Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Юсубалиева Г.М.

Отдел фундаментальной и прикладной нейробиологии ФГБУ "Государственный научный центр социальной и судебной психиатрии им. В.П. Сербского";
Кафедра медицинских нанобиотехнологий Российского государственного медицинского университета им. Н.И. Пирогова

Левинский А.Б.

кафедра медицинских нанобиотехнологий ГБОУ ВПО «Российский государственный медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России, Москва

Зоркина Я.А.

Отдел фундаментальной и прикладной нейробиологии ФГБУ "Государственный научный центр социальной и судебной психиатрии им. В.П. Сербского"

Баклаушев В.П.

Отдел фундаментальной и прикладной нейробиологии ФГБУ "Государственный научный центр социальной и судебной психиатрии им. В.П. Сербского";
Кафедра медицинских нанобиотехнологий Российского государственного медицинского университета им. Н.И. Пирогова

Горяйнов С.А.

НИИ нейрохирургии им. акад. Н.Н. Бурденко РАМН, Москва

Павлова Г.В.

ФГБУ "Институт биологии гена" РАН

Мельников П.А.

кафедра медицинских нанобиотехнологий ГБОУ ВПО «Российский государственный медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России, Москва

Горлачев Г.Е.

ФГБУ "НИИ нейрохирургии им. акад. Н.Н. Бурденко" РАМН, Москва

Голанов А.В.

ФГБУ "НИИ нейрохирургии им. акад. Н.Н. Бурденко" РАМН, Москва

Потапов А.А.

НИИ нейрохирургии им. акад. Н.Н. Бурденко РАМН, Москва

Чехонин В.П.

Отдел фундаментальной и прикладной нейробиологии ФГБУ "Государственный научный центр социальной и судебной психиатрии им. В.П. Сербского";
Кафедра медицинских нанобиотехнологий Российского государственного медицинского университета им. Н.И. Пирогова

Проницаемость ГЭБ у здоровых крыс и при экспериментальной глиоме С6 после фракционной радиотерапии головного мозга

Авторы:

Юсубалиева Г.М., Левинский А.Б., Зоркина Я.А., Баклаушев В.П., Горяйнов С.А., Павлова Г.В., Мельников П.А., Горлачев Г.Е., Голанов А.В., Потапов А.А., Чехонин В.П.

Подробнее об авторах

Просмотров: 1277

Загрузок: 35


Как цитировать:

Юсубалиева Г.М., Левинский А.Б., Зоркина Я.А., и др. Проницаемость ГЭБ у здоровых крыс и при экспериментальной глиоме С6 после фракционной радиотерапии головного мозга. Журнал «Вопросы нейрохирургии» имени Н.Н. Бурденко. 2015;79(3):15‑26.
Iusubalieva GM, Levinskiy AB, Zorkina IaA, et al. Blood-brain barrier permeability in healthy rats and rats with experimental C6 glioma after fractionated radiotherapy of the brain. Burdenko's Journal of Neurosurgery. 2015;79(3):15‑26. (In Russ., In Engl.)
https://doi.org/10.17116/neiro201579315-26

Рекомендуем статьи по данной теме:
По­зит­рон­ная эмис­си­он­ная то­мог­ра­фия в со­че­та­нии с ком­пью­тер­ной то­мог­ра­фи­ей и 11С-ме­ти­они­ном в оцен­ке ме­та­бо­лиз­ма гли­ом го­лов­но­го моз­га. Жур­нал «Воп­ро­сы ней­ро­хи­рур­гии» име­ни Н.Н. Бур­ден­ко. 2024;(1):63-69
Ин­фор­ма­ци­он­ная под­дер­жка би­оре­сур­сной кол­лек­ции: би­оло­ги­чес­кая ин­фор­ма­ци­он­ная сис­те­ма «Ней­роОнк». Жур­нал «Воп­ро­сы ней­ро­хи­рур­гии» име­ни Н.Н. Бур­ден­ко. 2024;(3):65-73
По­зит­рон­но-эмис­си­он­ная то­мог­ра­фия, сов­ме­щен­ная с ком­пью­тер­ной то­мог­ра­фи­ей, с 11С-ме­ти­они­ном как не­за­ви­си­мый пре­дик­тор без­ре­ци­див­ной вы­жи­ва­емос­ти у боль­ных с диф­фуз­ны­ми гли­ома­ми без му­та­ции в ге­не IDH1. Жур­нал «Воп­ро­сы ней­ро­хи­рур­гии» име­ни Н.Н. Бур­ден­ко. 2024;(5):6-13
Ин­тра­опе­ра­ци­он­ная ди­аг­нос­ти­ка опу­хо­лей го­лов­но­го моз­га: срав­ни­тель­ная ха­рак­те­рис­ти­ка ци­то­ло­ги­чес­ко­го и гис­то­ло­ги­чес­ко­го ис­сле­до­ва­ния гли­ом. Ла­бо­ра­тор­ная служ­ба. 2023;(4):6-11

Стабильность внутренней среды головного мозга в норме обеспечивается целостностью гематоэнцефалического барьера (ГЭБ). Опухоли головного мозга сопровождаются нарушением функций ГЭБ, однако поступление лекарственных препаратов в клетки-мишени остается по-прежнему затрудненным. Соответственно, эффективность назначенной химио- или иммунотерапии при опухолях головного мозга, в отличие от лечения опухолей внутренних органов, крайне низка. Чем обусловлена подобная избирательность?

В клинической практике в исключительных случаях временный прорыв ГЭБ проводят системным введением осмотических диуретиков (маннитол) или медиаторов воспаления (брадикинин) [1—3]. В последнее время появляются данные о положительном результате при предварительном облучении головного мозга с опухолями перед химиотерапией, однако диапазон применяемых доз фракционированной радиотерапии довольно широк [4—6]. К примеру, большинство исследователей [7—9] считают, что лучевая терапия в дозах от 20 до 30 Гр с размером фракции 2 Гр может применяться для прорыва ГЭБ без особых побочных эффектов.

За последнее десятилетие сведения о молекулярных изменениях церебрального эндотелия, реакции астроглии, длительности и сроках открытия гематоэнцефалического барьера при фракционированном облучении представляют собой разрозненную информацию [10—15]. По-прежнему спорным и открытым вопросом в современной нейроонкологии остается проблема состояния когнитивной сферы и качества жизни пациентов после цикла химио- или радиотерапии на фоне увеличения продолжительности жизни [16, 17]. Вследствие указанного исследование целесообразности превентивного применения радиотерапии перед началом химио- или иммунотерапии пациентам с опухолями головного мозга является актуальным.

В задачи исследования входила оценка временных параметров повышения проницаемости ГЭБ для специфических и неспецифических высокомолекулярных веществ, введенных в системный кровоток здоровых крыс и крыс с глиомой С6, подвергнутых различным дозам фракционированной радиотерапии.

Материал и методы

Экспериментальные животные и схема эксперимента. Исследование проведено на 60 крысах линии Wistar. Возраст крыс на начало эксперимента — 2 мес, масса — 200±20 г. Животных содержали в условиях лабораторного вивария в клетках (по 8 особей в каждой) на стандартной диете (не менее 2 нед) до начала эксперимента при свободном доступе к воде и нормальном световом режиме. Условия содержания крыс и все экспериментальные процедуры соответствовали международным правилам обращения с животными (Директива Европейского сообщества 2010/63/EU от 24 сентября 2010 г., доступно по: http://ruslasa.ru/wp-content/uploads/Dir_2010_63_Rus-LASA2.pdf). Крысы были разделены случайным образом на 2 основные группы: 1-я группа — животные с моделированной глиомой С6 (n=30), 2-я — интактные (n=30). Каждая группа была разделена на три подгруппы, получавшие радиотерапию: 1А (n=10), 1B (n=10), 1С (n=5) и 2A (n=10), 2B (n=15), 2C (n=5). Дополнительно в каждой группе созданы две подгруппы без проведения радиотерапии: (1d и 2d).

Протокол облучения головного мозга крыс. Облучение головного мозга крыс выполнялось на линейном ускорителе PRIMUS («Siemens», США) на базе НИИ нейрохирургии им. Н.Н. Бурденко тормозным излучением 6 МВ с мощностью дозы 2 Гр/мин. Расстояние от источника излучения до плоскости расположения крыс составляло 100 см. Одновременно производилось облучение 4 крыс, которые располагались внутри формы из пенопласта носами к центру поля с таким расчетом, чтобы они упирались в стенку формы, и граница поля, определяемая по полувысоте дозового распределения, проходила позади головного мозга с запасом 5 мм, это гарантировало облучение всего головного мозга у всех крыс. Размер квадратного поля на уровне изоцентра составлял 140 мм. Для обеспечения электронного равновесия использовался слой твердой воды толщиной 20 мм. Полутень радиационного поля, определяемая по падению дозы с 80 до 20%, сокращалась до 4 мм посредством специально изготовленной рамки из сплава Вуда толщиной 60 мм. Облучение проводилось без общего наркоза, крыс обездвиживали с помощью рестейнеров (DecapiCones Braintree Scientific, Inc., США). Животные подвергались ежедневному облучению 5 раз в неделю до достижения суммарной дозы радиотерапии 36 Гр: 2 Гр×18 фракций (группы 1А и 2А), 4 Гр×9 фракций (группы 1b и 2b), 6 Гр×6 фракций (группы 1c и 2c), 0 Гр×0 фракций (группы 1d и 2d).

Протокол эксперимента по оценке проницаемости ГЭБ у крыс, подвергнутых облучению (в норме и с глиомой). В 1-й группе изменение проницаемости ГЭБ для ВМС при глиоме на фоне фракционной радиотерапии глиомы С6 оценивали методом мониторинга магнитно-резонансной томографии (МРТ) (морфометрия глиомы до и после радиотерапии в комбинации с иммунотерапией, n=30) и конфокальной микроскопии (флуоресцентная визуализация границ опухолевой инвазии в дозозависимом эксперименте по количеству вводимых антител). На крысах из 2-й группы оценку проницаемости ГЭБ для ВМС проводили методом ELIZA (n=23; 192 образца плазмы крови) и конфокальной микроскопии (n=7).

Количественный анализ проницаемости ГЭБ по уровню концентрации глиофибриллярного кислого белка (GFAP) в сыворотке крови крыс, подвергнутых облучению методом иммуноферментного анализа (ELIZA, вариант Sandwich). После завершения цикла радиотерапии из хвостовой вены крыс 1 раз в 7 дней в течение 3 мес отбирали по 2 мл цельной крови, осаждали центрифугированием форменные элементы, отбирали плазму и замораживали при –80 °С. Компоненты для проведения ELIZA (PabGFAP, recGFAP и MabGFAP) были получены в лаборатории иммунохимии ФГБУ «Федеральный медицинский исследовательский центр психиатрии и наркологии» Минздрава России. Полистироловый планшет активировали MabGFAP (100 мкл с концентрацией 5 мкг/мл) в 0,1 M бикарбонатном буфере рН 9,6 в течение 8 ч при 4 °C. После 3-кратной отмывки от излишка MabGFAP в планшет вносились образцы плазмы крови, содержащей антиген (50 мкл) с последующей инкубацией при 20 °C в течение 1 ч. После вторичной 3-кратной отмывки вносили в плашку PabGFAP в разведении 1:5000, проявляли с помощью a-rabbit-HRP в разведении 1:200 (Goat antirabbit IgG-HRP, «Sigma», США). Для уменьшения неспецифической сорбции антивидовых антител их предварительно инкубировали в течение 1 ч с сывороткой мыши (1:200). Реакцию субстратной смеси с 3,3’, 5,5’-тетраметилбензидином (Ready-to-use, Invitrogen, США) останавливали добавлением 0,1 н HCl. По данным оптической плотности с помощью калибровочной кривой рассчитывали количественное значение концентрации GFAP.

Качественный анализ проницаемости ГЭБ по накоплению меченных флуоресцентной меткой моноклональных антитител в головном мозге крыс, подвергнутых облучению (проницаемость ГЭБ для ВМС). Мечение специфических и неспецифических иммуноглобулинов (Ig) флуоресцентной меткой Alexa различной длины волны проводилось по протоколу фирмы-производителя (Invitrogen, США). Антитела к GFAP (PabGFAP, MabGFAP), VEGF (MabVEGF), AMVB1 (Mab 2B6) и коннексину-43 (Сх43) — MabVEGF, были получены в лаборатории иммунохимии ФГБУ «ФМИЦПН» Минздрава России. Дополнительно приобретены коммерческие неспецифические Ig («Sigma», США) и антитела к фактору вон Виллебранда (vWF) («Abcam», США).

Крысам в бедренную вену под общим наркозом вводились Ig, меченные флуоресцентной меткой Alexa 660. Накопление в структурах головного мозга меченых антител in vivo оценивали с помощью лазерной конфокальной микроскопии. С этой целью через 24, 48 и 72 ч после введения меченых антител крысам под глубоким наркозом проводили трансаортальную перфузию 4% раствором параформальдегида, декапитировали, извлекали головной мозг и приготовляли срезы толщиной 150—200 мк. Для визуализации на срезах головного мозга крыс клеточных структур с позитивным сигналом от Alexa 660, срезы экспонировали в растворе с поликлональными anti-GFAP (астроциты), anti-vWF (эндотелиоциты) и иммунопроявляли антивидовыми антителами («Invitrogen», США).

Анализ деградации в крови IgG и MabGFAP, ковалентно связанных с Alexa Fluor 488. Связывание IgG и MabGFAP с Alexa Fluor 488 проводили по протоколу фирмы-производителя («Invitrogen», США). Измеряли интенсивность флуоресценции при помощи флуориметра VICTOR X3 Multilabel Plate Reader в полученных образцах в различных разведениях. Меченые антитела разводились в плазме крови с учетом обнаружения 5% потери флуоресценции. Инкубация в плазме крови, забор на сроках 18, 24, 48 и 72 ч с последующим измерением интенсивности флуоресценции в образце. Центрифугирование через фильтр 30 кДа (Alexa Fluor 488 — 0,7 кДа) и измерение интенсивности флуоресценции в проскоке.

Статистический анализ. Сравнение с контрольным уровнем GFAP проводилось с помощью параметрического критерия Даннета. Данные представлены средним индексом накопления и его стандартным отклонением (Mean±SD).

Результаты

Количественный анализ GFAP в плазме крыс из 2-й группы, подвергнутых фракционированному облучению, проведен на 23 крысах. По результатам ELIZA, уровень GFAP в плазме крови возрастал в 1,5—2 раза по сравнению с нормой. Наибольшие значения белка в сыворотке крыс отмечены на 3—4-й и на 8—12-й неделях. На 6-й неделе после радиотерапии уровень GFAP возвращался к исходным значениям нормы. А на 10-й неделе в плазме крови наблюдалось максимальное увеличение GFAP. Достоверных различий в концентрации белка в плазме крови крыс из групп, варьированных по разовой дозе радиотерапии, не выявлено (рис. 1).

Рис. 1. Нормированное на базальный уровень количество GFAP в плазме крови крыс после фракционированного облучения, достоверности отличий от нормального уровня GFAP.

Ориентируясь на количественные показатели GFAP методом иммуноферментного анализа, исследование проницаемости ГЭБ для высокомолекулярных биологических молекул в направлении «кровь—мозг» проводили на сроке 2 и 10 нед после завершения цикла радиотерапии.

Учитывая, что повышение проницаемости ГЭБ при радиоактивном облучении для высокомолекулярных биологических веществ может не быть избирательным, было важно дифференцировать селективное от неселективного накопления антител. С этой целью в эксперименте применили специфические и неспецифические Ig, меченные флуоресцентной меткой Alexa (Dye Alexa 488 absorb 495 nm, emit 519 nm; dye Alexa 660 absorb 663, emit 690 nm; «Life Technologies Corporation», США).

На первом этапе мы оценили накопление неспецифических Ig в головном мозге крыс после облучения in vivo через 24, 48 и 72 ч после их введения в системный кровоток в каждой экспериментальной группе (рис. 2, а, б). Выяснилось, что через 72 ч сигнала от флуоресценции неспецифических Ig в ткани головного мозга практически не остается, а местами сохранившаяся флуоресценция наблюдалась только в полости сосудов (см. рис. 2, б).

Рис. 2. Микроскопия накопления IgG, меченных на срезах головного мозга крыс, через 72 ч после внутривенного введения IgG Alexa 660 (красная флуоресценция), срезы дополнительно иммунопроявлены ex vivo с помощью MabVEGF+Anti-mouse Alexa 488 (сосуды — зеленая), ядра докрашивали DAPI (синяя). а — обзорная микроскопическая картина среза головного мозга крысы с глиомой (бар — 10 мкм), б — увеличение разрешения микроскопии до 20 мкм.

Кроме того, эксперимент с введением неспецифических Ig с меткой показал, что ГЭБ способен пропускать вещества с весом более 150 кДа при всех применимых нами вариантах радиотерапии (2 Гр×18 фракций, 4 Гр×9 фракций, 6 Гр×6 фракций). Исходя из предыдущих опубликованных данных по исследованию когнитивных функций после радиотерапии и положительного эффекта последней в отношении глиомы, на втором этапе применяли для крыс разовую фракцию не более 4 Гр. Таким образом, флуоресцентный сигнал при введении специфических антител к VEGF, GFAP и Cx43 регистрировали только спустя 72 ч после введения.

При выборе антигенов-мишеней для флуоресцентной визуализации in vivo руководствовались количеством синтеза белка в нервной ткани, специфичностью и доступностью. Уровень экспрессии GFAP возрастает в астроцитах при реактивном глиозе, Cх43 является мембранным белком гомо- и гетерологичных щелевых контактов между астроцитами, эндотелиоцитами и опухолевыми клетками [18—21]. Синтез VEGF (vascular endothelial growth factor) увеличивается в ответ на гипоксию, воспалительные процессы, в том числе при радиоактивном облучении [22].

Согласно полученным данным микроскопии, проницаемость ГЭБ оказалась повышена для моноклональных антител в течение длительного времени. На сроке 2 нед после фракционной радиотерапии мы зарегистрировали пропускную способность ГЭБ для меченых Ig вне зависимости от величины разовой дозы фракции. Спустя 10 нед со дня завершения радиотерапии пропускная способность для моноклональных антител не изменилась.

При введении моноклональных анти-GFAP- и анти-VEGF-антител в системный кровоток крыс и циркуляции в крови 72 ч наблюдали интенсивный флуоресцентный сигнал на срезах переднего и среднего отделов головного мозга и мозжечка. При анализе накопления моноклональных анти-GFAP-антител, меченных Alexa 488, in vivo срезы головного мозга крыс дополнительно экспонировали в растворе с поликлональными антителами к GFAP и проявляли антивидовыми Anti-mouse Alexa 594. Согласно результатам конфокальной микроскопии по локализации моно- и поликлонов к GFAP, моноклональные анти-GFAP-антитела накапливались в реактивных астроцитах (рис. 3).

Рис. 3. Микроскопия накопления MabGFAP, меченных Alexa 488, на срезах головного мозга крыс через 72 ч после внутривенного введения (corpus callosum): MabGFAP Alexa 488 (зеленая флуоресценция), срезы доиммунопроявлены с помощью PabGFAP+ Anti-mouse Alexa 594 (фиолетовая), ядра докрашены DAPI (синяя).

Для определения видовой принадлежности структурных элементов, где регистрируется флуоресцентный сигнал от введенных в кровоток крысы анти-VEGF-антител, срезы головного мозга докрасили антителами к vWF и Mab2B6. Результаты иммуногистохимии свидетельствуют о селективном накоплении анти-VEGF-антител в церебральных эндотелиоцитах, положительных на vWF и AMVB1 (рис. 4, 5).

Рис. 4. Анализ накопления MabVEGF, меченных Alexa 660, в стриатуме головного мозга крыс через 72 ч после внутривенного введения MabGFAP+Anti-mouse Alexa 488 (зеленая флуоресценция), MabVEGF +Alexa 660 (красная), срезы доиммунопроявлены с помощью PabvWF + Anti-rabbit Alexa 594 (фиолетовая), ядра докрашены DAPI (синяя).
Рис. 5. Микроскопия накопления MabVEGF, меченных Alexa 660, на срезах головного мозга крыс через 72 ч после внутривенного введения (corpus callosum) Mab2B6 + Anti-mouse Alexa 488 (зеленая флуоресценция), PabGFAP + Anti-rabbit Alexa 594 (фиолетовая), MabVEGF + Alexa 660 (красная).

Таким образом, мы продемонстрировали, что, подвергнув фракционированной радиотерапии головной мозг здоровых крыс, наблюдается длительное повышение проницаемости гематоэнцефалического барьера для ВМС.

Дополнительно для достоверности полученных результатов по накоплению меченых антител в нервной ткани провели эксперимент по деградации метки Alexa 660, ковалентно связанных с антителами, в сыворотке крови крыс. При анализе интенсивности флуоресценции препаратов меченых антител в различных разведениях была получена линейная зависимость флуоресценции от разведения образца (рис. 6). Фоновое значение, измеренное в нормальной плазме крови крысы, составило 724,8±223,2.

Рис. 6. Динамика изменения интенсивности флуоресценции препаратов меченых антител. а — в ходе инкубации меченых антител в плазме крови; б — в различных разведениях в плазме крови.

Минимально детектируемое значение рассчитывали как пятифоновое значение и оно равнялось 4740. Для обнаружения 5% потери флуоресценции от меченых антител в ходе инкубации в плазме крови данное значение было принято за 5%. Следовательно, интенсивность флуоресценции в конечном образце должна быть как минимум 94 802. После разведения в плазме крови интенсивность флуоресценции равнялась для меченных Alexa 488 IgG и MabGFAP соответственно 126473,6±1385 и 131541,6±1694. Интенсивность флуоресценции в пробах плазмы, отобранных на сроках 18, 24, 48 и 72 ч, падала с течением времени.

Таким образом, на сроке 72 ч интенсивность флуоресценции равнялась для меченных Alexa 488 IgG и MabGFAP соответственно 111 814±9245 и 112 340±9552. При этом степень падения флуоресценции от изначального значения составила 11,6 и 14,6% для меченных Alexa 488 IgG, и MabGFAP соответственно (см. рис. 6, таблицу). После фильтрации препаратов меченых антител через фильтры с размером пор 30 кДа значения флуоресценции в полученных проскоках значительно снизились (размер антител с меткой — больше 150 кДа). Интенсивность флуоресценции отличалась от фонового значения на сроках 24, 48 и 72 ч (см. таблицу).

Достоверности отличий от фонового значения интенсивности флуоресценции в проскоках после центрифугирования через 30 кДа

Таким образом, в образцах проскоков, отобранных на различных сроках после начала инкубации, интенсивность флуоресценции не превышает фоновых значений. Это свидетельствует об отсутствии флуоресценции низкомолекулярных компонентов до 30 кДа, что говорит об отщеплении не более 5% метки от комплекса антитело—Alexa 488.

В оценке улучшения проходимости ГЭБ при экспериментальной глиоме для диагностических и лекарственных средств на фоне радиотерапии мы опирались на полученные результаты радиотерапии в дозозависимом эксперименте: чем выше доза разовой фракции, тем очевиден противоопухолевый эффект [27]. При 6-дневном облучении разовой дозой в 6 Гр объем глиомы не увеличивался с начала радиотерапии, но по завершению эксперимента крысы в течение 2—3 дней погибали от побочных эффектов. Выживаемость в группе крыс с радиотерапией по схеме 4 Гр×9 фракций по ее завершению составляла 100%, и эффективность в отношении роста опухоли была очевидна. Однако через неделю рост опухоли возобновлялся, при этом интенсивность инвазии в окружающие ткани была такова, что спустя еще 1 нед крыса погибала от внутричерепной дислокации (рис. 7, а—в).

Рис. 7. МРТ-картина головного мозга крысы с глиомой С6 после радиотерапии по схеме 4 Гр×9 дней. а, б, в — 1-й, 7-й и 14-й дни после радиотерапии и после радиотерапии по схеме 4 Гр×9 дней с последующим введением MabСx43; г, д, е — 1-й, 7-й и 14-й дни после радиотерапии.

Если в течение 1 нед с момента завершения облучения подключить иммунотерапию, в частности MabСx43, с продемонстрированной ранее противоопухолевой эффективностью в монотерапии, то мы наблюдали дальнейшее торможение роста опухоли (см. рис. 7) [27]. При этом однократное введение антител в дозе 1 мг увеличивало продолжительность жизни животных до 56 дней. При монотерапии в той же дозировке подобный эффект наблюдался при его еженедельном введении.

Дополнительно представлены результаты микроскопии среза головного мозга с глиомой, выполненные методом конфокальной микроскопии. Ранее для визуализации перитуморальной зоны с помощью MabСx43 с ковалентно пришитой флуоресцентной меткой Alexa необходимо было ввести крысе in vivo в системный кровоток не менее 500 мкг. После радиотерапии (4 Гр×9 фракций и 2 Гр ×18 фракций) введение меченых антител в дозе 40 мкг позволило зарегистрировать сигнал флуоресценции в зоне реактивного астроглиоза (вокруг глиомы) (рис. 8).

Рис. 8. Микроскопия периглиомной зоны с помощью меченых MabСx43 в дозе 40 мкг, введенных в системный кровоток крысе после завершения фракционной радиотерапии с разовой дозой 4 и 2 Гр.

Резюмируя полученные результаты, можно говорить о повышении пропускной способности ГЭБ для диагностических и терапевтических агентов после проведенной фракционированной радиотерапии.

Обсуждение

Проблема проницаемости гематоэнцефалического барьера для терапевтических и диагностических агентов актуальна по настоящее время и активно решается исследователями и клиницистами всего мира. Ранее для оценки повышения проницаемости ГЭБ при радиотерапии головного мозга терапевтическими дозами в эксперименте исследователи уже применяли, в частности, радиоактивные маркеры [23], МРТ-мониторирование [24], методы иммуногистохимии [25], позитронно-эмиссионную томографию, количественный анализ альбумина [26] и др. Аналогичные исследования в единичных случаях уже проводятся на пациентах. Было показано увеличение проницаемости при ежедневном фракционировании в 3 Гр и по достижению суммарной дозы в 30 Гр, в области головного мозга, пограничных с полем облучения, причем степень увеличения была прямо пропорциональна дозе ионизирующего излучения [10]. Для уменьшения долгосрочной токсичности предпочтительнее фракционирование с разовой ежедневной дозой 2 Гр [27]. В другом исследовании [12] показано, что фракционная доза 2 Гр для изменения проницаемости ГЭБ может оптимизировать эффект химиотерапии. D. Qin и соавт. заметили, что проницаемость ГЭБ внутри и вокруг опухоли только на 20% больше, чем в нормальной ткани мозга [12]. Однако, несмотря на исследования в этой области, радиотерапия в целях увеличения проницаемости ГЭБ и эффективности химиотерапии до сих пор применяется ограниченно [7, 28].

Использование ионизирующих излучений в клинике основано на различиях в радиочувствительности опухоли и нормальных тканей [7, 28]. При воздействии ионизирующих излучений возникают альтернативные процессы повреждения и восстановления. Нормальные ткани за счет стойких нейрогуморальных связей с организмом-носителем восстанавливают лучевые повреждения быстрее и полнее, чем опухоль. Используя эти различия и управляя ими, можно добиться тотального разрушения опухоли, сохранив нормальные ткани, а при адекватно подобранном варианте дробления дозы — существенного повышения повреждения опухоли.

В России в случаях радикального лечения традиционным считается фракционирование 5 раз в неделю по 1,8—2 Гр 1 раз в день до суммарных доз, которые определяются морфологической структурой опухоли и толерантностью нормальных тканей в зоне облучения (обычно в пределах 60—70 Гр). Стандартным режимом дистанционной фракционированной лучевой терапии является облучение ложа удаленной опухоли (или опухоли) плюс 2 см вокруг с суммарной очаговой дозой 55—60 Гр за 25—30 фракций (по 1,8—2,0 Гр на фракцию), подведенных за 5—6 нед. Зона патологического сигнала определяется по МРТ в Т2-режиме (или в режиме FLAIR для доброкачественных глиом) [7]. Кроме классической (конвенциональной) схемы радиотерапии у пациентов с опухолями головного мозга могут применяться другие режимы фракционирования доз облучения [7]. Медиана выживаемости при одновременной химиолучевой терапии составила 14,6 мес по сравнению с 12,1 мес в группе лучевого лечения [7]. При тяжелом соматическом статусе пациента в ряде случаев химиотерапия не проводится (радиотерапия не показана пациентам с внутричерепной гипертензией до ее разрешения).

Изучение различных режимов сочетания химио- и лучевой терапии у пациентов со злокачественными глиомами является важной клинической задачей. В нашем экспериментальном исследовании показано, что после проведения радиотерапии у крыс с глиомой С6 отмечается повышение проницаемости ГЭБ. В клинических условиях это может способствовать проникновению химиопрепаратов в опухоль в больших концентрациях. Ранее было показано, что в клинической практике возможен прорыв ГЭБ у пациентов с лимфомами головного мозга с помощью болюсного интраартериального введения маннитола [1].

Исследование проницаемости ГЭБ в клинике возможно благодаря мониторированию в сыворотке крови различных нейроспецифических белков, находящихся в плазме в низких количествах в норме и значительно увеличивающихся при патологии ЦНС вследствие увеличения проницаемости ГЭБ. В роли такого маркера может выступать GFAP. Повышенное содержание GFAP наблюдается в экспериментальных моделях астроглиоза в результате криогенных поражений головного мозга, колотых ран, экспериментального аллергического энцефалита, гипертермии, поражений электрическим током и токсических поражений, а также при воздействии ионизирующего излучения. Изменения в экспрессии GFAP используются для качественной или количественной оценки тяжести травмы головного мозга, а также при злокачественных опухолях [22, 24, 25].

Повышение GFAP в различных структурах мозга и крови после однократного γ-облучения уже исследовалось В.П. Чехониным и соавт. [29]. В плазме крови было выявлено увеличение концентрации GFAP, свидетельствующее о повышении проницаемости ГЭБ для нейроспецифических белков в направлении «мозг—кровь». Повторив данный эксперимент, подвергнув крыс тотальному облучению всей поверхности тела однократно в дозе около 30 Гр, нам не удалось зарегистрировать повышение проницаемости ГЭБ для меченных радиоактивной меткой антител в направлении «кровь—мозг». В отличие от однократного тотального облучения головного мозга большой дозой фракционная радиотерапия небольшими дозами обеспечила длительное повышение проницаемости ГЭБ с пропускной способностью для биологических молекул с молекулярным весом более 150 кДа.

В то же время мы показали, что эффективность фракционной радиотерапии глиомы С6 коррелирует с величиной разовой дозы [22]. Чем выше ее величина, тем быстрее тормозится опухолевый рост, но возрастает число побочных эффектов и риск быстрой смерти животного. При величине фракции в 4 Гр глиома практически не увеличивалась в объеме, однако по завершению облучения опухолевый рост возобновлялся с удвоенной скоростью [27, 31].

Проведение нейрофизиологических тестов на крысах контрольной группы (без глиомы) выявило наличие когнитивного дефицита при всех применимых нами вариантах радиотерапии (2 Гр×18 фракций, 4 Гр×9 фракций, 6 Гр×6 фракций). С увеличением разовой дозы одной фракции возрастает степень выраженности когнитивных расстройств [22, 29, 30], поэтому в исследованиях по проницаемости ГЭБ у предварительно здоровых крыс (без глиомы) были выбраны режимы фракционирования, показавшие свою эффективность в быстрой стабилизации объема глиомы С6, но без остро выраженных побочных эффектов, а именно: 4 Гр×6 фракций и длительное облучение небольшими дозами 2 Гр×9 фракций [31].

Показано, что длительное фракционированное облучение головного мозга небольшими дозами приводит к открытию ГЭБ в направлениях «кровь—мозг» и «мозг—кровь» у здоровых крыс и улучшению проницаемости при экспериментальной глиоме. При тотальном облучении головного мозга крыс увеличение проницаемости ГЭБ для высокомолекулярных веществ наблюдалось во всех отделах мозга, но в случае применения таргетных систем — в зоне презентации необходимого антигена (т.е. работает селективность накопления). В частности, мы показали возникшее в ответ на радиоактивное облучение накопление в зоне астроглиоза меченых анти-GFAP- и анти-Сх43-антител, а также смогли визуализировать сосуды коры, гиппокампа и мозжечка при введении меченых анти-VEGF-антител.

Заключение

Результаты конфокальной микроскопии глиомы показали возможность визуализации глиомы после радиотерапии с помощью меченых антител в десятикратно меньшей дозе, чем до облучения. Снижается и количество диагностической метки. Согласно результатам количественного анализа GFAP в плазме крови крыс, накопления в мозге крыс меченных флуоресцентной меткой антител при внутривенном введении и нейрофизиологических тестов, пропускная способность ГЭБ зависят в большей степени от продолжительности фракционированного облучения, чем от величины разовой дозы. При комбинированной терапии глиомы С6 предварительная радиотерапия позволила уменьшить дозу терапевтических антител в 2 раза. Таким образом, предварительное воздействие на ГЭБ облучения в терапевтических дозах может улучшить доставку лекарственных и диагностических препаратов в головной мозг и тем самым минимизировать риск серьезных побочных явлений, связанных чаще всего с дозой лекарственного средства.

Исследование выполнено при финансовой поддержке Российского фонда фундаментальных исследований в рамках научного проекта № 13−00−12000 КОМФИ.

Комментарий

Стабильность внутренней среды головного мозга в норме обеспечивается целостностью ГЭБ. Опухоли головного мозга сопровождаются нарушением функций ГЭБ, однако поступление лекарственных препаратов в клетки-мишени остается по-прежнему затрудненным.

В задачи исследования входило оценить временные параметры повышения проницаемости ГЭБ для высокомолекулярных веществ in vivo после фракционированной радиотерапии. Облучение головного мозга крыс выполнялось на линейном ускорителе PRIMUS («Siemiens», США) на базе НИИ нейрохирургии им. Н.Н. Бурденко. Увеличение проницаемости ГЭБ при глиоме С6 оценивали методом динамического МРТ-мониторирования (объем глиомы до и после радиотерапии в комбинации с иммунотерапией; n=30) и конфокальной микроскопии (флуоресцентная визуализация границ опухолевой инвазии в дозозависимом эксперименте по количеству вводимых антител). На здоровых крысах оценку проницаемости ГЭБ для высокомолекулярных веществ проводили методом ELIZA (n=23; 192 образца плазмы крови) и конфокальной микроскопии (n=7). Было показано повышение проницаемости ГЭБ после фракционированной радиотерапии в направлениях «кровь—мозг» и «мозг—кровь» для высокомолекулярных биологических молекул. Дополнительно проведена оценка стабильности конъюгата при длительной инкубации в сыворотке крови: анализ деградации антител, ковалентно связанных с Alexa Fluor 488.

Проблема проницаемости ГЭБ для терапевтических и диагностических агентов актуальна по настоящее время. Аналогичные исследования проводятся в мировых лабораториях, в единичных случаях на пациентах [5, 6, 14, 19, 20]. Было показано увеличение проницаемости при ежедневном фракционировании в 3 Гр в области головного мозга, пограничной с полем облучения [14]. Исследователи показали возникшее в ответ на радиоактивное облучение накопление в зоне астроглиоза меченых анти-GFAP- и анти-Сх43-антител, а также смогли визуализировать сосуды коры, гиппокампа и мозжечка при введении меченых анти-VEGF-антител. При комбинированном лечении экспериментальной глиомы предварительная радиотерапия позволила уменьшить дозу терапевтических антител в 2 раза.

Таким образом, в случае необходимости проведения комбинированной терапии глиобластом воздействие на ГЭБ облучением в терапевтических дозах может улучшить доставку лекарственных препаратов в головной мозг и тем самым минимизировать риск развития серьезных побочных явлений, связанных чаще всего с дозой лекарственного средства.

Резюмируя сказанное, можно утверждать, что проблема преодоления и патологического барьера является актуальной и решение данной проблемы имеет очевидные перспективы практического внедрения.

А.В. Ревищин (Москва)

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail



Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.