В последние годы значительно вырос интерес к проблеме микробной контаминации зубных щеток и ее значимости для развития заболеваний. Механические средства гигиены легко подвергаются микробному загрязнению в процессе эксплуатации [12, 15, 16, 18, 21]. Адгезия и размножение микроорганизмов на зубных щетках могут представлять опасность повторного инфицирования патогенными видами микрофлоры и при определенных условиях становятся причиной заболевания слизистой оболочки рта, особенно у детей и лиц с сопутствующей соматической патологией [1].

По мнению S. Bhanji и соавт. (2002), транзиторная бактериемия, вызванная микроорганизмами, оставшимися на зубной щетке, хорошо переносится здоровыми людьми, но может увеличить риск развития эндокардита у больных с сердечно-сосудистыми заболеваниями [9].

S. Taji и A. Rogers (1998) установили, что среднее количество микроорганизмов, обнаруженных на зубных щетках после их использования в течение 3 недель, составило 10⁴—10⁵ КОЕ/мл. В количественном отношении преобладали стафилококки и стрептококки. Грибы рода Candida, коринебактерии, псевдомонады и энтеробактерии были идентифицированы в 70, 60, 50 и 30% случаев соответственно. Авторы не установили зависимости микробной контаминации зубных щеток от условий их хранения, но отметили необходимость проведения более длительных исследований [22].

M. Quirynen и соавт. (2001), изучавшие степень обсемененности зубных щеток, принадлежащих пациентам с пародонтитом, выявил высокие концентрации (10⁷—10⁸ КОЕ/мл) аэробных и анаэробных микроорганизмов непосредственно после эксплуатации. Однако через 48 ч микробная обсемененность и процент живых бактерий снизились вдвое, не было выявлено представителей пародонтопатогенной микрофлоры, за исключением Fusobacterium nucleatum [20].

В настоящее время предлагаются различные способы снижения микробной обсемененности зубных щеток. Однако степень эффективности большинства из них не изучена.

В соответствии с ГОСТ 6388-91 «Щетки зубные», после использования зубную щетку следует тщательно промыть и высушить. Не рекомендуется хранить щетки в закрытых футлярах, так как влажная среда способствует сохранению жизнеспособности большинства микроорганизмов. Одним из оптимальных вариантов является хранение щетки головкой вверх, без какой-либо защиты щетины. Для дезинфекции зубных щеток после использования ряд авторов рекомендует использовать антисептики в виде растворов или аэрозолей [2, 3, 5, 13, 17, 19, 23].

По мнению A. Mehta и соавт. (2007), ночная выдержка зубных щеток в 0,2% растворе хлоргексидина предупреждает микробную контаминацию, тогда как хранение их в пластиковом футляре способствует росту оппортунистических микроорганизмов, таких как Pseudomonas aeruginosa [17].

Другие авторы предлагают использовать для этой цели ультрафиолетовый держатель зубной щетки [7, 8, 10]. Например, компактное устройство для дезинфекции зубных щеток UV-C toothbrush sterilizer («Gezanne I.T.C.», Франция), по информации производителя, уничтожает до 99% микроорганизмов. В настоящее время достаточно широко для дезинфекции зубных щеток используют различные средства в таблетированной форме, в состав которых входит лимонная кислота, бикарбонат натрия, натрия лаурилсульфат. Они удобны в применении и доступны по цене.

Оценка степени микробной контаминации зубных щеток, выбор адекватных средств для ее дезинфекции [6, 11, 14] и обучение пациентов правилам ухода за ними [4, 17] являются актуальной проблемой.

Цель настоящего исследования — изучить степень микробной обсемененности зубных щеток и эффективность применения различных средств для ухода за зубными щетками.

В исследовании принимали участие 70 добровольцев обоих полов в возрасте от 19 до 35 лет, без вредных привычек и выраженной сопутствующей патологии, без деструктивных изменений в тканях пародонта. Все пациенты не принимали в течение 30 дней до исследования и во время эксперимента препараты, влияющие на микрофлору полости рта, а также не использовали средства оральной гигиены с антисептиками. Было получено письменное согласие на участие в исследовании.

Объектом изучения были зубные щетки средней степени жесткости с щетиной из синтетического волокна.

Перед испытаниями все участники были условно разделены на шесть групп, в зависимости от способа чистки зубов и способа антисептической обработки зубной щетки после использования. Время чистки зубов во всех группах составило 3 мин. После использования зубной щетки каждую из них промывали стерильной водой, после чего обрабатывали одним из способов, представленных в табл. 1.

Посев для микробиологического исследования брали с головки зубной щетки путем смыва. Посев, культивирование и идентификацию микроорганизмов проводили в соответствии с общепринятыми микробиологическими методиками. Результаты оценивали через 24—48 ч, окончательные — на 4—5-е сутки.

Посевы бактериологического материала проводили в аэробных и анаэробных условиях на жидкие и твердые селективные питательные среды.

Для получения изолированных колоний использовали модификацию рассева по Дригальски. Посевы проводили количественным или полуколичественным методом на плотные и жидкие питательные среды. Использовали следующие питательные среды: тиогликолевая среда (для культивирования анаэробных микроорганизмов); среда Эндо (для выделения энтеробактерий); 5% кровяной агар (для культивирования стрептококков); среда Сабуро с добавлением хлорамфеникола (для выделения грибов рода Candida); желточно-солевой агар (ЖСА) (для идентификации стафилококков); D-coccosel agar (для культивирования энтерококков).

Идентификацию аэробной и анаэробной флоры проводили с помощью микробиологического анализатора с автоматизированной системой i EMS Reader, Labsystems (Финляндия) с использованием планшет: СТАФИ-тест 16, НФЕРМ-тест 24, СТРЕПТО-тест 16, ЭНТЕРО-тест 16 производства «PLIVA-Lachema» (Чехия). Использовали программы: «МИКРОБ» и «МИКРОБ — АВТОМАТ».

При анализе данных микробиологических исследований было установлено, что все зубные щетки были в различной степени контаминированы микроорганизмами полости рта. Степень контаминации составила от 101 до 10⁴ КОЕ. Причем степень микробного загрязнения у щеток, которые использовались без зубной пасты, была значительно выше. При посеве через 12 ч количество фиксируемых микроорганизмов в группе, где не использовали зубную пасту, снизилось. При использовании щеток с зубной пастой через 12 ч хранения рост микробной флоры отсутствовал (табл. 2).

При исследовании эффекта от действия таблеток для очищения установлено, что была эффективна только 10-минутная обработка зубной щетки в отношении большинства изученных штаммов микроорганизмов 1, 2, а не 5-минутная (табл. 3).

При оценке результатов микробиологических посевов, взятых с зубных щеток, подвергшихся ультрафиолетовому облучению в специальном устройстве для дезинфекции (4-я группа), было установлено, что микробный спектр представлен в основном эпидермальным стафилококком и негемолитическим стрептококком, причем в более низких титрах, чем в 1—2-й группах. Посев через 12 ч хранения щеток в стандартных условиях (ГОСТ 6388-91) роста микроорганизмов не выявил (табл. 4).

В 5—6-й группах для дезинфекции щеток был использован широко применяемый в медицине 0,05% раствор хлоргексидина биглюконата. Полученные нами результаты свидетельствуют о том, что 5- и даже 10-минутная экспозиция зубных щеток в этом растворе не обеспечивает полного освобождения от микроорганизмов (табл. 5).

После 12-часового хранения зубных щеток в стандартных условиях роста микробной флоры выявлено не было.

Проведенные исследования позволяют сделать вывод о том, что зубные щетки после их использования в течение 3 мин без зубной пасты и последующего промывания стерильной дистиллированной водой (1-я группа) в высокой степени обсеменены микроорганизмами полости рта. Посев с поверхности щетины зубных щеток после 12-часового хранения в стандартных условиях не обеспечивал достаточную дезинфекцию зубных щеток. Нами был отмечен рост микрофлоры до 10⁴—10⁶ КОЕ/мл.

В то же время при микробиологическом исследовании посевов с зубных щеток, которые использовали пациенты 2-й группы (чистка зубов с зубной пастой, промывание щеток стерильной дистиллированной водой и последующее их хранение в стандартных условиях), было зафиксировано отсутствие роста микробной флоры.

Настоящее исследование также показало, что применение различных способов дезинфекции зубных щеток обеспечивает значительное снижение количества микроорганизмов, выделенных с их щетины сразу после обработки одним из дезинфицирующих способов (5—6-я группы), и полное отсутствие микроорганизмов после 12-часового стандартного хранения зубных щеток.

Однако в группе, где для дезинфекции применяли раствор хлоргексидина, нами был отмечен рост микробной флоры даже после 10-минутной обработки зубных щеток.

Результаты, полученные нами в ходе настоящего исследования во 2-й группе и 5—6-й группах, оказались сопоставимыми. Это можно объяснить следующим образом: состав современных зубных паст сложен и включает в себя, в том числе, поверхностно-активные (ПАВ) и абразивные вещества (карбонат кальция, соединения кремния, кальций-фосфатные соединения, соединения алюминия), а также антибактериальные компоненты (триклозан). Щетина зубных щеток состоит из синтетического волокна (тайнекс), который легко поддается очищению. В процессе ухода за щеткой при тщательном промывании ее под струей воды и смывании оставшихся на щетине компонентов зубной пасты обеспечивается очищение волокон щетки от зубного налета и бактериальной флоры. А последующее хранение зубных щеток в стандартных условиях приводит к высыханию щетины щетки. Изученные в данном исследовании микроорганизмы не имеют способности капсулироваться и не могут образовывать споры, поэтому отсутствие влаги и питательных веществ достаточно быстро приводит их к гибели и самоочищению щетки.