем 12,5 нг РНК. Состав реакционной смеси соответствовал протоколу, указанному в работе [19].
Амплификацию проводили в термоциклере CFX-96 (Bio-Rad, США) следующим образом: денатурация кДНК при температуре 96 °C в течение 3 мин, затем 35 циклов при режимах, специфичных системам праймеров (табл. 3) со съемом флуоресцентного сигнала на канале SYBR.
Таблица 3. Температурный режим амплификации продуктов ПЦР с системами праймеров на кДНК целевых генов
Этапы ПЦР |
Плавление цепей |
Отжиг праймеров |
Элонгация |
Детекция сигнала |
Температура, °C |
96 |
58—65* |
72 |
75—82* |
Время, с |
6 |
10 |
10 |
5 |
Примечание. * — диапазон отображает разброс значений температуры между разными системами праймеров.
Каждый образец оценивали в трех технических повторах, при стандартном отклонении значения разницы в пороговых циклах трипликатов более 0,5 выбившийся повтор исключали из анализа. Стандартную кривую для каждой системы праймеров строили с помощью кратных разведений образца кДНК, приготовленного из венозного сегмента в той же параллели, что и исследуемые образцы.
Значение количества мРНК целевого гена, полученное посредством детекции количества кДНК, нормализовывали на значения количеств мРНК генов домашнего хозяйства ACTB и GAPDH [20] в этих же образцах. Таким образом получали нормализованное значение экспрессии генов (НЗЭГ), т.е. относительное значение количества транскриптов изучаемых генов в каждом образце (ВВ или НВ), полученное методом построения калибровочной кривой и нормализованное на значение количеств транскриптов генов домашнего хозяйства (по количеству клеточного материала) в тех же образцах. Такие нормализованные значения являются отображением относительного уровня экспрессии изучаемых генов и, следовательно, не имеют единиц измерения.
Статистический анализ
Всего в исследовании участвовали 26 пациентов с ВБНК, которые были разделены на две группы по протяженности рефлюкса в БПВ. Вследствие забора у каждого пациента варикозно измененного и неизмененного сегментов венозной стенки сформированы подгруппы ВВ и НВ, соответственно. С помощью пакетов программ qBase+, Microsoft Excel и Statistica были проведены следующие сравнения:
1. Попарное (26 пар ВВ-НВ от 26 пациентов) сравнение НЗЭГ в ВВ (случай) против НЗЭГ в НВ (контроль) от каждого пациента на всей выборке пациентов (рис. 1, а) проводили с помощью парного непараметрического критерия Вилкоксона. Полученные данные представлены в виде медиан парных отношений НЗЭГ в ВВ к НВ (Me(ВВ/НВ)), а также 95% доверительного интервала (ДИ) и p-value (p). Это сравнение проводили как дополнительное для выявления дифференциальной экспрессии генов в ВВ без учета влияния протяженности рефлюкса.
Рис. 1. Представление формирования групп/подгрупп для статистической обработки нормализованных значений экспрессии целевых генов.
До н/3 бедра (голени) — группа пациентов с протяженностью патологического рефлюкса до нижней трети бедра (голени); BBi (НВi) —нормализованное значение экспрессии гена (НЗЭГ) в варикозно измененном (варикозно неизмененном) сегменте венозной стенки i-го пациента; ВВi/НВi — отношение НЗЭГ в варикозно измененном сегменте венозной стенки к таковой в варикозно неизмененном сегменте у i-го пациента; * — согласно парному критерию Вилкоксона; ** — согласно непарному критерию Манна—Уитни.
2. Попарное (по 13 пар ВВ-НВ от 13 пациентов в каждой из двух групп) сравнение НЗЭГ в ВВ (случай) против НЗЭГ в НВ (контроль) в каждой из двух групп пациентов (см. рис. 1, б) выполняли с помощью парного непараметрического критерия Вилкоксона. Полученные данные представлены в виде медиан парных отношений НЗЭГ в ВВ к НВ (Me(ВВ/НВ)), а также 95% доверительного интервала (ДИ) и p-value (p) для каждой из двух групп пациентов.
3. Сравнение отношений НЗЭГ в ВВ к НЗЭГ в НВ (внутри пары от каждого пациента) между двумя группами пациентов с разной протяженностью рефлюкса (см. рис. 1, в) проводили с помощью непарного критерия Манна—Уитни (13 значений отношений из одной группы против 13 из другой). Полученные данные представлены в виде p-value (p).
4. Дополнительное исследование разницы между двумя группами пациентов в экспрессии гена PLXNA4 осуществляли отдельно в варикозно неизмененных сегментах вен, а также в варикозно измененных с целью выявления закономерностей изменения уровня экспрессии этого гена в каждой из подгрупп (ВВ или НВ) в зависимости от протяженности патологического рефлюкса (рис. 1, г). Дополнительный анализ проводили исходя из предположения о возможной роли изменения экспрессии PLXNA4 в НВ при разной протяженности рефлюкса, основанного на данных вышеперечисленных сравнений. Сравнение НЗЭГ в НВ (или ВВ) между двумя группами пациентов выполняли с помощью непарного критерия Манна—Уитни (13 НЗЭГ в НВ (или ВВ) из одной группы против 13 НЗЭГ в НВ (или ВВ) из другой). Полученные данные представлены в виде p-value (p).
Критический уровень значимости (p) принимали равным 0,05.
Результаты
Скелетный актин альфа-1
1. Дифференциальная экспрессия гена ACTA1 в ВВ по сравнению с НВ на всей выборке пациентов не была выявлена: Me(ВВ/НВ)=1,3 (95% ДИ 0,65—2,60; p=0,37).
2. В группах пациентов с протяженностью рефлюкса до н/3 бедра и до н/3 голени результат анализа показал следующие значения: Me(ВВ/НВ)=0,87 (95% ДИ 0,66—1,15; p=0,38) и Me(ВВ/НВ)=1,94 (95% ДИ 0,47—8,12; p=0,13) соответственно (рис. 2).
Рис. 2. Средние нормализованные значения экспрессии гена ACTA1 в группах пациентов с разной протяженностью патологического рефлюкса в БПВ.
Графики получены с помощью пакета программ qBase+: столбцы отображают медиану значений экспрессии гена ACTA1, нормализованных на значения экспрессии генов ACTB и GAPDH; «усы» показывают разброс значений; p* — согласно критерию Манна—Уитни; НЗЭГ — нормализованное значение экспрессии гена; НВ — варикозно неизмененные сегменты вен; ВВ — варикозно измененные сегменты вен; ВВ/НВ — отношения НЗЭГ ACTA1 в ВВ к НВ (внутри пары от каждого пациента); н/3 – нижняя треть (бедра/голени), обозначение протяженности патологического рефлюкса в БПВ.
3. При сравнении отношений НЗЭГ ACTA1 в ВВ к НВ между группами пациентов было выявлено различие: у пациентов с протяженностью рефлюкса до н/3 голени отношения НЗЭГ в ВВ к НВ оказались выше по сравнению с таковыми у пациентов с протяженностью рефлюкса до н/3 бедра (p=0,03).
Таким образом, показана разница отношений НЗЭГ ACTA1 в ВВ к НВ между группами пациентов с разной протяженностью рефлюкса в БПВ.
Плексин-А4
1. На всей выборке пациентов при парных сравнениях ВВ с НВ не была показана дифференциальная экспрессия в ВВ гена PLXNA4 (Me(ВВ/НВ)=1,3; 95% ДИ 0,94—1,81; p=0,18).
2. При разделении пациентов на группы по протяженности венозного рефлюкса была показана дифференциальная экспрессия PLXNA4 в ВВ (она оказалась больше, рис. 3) в группе пациентов с рефлюксом до н/3 бедра (Me(ВВ/НВ)=1,76; 95% ДИ 1,04—2,97; p=0,04). В группе пациентов с рефлюксом до н/3 голени не было обнаружено разницы между парными ВВ и НВ: отношение НЗЭК в ВВ к НВ составляло 1,01 ( 95% ДИ 0,65—1,56; p=0,84).
Рис. 3. Средние нормализованные значения экспрессии гена PLXNA4 в группах пациентов с разной протяженностью патологического рефлюкса в БПВ.
Графики получены с помощью пакета программ qBase+: столбцы отображают медиану значений экспрессии гена PLXNA4, нормализованных на значения экспрессии генов ACTB и GAPDH; «усы» показывают разброс значений; p* — согласно парному критерию Вилкоксона; p** — согласно критерию Манна—Уитни; НЗЭГ — нормализованное значение экспрессии гена; НВ — варикозно неизмененные сегменты вен; ВВ – варикозно измененные сегменты вен; н/3 — нижняя треть (бедра/голени), обозначение протяженности патологического рефлюкса в БПВ.
3. При сравнении отношений НЗЭГ PLXNA4 в ВВ к НВ между группами пациентов с разной протяженностью рефлюкса не выявили разницу (p=0,43).
4. При сравнении групп пациентов с разной протяженностью рефлюкса наблюдали разницу в экспрессии PLXNA4 именно для НВ. На рис. 3 продемонстрировано увеличение экспрессии PLXNA4 в НВ в группе пациентов с рефлюксом до н/3 голени в 1,64 раза по сравнению с НВ в группе пациентов с рефлюксом до н/3 бедра (p=0,03). В то же время сравнение ВВ с ВВ в разных группах пациентов не показало значимой разницы в экспрессии этого гена (p=0,41).
Семафорин-3А
Исходя из того, что продукт гена SEMA3A является секретируемым во внеклеточное пространство белком, связывающимся с PLXNA4, уместно исследовать экспрессию его гена на уровне белка. Однако в данном исследовании было решено сначала провести анализ экспрессии гена SEMA3A на уровне мРНК.
1. На всей выборке пациентов не была показана разница в экспрессии SEMA3A между парными ВВ и НВ (Me(ВВ/НВ)=1,54; 95% ДИ 0,65—3,33; p=0,49).
2. В группе пациентов с рефлюксом до н/3 бедра при парных сравнениях ВВ с НВ показана дифференциальная экспрессия SEMA3A в ВВ — она оказалась выше (Me(ВВ/НВ)=1,58; 95% ДИ 0,65—3,33; p=0,02). В группе пациентов с рефлюксом до н/3 голени дифференциальная экспрессия данного гена не выявлена (Me(ВВ/НВ)=0,80; 95% ДИ 0,21—2,02; p=0,60).
3. При сравнении отношений НЗЭГ SEMA3A ВВ к НВ между группами пациентов с разной протяженностью рефлюкса не было установлено разницы (p=0,18).
Обобщение полученных данных об экспрессии генов ACTA1, PLXNA4 и SEMA3A у разных групп пациентов представлено в табл. 4.
Таблица 4. Результаты анализа экспрессии генов ACTA1, PLXNA4 и SEMA3A в группах исследования
Название гена |
Вся выборка |
Рефлюкс до н/3 бедра |
Рефлюкс до н/3 голени |
|||
Me(ВВ/НВ)1 (95% ДИ) |
p2 |
Me(ВВ/НВ)1 (95% ДИ) |
p2 |
Me(ВВ/НВ)1 (95% ДИ) |
p2 |
|
ACTA1 |
1,30 (0,65—2,60) |
0,37 |
0,87 (0,66—1,15) |
0,38 |
1,94 (0,47—8,12) |
0,13 |
p-value3: 0,03 |
||||||
PLXNA4 |
1,30 (0,94—1,81) |
0,18 |
1,76 (1,04—2,97) |
0,04 |
1,01 (0,65—1,56) |
0,84 |
p3=0,43 |
||||||
НВ (н/3 бедра) в сравнении с НВ (н/3 голени): p4=0,03 ВВ (н/3 бедра) в сравнении с ВВ (н/3 голени): p4=0,41 |
||||||
SEMA3A |
1,54 (0,65—3,33) |
0,49 |
1,58 (0,65—3,33) |
0,02 |
0,80 (0,21—2,02) |
0,60 |
p3=0,18 |
Примечание. 1 — обозначение медианы парных отношений НЗЭГ в ВВ к НВ от каждого пациента. Значение отображает направление регуляции экспрессии в ВВ (случай) относительно НВ (контроль): >1 означает повышенную экспрессию гена относительно НВ; <1 — пониженную; 2 — согласно парному критерию Вилкоксона. Проводили сравнение парных НЗЭГ в разных группах пациентов; 3 — согласно непарному критерию Манна—Уитни. Проводили сравнение отношений НЗЭГ ВВ к НВ (внутри пары от каждого пациента) между группами пациентов с разной протяженностью рефлюкса; 4 — согласно непарному критерию Манна—Уитни. Проводили сравнение НЗЭГ в НВ (или ВВ) между разными группами пациентов.
Обсуждение
Установление причин послеоперационных рецидивов способно помочь скорректировать тактику лечения для увеличения шансов благоприятных исходов лечения. Ранние исследования, которые основывались на сравнении экспрессии генов в варикозно измененных и неизмененных сегментах вен [21], были проведены без учета протяженности патологического рефлюкса. Мы предполагаем возможную связь протяженности рефлюкса в БПВ с патологическими молекулярными процессами, такими как ремоделирование цитоскелета клеток венозной стенки и, как следствие, ее ремоделирования.
Отличающийся от нормального фенотип клеток венозной стенки при ВБНК обусловлен ремоделированием актинового цитоскелета как минимум в процессах изменения клеточной формы и миграции [8]. Исследователи обнаружили эффект компенсации сдвига экспрессии одной изоформы актина другой, что сохраняет общее количество актина в клетке на одном уровне [22]. Таким образом, при изменении экспрессии одной изоформы актина компенсаторные механизмы сдвигают экспрессию других изоформ, что может приводить к нетипичному для клетки соотношению изомеров актинового филамента. Раннее исследователи уже показали увеличение экспрессии гена сердечного актина — ACTC1 — при ВБНК [20, 23], который может служить компенсацией нарушений ACTA1 [24].
В настоящем исследовании показано, что отношения экспрессии ACTA1 в ВВ к НВ у пациентов с ВБНК отличаются в группах пациентов с разной протяженностью рефлюкса. Как видно из рис. 2, в группе пациентов с протяженностью рефлюкса до н/3 бедра наблюдается тенденция к понижению экспрессии ACTA1 в ВВ по сравнению с НВ, а в группе с рефлюксом до н/3 голени, наоборот, отмечается тенденция к повышению экспрессии этого гена в ВВ, что может указывать на вероятную разнонаправленность в экспрессии. Полученные данные указывают на процессы ремоделирования актинового цитоскелета, которые ассоциированы с протяженностью рефлюкса. Пока сложно сказать, как именно эти события связаны между собой, однако можно предполагать связь между динамикой изменения изомерного состава актинового филамента и регуляцией ремоделирования цитоскелета посредством сигналов от рецептора PLXNA4 [25]. Функции гена этого рецептора связывают с развитием нервной системы [26], а также с состоянием эндотелиоцитов и моноцитов, нарушение которого способствует атеросклерозу [14]. В настоящем исследовании продемонстрировано, что в случае большей протяженности патологического рефлюкса уровень экспрессии PLXNA4 повышается в варикозно неизмененных сегментах вен. При большей протяженности рефлюкса уровень экспрессии PLXNA4 в НВ увеличивается почти до значений в ВВ (Me(ВВ/НВ)=1,1). Такие результаты могут свидетельствовать о том, что несмотря на отсутствие морфологических изменений в НВ, процессы, связанные с передачей сигналов от PLXNA4, более выражены у пациентов с большей протяженностью рефлюкса. Это может определять вероятность рецидива рефлюкса после ASVAL [5, 27]. В предварительном исследовании [6] не было выявлено разницы в экспрессии на уровне мРНК нейропилинов, которые образуют комплексы с PLXNA4 [15], однако не исключено, что при другом подходе возможно будет установить некоторые закономерности. Эти комплексы связываются с семафоринами, которые играют роль в воспалительных и аутоиммунных процессах, в частности, SEMA3A предположительно способствует заболеваниям микроциркулярного русла. Семафорины и плексины представляют собой перспективные лекарственные мишени для профилактики и лечения различных заболеваний [28]. В настоящем исследовании выявили дифференциальную экспрессию в ВВ на уровне мРНК гена SEMA3A в группе пациентов с протяженностью рефлюкса до н/3 бедра. Поскольку продуктом этого гена является секретируемый во внеклеточное пространство белок, для более явной картины необходимо проведение анализа на уровне белка. Тем не менее проведенная работа указывает на роль семафоринов в патогенезе ВБНК и на потенциал дальнейшего исследования.
Интересно, что без разделения пациентов на группы по протяженности рефлюкса в БПВ (т.е. на всей выборке пациентов) исследуемые гены не продемонстрировали различий в экспрессии между варикозно измененными и неизмененными сегментами вен, что говорит о том, что протяженность рефлюкса связана с выраженностью экспрессии генов ACTA1, PLXNA4 и SEMA3A.
Заключение
Показана разница в экспрессии генов ACTA1, PLXNA4 и SEMA3A, участвующих в ремоделировании цитоскелета и, как следствие, венозной стенки, в образцах вен от пациентов с разной протяженностью патологического рефлюкса в БПВ. Таким образом, протяженность патологического рефлюкса в магистральной вене, определяющая вероятность рецидива рефлюкса после процедуры ASVAL, связана с ремоделированием стенки вены. Выявленные гены могут стать перспективными терапевтическими мишенями.
Исследование выполнено при финансовой поддержке ПФНИ РФ 0245-2021-0006 в рамках научного проекта №121031300045-2 «Фундаментальные основы здоровьесбережения».
Участие авторов:
Концепция и дизайн исследования — М.А. Сметанина и В.А Короленя
Сбор и обработка материала — К.А. Гаврилов, К.С. Севостьянова, М.А. Сметанина, В.А. Короленя
Статистическая обработка данных — В.А. Короленя, М.А. Сметанина
Написание текста — В.А. Короленя, М.А. Сметанина
Редактирование — М.А. Сметанина
Обеспечение материалами исследования, административная и техническая поддержка — А.И. Шевела, М.Л. Филипенко
Авторы выражают благодарность И.А. Золотухину за идейное вдохновение.
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
* Статья написана на английском языке, оригинальная версия находится на сайте журнала в открытом доступе.