Дунаевская С.С.

ФГБОУ ВО «Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого» Минздрава России

Сергеева Е.Ю.

ФГБОУ ВО «Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого» Минздрава России

Титова Н.М.

ФГБОУ ВО «Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого» Минздрава России

Фефелова Ю.А.

ФГБОУ ВО «Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого» Минздрава России

Деулина В.В.

ФГБОУ ВО «Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого» Минздрава России

Роль супероксиддисмутазы при развитии острого панкреатита: от антиоксидантной защиты до регуляции активности генов

Авторы:

Дунаевская С.С., Сергеева Е.Ю., Титова Н.М., Фефелова Ю.А., Деулина В.В.

Подробнее об авторах

Прочитано: 1724 раза


Как цитировать:

Дунаевская С.С., Сергеева Е.Ю., Титова Н.М., Фефелова Ю.А., Деулина В.В. Роль супероксиддисмутазы при развитии острого панкреатита: от антиоксидантной защиты до регуляции активности генов. Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова. 2024;(4):112‑117.
Dunaevskaya SS, Sergeeva EYu, Titova NM, Fefelova YuA, Deulina VV. Role of superoxide dismutase in acute pancreatitis: from antioxidant protection to gene regulation. Pirogov Russian Journal of Surgery. 2024;(4):112‑117. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/hirurgia2024041112

Рекомендуем статьи по данной теме:

Введение

Активность ферментов антиоксидантной системы играет важную роль в патогенезе развития большого количества заболеваний. Это, прежде всего, болезни, базовые механизмы развития которых включают такой типовой патологический процесс, как воспаление, в частности острый панкреатит [1]. С другой стороны, ряд воздействий, модулирующих метаболизм клеток, например ограничение калорийности, тоже может индуцировать усиление или снижение активности антиоксидантной защиты. Одним из ключевых ферментов антиоксидантной системы является супероксиддисмутаза (СОД). СОД — фермент, принимающий участие в реакции дисмутации супероксидных анион-радикалов. Известно, что существуют три изоформы СОД, отличающиеся по структуре, металлам, выполняющим каталитическую функцию, и локализацией: цитозольная (Cu, Zn-СОД, СОД1), митохондриальная (Mn-СОД, СОД2), экстрацеллюлярная (Э-СОД, СОДЗ). Согласно ряду исследований, СОД считается главным компонентом антиоксидантной защиты эритроцитов [2]. В данном обзоре проанализированы изменение активности СОД, индуцированное различными факторами, предполагаемые механизмы и роль в физиологических и патологических процессах.

Цель обзора — представить современные данные о роли СОД в антиоксидантной защите и регуляции активности генов.

Изменение активности СОД при остром панкреатите

Целым рядом исследователей показаны изменение активности СОД при остром панкреатите, механизмы выявленных изменений, многообразная роль СОД в патогенезе заболевания. Так, снижение активности СОД было выявлено у крыс с острым панкреатитом, инициированным инфузией 5% раствора натрия таурохолата в главный проток поджелудочной железы при содержании животных на гиперлипидемической диете, что сопровождалось повышением уровня малонового диальдегида, снижением уровня восстановленого глутатиона и инфильтрацией ткани поджелудочной железы MPO-позитивными нейтрофилами и CD68-позитивными макрофагами. При этом происходило усиление экспрессии TLR4, обусловленное повышением в крови уровня свободных жирных кислот. В результате этого происходили активация фактора транскрипции NF-κB и транслокация его в ядро клетки, усиление экспрессии фактора некроза опухоли α (TNF-α) и маркера некроптоза RIP3. Up-регуляция RIP3 сигналинга играет ведущую роль при индукции и прогрессировании острого панкреатита в используемой животной модели [3]. TLR4 является представителем Toll-подобных рецепторов, семейства трансмембранных белков, играющих одну из ключевых ролей в воспалении. TLR4 способен взаимодействовать с рядом экзогенных и эндогенных лигандов, осуществляя медиацию процесса воспаления. В ткани поджелудочной железы выявлен высокий уровень экспрессии TLR4, ингибирование экспрессии этого рецептора при остром панкреатите приводило к подавлению некроза ацинарных клеток и снижению степени тяжести острого панкреатита [4]. Кроме того, установлено, что при остром панкреатите TLR4 принимает участие в регуляции синтеза цитокинов, рекрутинге нейтрофилов и повреждении тканей [5].

Предварительное антиоксидантное и антивоспалительное воздействие в течение 7 сут на мышей с последующей индукцией острого панкреатита церулином приводило к достоверному уменьшению уровней липазы и амилазы в плазме крови мышей. Уровень малонового диальдегида и нитритов в группе мышей с острым панкреатитом после предварительного лечебного воздействия тоже был достоверно ниже по сравнению с животными с острым панкреатитом контрольной группы. Кроме того, нивелировалось снижение активности СОД и каталазы, обусловленное острым панкреатитом. Для острого панкреатита характерно повышение уровней провоспалительных цитокинов, таких как интерлейкин(IL)-6, IL-1β, TNF-α. Известно, что IL-6 посредством взаимодействия с белком gp 130 принимает участие в активации сигнального пути JAK-STAT [6]. Предварительное антиоксидантное и антивоспалительное лечение приводило к снижению содержания этих провоспалительных цитокинов в плазме крови и одновременному повышению уровня IL-10, обладающего антивоспалительными свойствами у мышей с индуцированным острым панкреатитом. Кроме того, снижалась экспрессия NF-κB и циклооксигеназы (COX-2) [7].

Использование миметика СОД в мышиной модели острого панкреатита in vitro предотвращало развитие присущих воспалению и окислительному стрессу изменений в макрофагах, в экспериментах in vivo снижало морфологические и клинические проявления острого панкреатита, а также уменьшало экспрессию p65-NF-κB и ацетилирование гистона H3 в остатках лизина K14, K56 и K79 [1].

Установлено, что СОД1 принимает участие в предотвращении окисления липидов и белков, приводящего к разрушению и гибели эритроцитов, что может явиться причиной развития анемии при остром панкреатите [8]. Кроме того, СОД2 может препятствовать повышению ригидности и снижению деформируемости эритроцитов вследствие окислительного стресса, способствующих повышенному разрушению красных клеток крови [9].

Использование природных антиоксидантов и иммуномодуляторов при повреждении легких, обусловленном острым панкреатитом в животной модели острого панкреатита, способно повышать сниженный уровень СОД, снижать уровни TNF-α и IL-6, а также увеличивать концентрацию противовоспалительного цитокина IL-10 в ткани легких. Предполагается, что этот эффект обусловлен up-регуляцией экспрессии таких белков сигнального пути Nrf2/ARE, как Cyt-Nrf2, HO-1 и NQO1 [10].

В церулин-индуцированной мышиной модели острого панкреатита противовоспалительная, антиоксидантная терапия с дополнительным антипролиферативным эффектом приводила к повышению сниженного уровня СОД, уменьшению инфильтрации поджелудочной железы нейтрофилами и макрофагами, снижению уровней в плазме крови провоспалительных цитокинов TNF-α и IL-6, что, как предполагают авторы исследования, обусловлено повышением экспрессии ядерного фактора эритроидного 2-родственного фактора 2 (Nrf2) и, как следствие, экспрессии Nrf2-регулируемых генов, включающих HO-1, SOD1, GPx1 и NQO1, а также снижением экспрессии фактора транскрипции NF-κB [11].

Индукция острого панкреатита в таурохолатной крысиной модели заболевания сопровождалась активацией моноцитов/макрофагов и полиморфно-ядерных гранулоцитов, приводящей к снижению активности СОД и повышению продукции цитокинов, включающих TNF-α, IL-1, IL-6, IL-8, PAF, ICAM-1, а также таких медиаторов воспаления, как простагландины, лейкотриены, тромбоксаны, фактор активации тромбоцитов, активные формы кислорода [ROS], оксид азота [NO], протеазы. В результате развивался синдром системного воспалительного ответа (SIRS), сопровождающийся тяжелым острым поражением легких, развитием шока, почечной недостаточности, синдрома мультиорганной дисфункции (MODS) и высоким процентом гибели животных опытной группы [12]. Кроме того, при морфологическом исследовании ткани поджелудочной железы было выявлено повышение количества клеток, гибнущих путем апоптоза. Использование антиоксидантной и противоишемической терапии приводило к повышению активности СОД и увеличению продолжительности жизни экспериментальных животных [12].

В экспериментальной модели церулин-индуцированного панкреатита, наряду со снижением активности СОД, снижались активность глутатионпероксидазы и уровень восстановленного глутатиона. При этом повышался уровень липидных пероксидов, свидетельствующий об активации окислительного стресса, уровни TNF-α и IL-1β тоже были повышены [13].

Выявлен ряд полиморфизмов гена СОД, в частности острый деструктивный панкреатит R213G, при котором создаются предпосылки для развития острого воспаления. К числу механизмов, обусловливающих этот эффект, относится изменение уровня экспрессии различных микроРНК [14]. Кроме того, в последние годы появились исследования о регуляторной взаимосвязи между кольцевыми РНК и микроРНК [15]. Так, в исследованиях было доказано, что в модели церулин-индуцированного панкреатита происходит понижение экспрессии miR-212-3p, что сопровождалось снижением активности СОД и повышением уровня экспрессии кольцевой РНК circ_0073748. Изменение экспрессии miR-212-3p приводит к up-регуляции TNF рецептор-ассоциированного фактора 3 (TRAF3), принадлежащего к TRAF-семейству сигнальных трансдьюсеров как для TNF, так и для IL-1/TLR-рецептора, который необходим для активации канонического сигнального пути NF-κB, играющего одну из ключевых ролей в патогенезе острого панкреатита [16, 17].

Тем не менее рядом исследователей показано повышение концентрации одной из изоформ СОД на фоне снижения других изоформ при остром панкреатите. Так, M. Ściskalska и соавт. при исследовании изменения концентрации СОД1, СОД2 и СОД3 у пациентов с острым панкреатитом установили, что уровень СОД1 в плазме крови больных увеличивался, в то время как уровни СОД2 и СОД3 снижались по сравнению со здоровыми индивидуумами. Кроме того, выявлено, что наличие однонуклеотидного полиморфизма гена СОД1 rs2070424 повышает активность этого фермента и продукцию IL-6, что в свою очередь может повышать риск более тяжелого течения заболевания [8].

Исследования активности СОД проводятся не только на экспериментальных животных моделях острого панкреатита, но и в клинической практике. Так, показано значительное снижение активности СОД у пациентов с тяжелым течением острого панкреатита, сопровождающимся развитием почечной недостаточности, тяжелыми циркуляторными нарушениями и высокой смертностью [18].

Изменение активности СОД при снижении калорийности питания

Уже не вызывает сомнений, что снижение калорийности питания относится к числу таких воздействий, которые могут играть роль в индукции изменений метаболизма и активности ферментов [19]. Так, снижение калорийности питания у женщин с повышенной массой тела приводило к уменьшению активности глутатионпероксидазы 1 и СОД1 [20]. Снижение калорийности питания в сочетании с использованием цинка у пациентов с избыточным весом и неалкогольной жировой болезнью печени приводило к повышению активности СОД [21]. Ограничение калорийности питания в течение 6 мес приводило к повышению экспрессии мессенджерной РНК коактиватора 1-α пероксисомного пролифератор-активируемого рецептора γ (PGC1-α) и митохондриального транскрипционного фактора A (TFAM), являющихся ключевыми маркерами, вовлеченными в биогенез митохондрий, содержание митохондриальной ДНК и активность СОД [20].

Нарушения питания в раннем возрасте создают предпосылки для развития метаболических заболеваний в последующем. Повышение калорийности питания у мышат приводило к развитию изменений в печени животных, характеризующихся микростеатозом и фиброзом, ассоциированными с окислительным стрессом, и преждевременного, индуцированного дисбалансом окислительно-восстановительного равновесия старения. Снижение калорийности питания на 20% в течение 1 мес приводило к морфологическим изменениям в печени, свидетельствующим о редукции микростеатоза, что сопровождалось повышением активности СОД, кроме того, выявлялось снижение экспрессии липофусцина, p21, p53, Acp53, p16, однако экспрессия pRb/Rb и sirtuin-1 повышалась [22].

Установлено, что при гипертрофии миокарда происходит активация окислительного стресса, увеличивается продукция H2O2, при этом снижается активность СОД и глутатионпероксидазы. Снижение калорийности предотвращает нарушение активности ферментов антиоксидантой системы [23]. Кроме того, снижение калорийности предотвращало индуцированное акролеином, высокореактивным ненасыщенным альдегидом, развитие окислительного стресса у крыс, приводящее к нарушению активности СОД и снижению уровня глутатиона. Сделано предположение, что этот эффект обусловлен активацией сигнального пути BDNF/TrkB [24]. C. David и соавт. показали, что снижение калорийности питания мышей с изопротеренол-индуцированной гипертрофией миокарда приводило к снижению показателей окислительного стресса и повышению сниженной при индукции гипертрофии активности СОД. Механизм этого эффекта частично ассоциирован с улучшением при снижении калорийности функционирования митохондриальных АТФ-чувствительных калиевых каналов. Ингибирование этих каналов приводило к нивелированию положительного эффекта ограничения калорийности питания [25]. Ограничение калорийности на 50% от нормы на протяжении 3 мес у крыс с овариэктомией, моделирующей менопаузальный период, приводило к повышению активности СОД и других антиоксидантных ферментов и улучшению состояния сердечно-сосудистой системы [26]. Снижение калорийности питания у крыс с индуцированным введением 10% раствора фруктозы в течение 3 мес приводило к улучшению состояния сердечно-сосудистой системы у животных и снижению повышенных вследствие развития метаболического синдрома уровней TNF-α, ингибитора активатора плазминогена (PAI-1), малонового диальдегида (MDA). В то же время происходила нормализация сниженной активности СОД и сниженного уровня восстановленного глутатиона [27].

При ожирении увеличение количества и/или объема адипоцитов, их дисфункция приводят к повышенной выработке провоспалительных биологически активных веществ, способствующих развитию длительного вялотекущего воспаления, играющего важную роль в патогенезе ассоциированных с ожирением заболеваний. При хроническом воспалении происходит аккумуляция активных форм кислорода (АФК) и снижение активности антиоксидантной защиты, что интенсифицирует окислительный стресс. Повышение продукции АФК при ожирении обусловлено дисбалансом адипокинов, митохондриальным и пероксисомальным окислением жирных кислот, повышением продукции АФК при работе дыхательной цепи, обусловленным реперфузией, следующей за гипоксией. Снижение калорийности питания у пациентов с ожирением привело к увеличению активности СОД и снижению плазменных уровней лептина, С-реактивного белка, IL-6 и TNF-α, что происходило на фоне снижения веса и улучшения общего самочувствия пациентов [28]. Ограничение калорийности повышает экспрессию флавинсодержащей монооксигеназы 3, фермента, up-регуляция которого ассоциирована с повышенной продолжительностью жизни экспериментальных животных. Это сопровождалось повышением активности СОД, снижением уровней провоспалительных цитокинов, в частности IL-6 в плазме крови, снижением уровня MDA, общего холестерина и триглицеридов в печени, снижением уровней маркеров старения β-gal и p16 [29, 30].

Продолжительное снижение калорийности питания у самок мышей линии MMTV-TGF-α (C57BL/6) с развивающимся во второй половине жизни раком молочной железы привело к повышению активности СОД и ряда других ферментов антиоксидантной системы, что подчеркивает положительную роль снижения калорийности при ассоциированных со старением и развитием окислительного стресса заболеваниях, к числу которых относятся и злокачественные опухоли [31]. Сочетание режима сниженной калорийности и использования синбиотиков приводило к повышению активности СОД у пациенток с онкологическими заболеваниями молочной железы. Выявленный эффект связывают со снижением активности провоспалительных факторов и увеличением активности антивоспалительных [32].

К числу доказательств того, что снижение калорийности питания может явиться фактором, регулирующим активность генов, относится исследование, выполненное Q. Qiao и соавт., в котором благодаря результатам протеомного анализа было установлено, что режим ограничения калорийности способен повышать экспрессию СОД [33].

Заключение

Таким образом, СОД не только является одним из ключевых ферментов антиоксидантной защиты, но и способна выполнять функции фактора транскрипции, регулируя активность сигнальных путей, что может стать патогенетической базой для новых методов лечения заболеваний.

Финансирование. Статья выполнена при финансовой поддержке РНФ в рамках научного проекта №22-25-20067 и Красноярского краевого фонда поддержки научной и научно-технической деятельности в рамках научного проекта №26.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Khurana A, Anchi P, Allawadhi P, Kumar V, Sayed N, Packirisamy G, Godugu C. Superoxide dismutase mimetic nanoceria restrains cerulein induced acute pancreatitis. Nanomedicine. 2019;14(14):1805-1825. https://doi.org/10.2217/nnm-2018-0318
  2. Revin VV, Gromova NV, Revina ES, Samonova AY, Tychkov AY, Bochkareva SS, Moskovkin AA, Kuzmenko TP. The influence of oxidative stress and natural antioxidants on morphometric parameters of red blood cells, the hemoglobin oxygen binding capacity, and the activity of antioxidant enzymes. BioMed Research International. 2019;1:1-12.  https://doi.org/10.1155/2019/2109269
  3. Hong YP, Yu J, Su YR, Mei FC, Li M, Zhao KL, Zhao L, Deng WH, Chen C, Wang WX. High-Fat Diet Aggravates Acute Pancreatitis via TLR4-Mediated Necroptosis and Inflammation in Rats. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2020;8:8172714. https://doi.org/10.1155/2020/8172714
  4. Wu J, Ma X, Chen W. Protective effects of HTD4010, a Reg3α/PAP-derived peptide, in mouse model of acute pancreatitis via toll-like receptor 4 pathway. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2019;512(4):670-677.  https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2019.03.107
  5. Chenxu G, Minxuan X, Yuting Q. Loss of RIP3 initiates annihilation of high-fat diet initialized nonalcoholic hepatosteatosis: a mechanism involving toll-like receptor 4 and oxidative stress. Free Radical Biology & Medicine. 2019;134:23-41.  https://doi.org/10.1016/j.freeradbiomed.2018.12.034
  6. Manohar M, Verma AK, Venkateshaiah SU, Sanders NL, Mishra A. Pathogenic Mechanisms of Pancreatitis. World Journal of Gastrointestinal Pharmacology and Therapeutics. 2017;8:10-25.  https://doi.org/10.4292/wjgpt.v8.i1.10
  7. Chelpuri Y, Pabbathi S, Alla GR, Yadala RK, Kamishetti M, Banothu AK, Boinepally R, Bharani KK, Khurana A. Tropolone derivative hinokitiol ameliorates cerulein-induced acute pancreatitis in mice. International Immunopharmacology. 2022;109:108915.
  8. Ściskalska M, Ołdakowska M, Marek G, Milnerowicz H. Changes in the Activity and Concentration of Superoxide Dismutase Isoenzymes (Cu/Zn SOD, MnSOD) in the Blood of Healthy Subjects and Patients with Acute Pancreatitis. Antioxidants. 2020;9:948. 
  9. Ołdakowska M, Ściskalska M, Kepinska M, Marek G, Milnerowicz H. Association of Genetic Variants in IL6 Gene (rs1800795) with the Concentration of Inflammatory Markers (IL-6, hs-CRP) and Superoxide Dismutase in the Blood of Patients with Acute Pancreatitis-Preliminary Findings. Genes. 2022;13(2):290. 
  10. Hu Y, Yang W. Paeoniflorin Can Improve Acute Lung Injury Caused by Severe Acute Pancreatitis through Nrf2/ARE Pathway. Computational and Mathematical Methods in Medicine. 2022;2022:5712219.
  11. Yang J, Tang X, Ke X, Dai Y, Shi J. Triptolide Suppresses NF-κB-Mediated Inflammatory Responses and Activates Expression of Nrf2-Mediated Antioxidant Genes to Alleviate Caerulein-Induced Acute Pancreatitis. International Journal of Molecular Sciences. 2022;23(3):1252. https://doi.org/10.3390/ijms23031252
  12. Ergücük H, Işık S, İflazoğlu N, Kayaalp C, Saraç M, Gürsul S. The effect of trimethazidine on mortality in an experimental acute pancreatitis model1. Turkish Journal of Gastroenterology. 2020;31(8):549-557. 
  13. Hagar HH, Almubrik SA, Attia NM, Aljasser SN. Mesna Alleviates Cerulein-Induced Acute Pancreatitis by Inhibiting the Inflammatory Response and Oxidative Stress in Experimental Rats. Digestive Diseases and Sciences. 2020;65(12):3583-3591.
  14. Ohlstrom D, Hernandez-Lagunas L, Garcia AM, Allawzi A, Karimpour-Fard A, Sucharov CC, Nozik-Grayck E. MicroRNA regulation postbleomycin due to the R213G extracellular superoxide dismutase variant is predicted to suppress inflammatory and immune pathways. Physiological Genomics. 2020;52(6):245-254. 
  15. Li K, Lv C, Zhang W, Fang J. CircFN1 upregulation initiated oxidative stress-induced apoptosis and inhibition of proliferation and migration in trophoblasts via circFN1-miR-19a/b-3p-ATF2 ceRNA network. Reproductive Biology. 2022;22(2):100631.
  16. Shi JH, Sun SC. Tumor necrosis factor receptor-associated factor regulation of nuclear factor kappaB and mitogen-activated protein kinase pathways. Frontiers in Immunology. 2018;9:1849.
  17. Fochi S, Bergamo E, Serena M, Mutascio S, Journo C, Mahieux R, Ciminale V, Bertazzoni U, Zipeto D, Romanelli MG. TRAF3 Is Required for NF-κB Pathway Activation Mediated by HTLV Tax Proteins. Frontiers in Microbiology. 2019;10:1302. https://doi.org/10.3389/fmicb.2019.01302
  18. Zheng X, Li L, Zhu Y, Huang X, Zhang Y, Yu B, He W, Lv N. Superoxide Dismutase Predicts Persistent Circulation Failure and Mortality in the Early Stage of Acute Pancreatitis. Digestive Diseases and Sciences. 2020;65(12):3551-35572.
  19. von Frieling J, Roeder T. Factors that affect the translation of dietary restriction into a longer life. IUBMB Life. 2020;72(5):814-824. 
  20. Liu B, Hutchison AT, Thompson CH, Lange K, Wittert GA, Heilbronn LK. Effects of Intermittent Fasting or Calorie Restriction on Markers of Lipid Metabolism in Human Skeletal Muscle. The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 2021;106(3):e1389-e1399.
  21. Fathi M, Alavinejad P, Haidari Z, Amani R. The effects of zinc supplementation on metabolic profile and oxidative stress in overweight/obese patients with non-alcoholic fatty liver disease: A randomized, double-blind, placebo-controlled trial. Journal of Trace Elements in Medicine and Biology. 2020;62:126635.
  22. Yzydorczyk C, Li N, Rigal E, Chehade H, Mosig D, Armengaud JB, Rolle T, Krishnasamy A, Orozco E, Siddeek B, Juvet C, Vergely C, Simeoni U. Calorie Restriction in Adulthood Reduces Hepatic Disorders Induced by Transient Postnatal Overfeeding in Mice. Nutrients. 2019;11(11):2796.
  23. David CEB, Lucas AMB, Cunha PLO, Viana YIP, Yoshinaga MY, Miyamoto S, Filho ABC, Varela ALN, Kowaltowski AJ, Facundo HT. Calorie restriction changes lipidomic profiles and maintains mitochondrial function and redox balance during isoproterenol-induced cardiac hypertrophy. Journal of Physiology and Biochemistry. 2022;78(1):283-294. 
  24. Huang YJ, Zhang L, Shi LY, Wang YY, Yang YB, Ke B, Zhang TY, Qin J. Caloric restriction ameliorates acrolein-induced neurotoxicity in rats. Neurotoxicology. 2018;65:44-51.  https://doi.org/10.1016/j.neuro.2018.01.003
  25. David CEB, Lucas AMB, Araújo MTS, Coelho BN, Neto JBS, Portela BRC, Varela ALN, Kowaltowski AJ, Facundo HT. Calorie restriction attenuates hypertrophy-induced redox imbalance and mitochondrial ATP-sensitive K+ channel repression. The Journal of Nutritional Biochemistry. 2018;62:87-94. 
  26. Rodrigues CM, Domingues TE, de Sousa Santos C, Costa-Pereira LV, Mendes BF, Dos Santos JM, Costa KB, Silva G, Cantuária VL, Rocha-Vieira E, Dias-Peixoto MF, Honorato-Sampaio K. Cardioprotective effects of severe calorie restriction from birth in adult ovariectomized rats. Life Sciences. 2021;275:119411.
  27. Çevikelli-Yakut ZA, Özçelik R, Çevik Ö, Şener TE, Şener G. Exercise and caloric restriction improve cardiovascular and erectile function in rats with metabolic syndrome. International Journal of Impotence Research. 2020;33(8):844-853. 
  28. Kanikowska D, Kanikowska A, Swora-Cwynar E, Grzymisławski M, Sato M, Bręborowicz A, Witowski J, Korybalska K. Moderate Caloric Restriction Partially Improved Oxidative Stress Markers in Obese Humans. Antioxidants. 2021;10(7):1018.
  29. Дунаевская С.С., Сергеева Е.Ю., Деулина В.В., Доморацкая Е.А. Роль однонуклеотидных полиморфизмов генов провоспалительных факторов как предикторов риска развития и тяжести течения острого панкреатита. Сибирское медицинское обозрение. 2022;5(137):24-27. 
  30. Guo D, Shen Y, Li W, Li Q, Miao Y, Zhong Y. Upregulation of flavin-containing monooxygenase 3 mimics calorie restriction to retard liver aging by inducing autophagy. Aging. 2020;12(1):931-944. 
  31. Cicekdal MB, Tuna BG, Charehsaz M, Cleary MP, Aydin A, Dogan S. Effects of long-term intermittent versus chronic calorie restriction on oxidative stress in a mouse cancer model. IUBMB Life. 2019;71(12):1973-1985.
  32. Navaei M, Haghighat S, Janani L, Vafa S, Saneei Totmaj A, Raji Lahiji M, Emamat H, Salehi Z, Amirinejad A, Izad M, Zarrati M. The Effects of Synbiotic Supplementation on Antioxidant Capacity and Arm Volumes in Survivors of Breast Cancer-Related Lymphedema. Nutrition and Cancer. 2020;72(1):62-73. 
  33. Qiao Q, Bouwman FG, van Baak MA, Roumans NJT, Vink RG, Coort SLM, Renes JW, Mariman ECM. Adipocyte abundances of CES1, CRYAB, ENO1 and GANAB are modified in-vitro by glucose restriction and are associated with cellular remodelling during weight regain. Adipocyte. 2019;8(1):190-200. 

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.