Повреждение сосудов при резекции печени может привести к атрофии и фиброзу всей доли органа в эксперименте

Авторы:
  • И. В. Майбородин
    Центр новых медицинских технологий Института химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, Новосибирск, Россия
  • Н. Ф. Фигуренко
    Центр новых медицинских технологий Института химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, Новосибирск, Россия
  • В. В. Морозов
    Центр новых медицинских технологий Института химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, Новосибирск, Россия
  • Р. В. Маслов
    Центр новых медицинских технологий Института химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, Новосибирск, Россия
  • Т. В. Михеева
    Центр новых медицинских технологий Института химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, Новосибирск, Россия
  • В. И. Майбородина
    Лаборатория ультраструктурных основ патологии, Институт молекулярной патологии и патоморфологии Федерального исследовательского центра фундаментальной и трансляционной медицины Министерства науки и высшего образования Российской Федерации», Новосибирск, Россия
  • О. Н. Филипович
    Центр новых медицинских технологий Института химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, Новосибирск, Россия
  • А. И. Кадырова
    Центр новых медицинских технологий Института химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, Новосибирск, Россия
  • А. И. Шевела
    Центр новых медицинских технологий Института химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, Новосибирск, Россия
Журнал: Доказательная гастроэнтерология. 2018;7(4): 20-29
Просмотрено: 857 Скачано: 96
Цель исследования — изучить возможные связанные с сосудами осложнения регенерации печени после резекции края ее доли в эксперименте. Материал и методы. Методом световой микроскопии изучали особенности, обусловленные повреждением сосудов, регенерации печени после резекции части ее доли у крыс. Результаты. Через 1 нед после резекции на краю печени по месту повреждения была расположена рыхлая волокнистая соединительная ткань. В паренхиме, рядом с формирующимся рубцом, иногда содержался детрит, отграниченный лейкоцитами и фибробластами. Вглубь органа от участков с детритом отходили длинные и толстые соединительнотканные прослойки, образованные на месте пересеченных и нефункционирующих сосудов и желчных протоков. Спустя 2 нед на поверхности печени присутствовал соединительнотканный рубец с высоким содержанием макрофагов, среди которых было много клеток с интенсивным коричневым окрашиванием цитоплазмы, по-видимому, сидерофагов или содержащих компоненты желчи. В некоторых случаях печень была деформирована соединительнотканными перетяжками до 200 мкм шириной, скорее всего сформированными из сосудов. В последующие сроки структура органа практически восстановилась у большинства крыс. Однако примерно у 1/3 животных от места резекции в паренхиму уходили грубые толстые тяжи плотной волокнистой соединительной ткани, в структуре которой было много лейкоцитов и групп крупных клеточных элементов с коричневой цитоплазмой. Заключение. Даже спустя 5 нед после резекции печени у некоторых крыс продолжаются вследствие сосудистых расстройств активные процессы повреждения и склероза оперированной доли органа, которые в итоге могут завершиться ее атрофией или фиброзом. При проведении резекции печени по любым показаниям по возможности следует избегать пересечения крупных сосудов и желчных протоков. Также является целесообразным проведение мероприятий, направленных на поддержание и сохранение функций оставшейся печеночной паренхимы до полной ее компенсационной гипертрофии.
Ключевые слова:
  • резекция печени
  • регенерация печени
  • повреждение сосудов
  • склероз
  • макрофаги

КАК ЦИТИРОВАТЬ:

Майбородин И.В., Фигуренко Н.Ф., Морозов В.В., Маслов Р.В., Михеева Т.В., Майбородина В.И., Филипович О.Н., Кадырова А.И., Шевела А.И. Повреждение сосудов при резекции печени может привести к атрофии и фиброзу всей доли органа в эксперименте. Доказательная гастроэнтерология. 2018;7(4):20-29. https://doi.org/10.17116/dokgastro2018704120

Список литературы:

  1. Kwon KH, Kim YW, Kim SI, Kim KS, Lee WJ, Choi JS. Postoperative liver regeneration and complication in live liver donor after partial hepatectomy for living donor liver transplantation. Yonsei Med J. 2003;44(6):1069-1077. https://doi.org/10.3349/ymj.2003.44.6.1069
  2. Гуманенко Е.К., Самохвалов И.М. Военно-полевая хирургия локальных войн и вооруженных конфликтов. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2011;672.
  3. Klink T, Simon P, Knopp C, Ittrich H, Fischer L, Adam G, Koops A. Liver remnant regeneration in donors after living donor liver transplantation: long-term follow-up using CT and MR imaging. Rofo. 2014;186(6):598-605. https://doi.org/10.1055/s-0033-1355894
  4. Noda T, Eguchi H, Iwagami Y, Yamada D, Asaoka T, Gotoh K, Kawamoto K, Kobayashi S, Hashimoto Y, Takeda Y, Tanemura M, Umeshita K, Doki Y, Mori M. Minimally invasive liver resection for hepatocellular carcinoma of patients with liver damage B: a propensity score-based analysis. Hepatol Res. 2018;48(7):539-548. https://doi.org/10.1111/hepr.13057
  5. Shen J, Li C, Yan L, Li B, Xu M, Yang J, Wang W, Wen T. Short- and long-term outcomes between young and older HCC patients exceeding the Milan criteria after hepatectomy. Ann Hepatol. 2017;17(1):134-143. https://doi.org/10.5604/01.3001.0010.7545
  6. Strandberg Holka P, Eriksson S, Eberhard J, Bergenfeldt M, Lindell G, Sturesson C. Significance of poor performance status after resection of colorectal liver metastases. World J Surg Oncol. 2018;16(1):3. https://doi.org/10.1186/s12957-017-1306-1
  7. Jung K, Kim Y, Heo Y, Lee JC, Youn S, Moon J, Kim J, Kim TY, Kim B, Wang H. Management of severe blunt liver injuries by applying the damage control strategies with packing-oriented surgery: experiences at a single institution in Korea. Hepatogastroenterology. 2015;62(138):410-416.
  8. Rosales A, Que FG. Spontaneous hepatic hemorrhage: A single institution’s 16-year experience. Am Surg. 2016;82(11):1117-1120.
  9. Patkowski W, Krasnodębski M, Grąt M, Masior Ł, Krawczyk M. Surgical treatment of hepatic Echinococcus granulosus. Prz Gastroenterol. 2017;12(3):199-202. https://doi.org/10.5114/pg.2017.70473
  10. Patkowski W, Kotulski M, Remiszewski P, Grąt M, Zieniewicz K, Kobryń K, Najnigier B, Ziarkiewicz-Wróblewska B, Krawczyk M. Alveococcosis of the liver - strategy of surgical treatment with special focus on liver transplantation. Transpl Infect Dis. 2016;18(5):661-666. https://doi.org/10.1111/tid.12574
  11. Ibis C, Asenov Y, Akin M, Azamat IF, Sivrikoz N, Gurtekin B. Factors affecting liver regeneration in living donors after hepatectomy. Med Sci Monit. 2017;23:5986-5993.
  12. Fredriksson MI, Gustafsson AK, Bergstrom KG, Asman BE. Constitutionally hyperreactive neutrophils in periodontitis. J Periodontol. 2003;74:(2):219-224.
  13. Майбородин И.В, Колесников И.С., Шевела А.И., Шеплев Б.В., Дровосеков М.Н., Тодер М.С. Влияние фибринового сгустка при повреждении кости нижней челюсти в эксперименте. Стоматология. 2011;90(4):9-12.
  14. Майбородин И.В., Матвеева В.А., Колесников И.С., Дровосеков М.Н., Тодер М.С., Шевела А.И. Регенерация поврежденной кости нижней челюсти крыс после использования аутологичных стромальных стволовых клеток костномозгового происхождения, адсорбированных на фибриновом сгустке. Морфология. 2011;140(6):79-85.
  15. Гаврилин В.Н., Шкурупий В.А. Влияние накопления поливинилпирролидона в синусоидальных клетках печени на характер токсического повреждения органа. Бюлл. СО РАМН. 1995;(2):24-28.