Артемьева Е.А.

ФГАОУ ВО «Уральский федеральный университет имени первого Президента России Б.Н. Ельцина

Пахарукова М.И.

ГАУЗ СО «Клинико-диагностический центр город Екатеринбург»;
ФГБУН «Институт иммунологии и физиологии Уральского отделения Российской академии наук»

Лагерева Ю.Г.

ГАУЗ СО «Клинико-диагностический центр город Екатеринбург»

Возможности применения иммуноцитохимического двойного окрашивания p16/Ki-67 в диагностике интраэпителиальных поражений шейки матки

Авторы:

Артемьева Е.А., Пахарукова М.И., Лагерева Ю.Г.

Подробнее об авторах

Журнал: Лабораторная служба. 2023;12(4): 37‑43

Прочитано: 1771 раз


Как цитировать:

Артемьева Е.А., Пахарукова М.И., Лагерева Ю.Г. Возможности применения иммуноцитохимического двойного окрашивания p16/Ki-67 в диагностике интраэпителиальных поражений шейки матки. Лабораторная служба. 2023;12(4):37‑43.
Artemjeva EA, Pakharukova MI, Lagereva YuG. Application of p16/Ki-67 double-stained immunohistochemistry in diagnosis of cervical intraepithelial lesions. Laboratory Service. 2023;12(4):37‑43. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/labs20231204137

Рекомендуем статьи по данной теме:

Введение

Рак шейки матки (РШМ) занимает пятое место в структуре заболеваемости злокачественными новообразованиями у женщин в России [1]. Данные по выявляемости РШМ не имеют тенденции к снижению, несмотря на то что данная нозология должна подлежать высокоэффективному и экономически целесообразному скринингу с возможностью ранней диагностики [2]. Главной задачей является обнаружение предопухолевого процесса — цервикальной интраэпителиальной дисплазии (CIN). Легкая дисплазия (CIN1) относится к интраэпителиальным изменениям низкой степени (LSIL) с высокой вероятность регрессии. Истинным предопухолевым состоянием считаются интраэпителиальные изменения высокой степени (CIN2—3, HSIL). Они предшествуют РШМ на протяжении многих лет и даже десятилетий и обладают высокой вероятностью прогрессии в инвазивный процесс [3—5]. В последние годы во всем мире произошел сдвиг в подходе к программам скрининга РШМ от первичного цитологического исследования с окраской по Папаниколау (Пап-теста) к тестированию на ДНК вируса папилломы человека (ВПЧ) с помощью молекулярных методов исследования [6, 32]. Согласно рекомендациям Американского общества по кольпоскопии и патологии шейки матки, а также клиническим рекомендациям, в России наилучшим вариантом скрининга для женщин в возрасте 30—65 лет является совместное использование этих методов, которое позволяет повысить их чувствительность и специфичность в диагностике заболевания [7, 36]. В последнее десятилетие обсуждается внедрение иммуноцитохимического двойного окрашивания p16/Ki-67 в качестве метода стратификации ВПЧ-положительных женщин, а также пациенток с результатами цитологии ASCUS и LSIL [8—10]. Использование данного метода предполагает оптимизацию баланса между чувствительностью и специфичностью клинического скрининга, а также уменьшение количества направлений на кольпоскопию с последующим гистологическим исследованием [11, 12].

Цель настоящего обзора — изучение показателей эффективности иммуноцитохимического исследования p16/Ki-67 в диагностике интраэпителиальных поражений разной степени по сравнению с цитологическим методом и ВПЧ-тестированием.

Принцип метода двойного окрашивания p16/Ki-67. P16INK4a (p16) — ингибитор циклинзависимой киназы 2A (CDKN2A), кодируемый геномом на хромосоме 9p21, является регулятором пути клеточного цикла cyclinD-CDK4/6-pRb-E2F [12—14]. Он может связываться с CDK4 и CDK6, образующими белковый комплекс с циклином D для фосфорилирования pRB (белка ретинобластомы), в результате чего pRB отделяется от фактора транскрипции E2F1, что ведет к транслокации E2F1 в ядро, где индуцируется транскрипция генов-мишеней, способствующих переходу клетки из фазы G1 в фазу S. Таким образом, p16 является ингибитором CDK и тормозит клеточный цикл [13, 15]. Экспрессия p16 снижается при многих формах рака из-за мутации, делеции гена или гиперметилирования его промотора [16, 17]. Однако в случаях плоскоклеточного интраэпителиального поражения шейки матки высокой степени и карцином, вызванных инфекцией ВПЧ высокого риска, которая способствует неопластической прогрессии за счет действия вирусных онкопротеинов E6 и E7, p16 сверхэкспрессируется. Это обусловлено конкуренцией с протеином Е7 за связывание с белком pRb. Утрата функций pRb ведет к накоплению p16 в клетках через петлю отрицательной обратной связи [18]. Таким образом, экспрессия p16 может использоваться в качестве сурогатного биомаркера ВПЧ-инфекции. Однако окрашивание лишь на p16 в цитологическом препарате ограниченно, поскольку p16 экспрессируется и в нормальных клетках шейки матки.

Ki-67 является ядерным антигеном, который кодируется геном MKI67 на 10-й хромосоме и экспрессируется во всех фазах клеточного цикла, кроме фазы G0 [19, 20]. В нормальных физиологических условиях его экспрессия ограничена базальным слоем плоского эпителия шейки матки [26]. Соответственно, он служит маркером пролиферации клеток и надежным предиктором прогрессирования ранних интраэпителиальных поражений, поскольку регулирует транскрипцию [21]. Обнаружение Ki-67 широко используется в дополнительной диагностике предрака и рака шейки матки [22].

Коэкспрессия p16/Ki-67 диагностируется с помощью антител против соответствующих антигенов. Положительный контроль на p16 в нормальных клетках определяется как коричневое окрашивание цитоплазмы, а на Ki-67 — как красная ядерная окраска. Коэкспрессия характеризуется отображением обоих сигналов в одной и той же клетке. В нормальном эпителии шейки матки коэкспрессия p16/Ki-67 не регистрируется, так как эти белки имеют обратные функции. Таким образом, совместное присутствие обоих маркеров в одной и той же клетке можно интерпретировать как показатель нарушения регуляции клеточного цикла, вызванного в подавляющем большинстве случаев онкопротеинами ВПЧ высокого онкогенного риска [23—25]. Положительный и отрицательный результаты двойного окрашивания представлены на рисунке.

Рис. а, б — клетки эпителия, негативные в отношении коэкспресии р16/Ki-67; в, г — положительная коэкспрессия р16/Ki-67. CINtec PLUS Cytology, ×20.

Показатели эффективности оценки экспресии p16/Ki-67 у пациенток с ASCUS и LSIL. Согласно исследованию H.A. Katki и совт., пациентки с результатом цитологического исследования ASCUS и LSIL имеют 5-летний риск развития CIN3+, который составляет 2,6% и 5,2% соответственно [27]. Таким образом, важно идентифицировать потенциальный риск формирования HSIL у таких женщин. Предыдущие исследования показали, что p16/Ki-67 может быть использован как инструмент для стратификации риска ВПЧ-позитивных пациенток с поражениями шейки матки низкой степени, они сообщают о высоких значениях чувствительности, аналогичных значениям теста детекции ВПЧ [28—30]. Исследование M. Gothwal и соавт. [31] проводилось с участием 46 женщин. Результат последующей гистологии CIN2 и более тяжелых поражений у пациенток с ASCUS составил 21,42%. При этом вероятность CIN2+-положительных поражений у больных с цитологическим диагнозом LSIL была выше и достигала 33,3%. Чувствительность (Se) и специфичность (Sp) двойного окрашивания составили 100% и 87,5% соответственно. В своей работе D. Das и соавт. проводили последующую стратификацию пациенток с результатами цитологического исследования ASCUS и LSIL с помощью оценки экспрессии p16/Ki-67. Чувствительность и специфичность метода составили 100% и 70% (для результата ASCUS), тогда как для LSIL значения составили 87,5% и 100% соответственно. В данном исследовании распространенность CIN2+ у пациенток с ASCUS и LSIL составила 53% и 58,3% [32].

Напротив, исследование, проведенное S. Aromseree и соавт., показало низкую чувствительность иммуноцитохимического метода [33]. У пациенток с результатом ASCUS (n=21) Se и Sp различных методов составили: тест на ДНК ВПЧ 21 типа — 87,5% и 46,2%, тест на ДНК ВПЧ высокого канцерогенного риска (ВКР) — 50% и 69,2%, p16/Ki-67 — 36,9% и 84,6% соответственно. При комбинации методов показатели остались идентичны. Для случаев LSIL (n=26) Se и Sp различных методов составили: тест на ДНК ВПЧ 21 типа — 87,5% и 84,2%, тест на ДНК ВПЧ ВКР — 50% и 100%, p16/Ki-67 — 29,2% и 100% соответственно. При комбинации методов: тест на ДНК ВПЧ 21 типа совместно с p16/Ki-67 — 25,0% и 100%, тест на ДНК ВПЧ ВКР совместно с p16/Ki-67 — 16,7% и 100%.

Исследование, проведенное в Греции с участием 200 женщин, показало, что среди пациенток с ASCUS и LSIL чувствительность двойного окрашивания p16/Ki-67 составила 90,4% и 95,0% соответственно, что выше по сравнению с тестом детекции ВПЧ ВКР (52,3% и 65,5%). При этом чувствительность метода оказалась выше и в сравнении с кольпоскопическим исследованием. Однако не было статистически значимых различий в специфичности [34].

В своей работе J. Yu и соавт. отобрали 420 случаев ASCUS (n=318) и LSIL (n=102) по результатам цитологического исследования шейки матки. При последующем обследовании у пациенток с ASCUS чувствительность двойного иммуноокрашивания p16/Ki-67 и теста ВПЧ ВКР для диагностики CIN2+ составила 82,6% и 91,3%, а специфичность — 88,8% и 63,7% соответственно. У пациенток с LSIL чувствительность двойного иммуноокрашивания p16/Ki-67 и теста ВПЧ ВКР составила 86,7% и 100,0%, а специфичность — 67,8% и 20,7% [35].

Таким образом, оценка коэкспресии p16/Ki-67 позволяет идентифицировать группу пациенток высокого риска с сопоставимой чувствительностью и более высокой специфичностью по сравнению с тестированием на ДНК ВПЧ. При этом сокращается число пациенток с LSIL, требующих дальнейшего обследования и наблюдения в клиниках с использованием кольпоскопического и гистологического методов исследования.

Показатели диагностической эффективности двойного окрашивания у пациенток с HSIL и ASC-H. Согласно клиническим рекомендациям, в России пациенткам по результатам цитологического исследования HSIL показана кольпоскопия с гистологическим исследованием материала. Иммуноцитохимическое исследование р16/Ki-67 рекомендовано как дополнительный метод дифференциальной диагностики степени тяжести поражения шейки матки [36]. Несмотря на то что в целях повышения чувствительности цервикального скрининга проводится котестирование с совместным использованием детекции ДНК ВПЧ и цитологического метода, тем не менее исследования показали, что более 60% пациенток с HSIL, направленных на кольпоскопию с биопсией или эксцизией, имеют ≤CIN1 по результатам гистологии [37—40]. Необходимы более эффективные стратегии стратификации для повышения точности диагнозов и снижения частоты направлений на инвазивные манипуляции. Такое количество ложноположительных результатов цитологии может быть обусловлено сложностью интерпретации препаратов с низкой частотой воспроизводимости между специалистами в зависимости от опыта. Метод двойного окрашивания р16/Ki-67 позволяет обойтись без морфологической оценки, предполагается, что он может быть реализован с более быстрым обучением и высокой воспроизводимостью результатов [41, 42].

В работе R. Luttmer и соавт. из 446 женщин у 79 (18%) была выявлена CIN3, у 85 (19%) пациенток — CIN2. Для диагностики применяли методы Пап-теста, генотипирования ВПЧ 16/18, их комбинацию и двойное окрашивание p16/Ki-67. В результате получены следующие значения Se и Sp: Пап-тест — 87,7% и 44,9%, генотипирование ВПЧ 16/18 — 75,3% и 56,2%, Пап-тест совместно с генотипированием ВПЧ 16/18 — 95,1% и 25,8%, двойное окрашивание — 93,8% и 51,2%. Аналогично проводили диагностику для CIN2 с определением показателей эффективности методов: Пап-тест — 86,7% и 54,3%, генотипирование ВПЧ 16/18 — 60,8% и 57,1%, Пап-тест совместно с генотипированием ВПЧ 16/18 — 92,2% и 30,4%, двойное окрашивание — 85,5% и 60,0% [44]. Полученные результаты исследования согласуются с данными ряда других авторов, согласно которым специфичность двойного окрашивания p16/Ki-67 для обнаружения CIN2+ выше по сравнению с цитологическим исследованием и тестированием на ДНК ВПЧ [43, 45].

Y. Zhu и соавт. для оценки эффективности методов, включая исследование мРНК белков Е6/Е7 ВПЧ, провели обследование 300 пациенток. В диагностике CIN2 Se и Sp методов составили: для ДНК ВПЧ — 98,2% и 17,5%, для мРНК Е6/Е7 ВПЧ — 87,0% и 42,7%, для p16/Ki-67 — 98,2% и 82,5% соответственно. Аналогично для определения CIN3+: ДНК ВПЧ — 100% и 16,0%, мРНК Е6/Е7 ВПЧ — 88,0% и 39,6%, p16/Ki-67 — 100% и 74,2% соответственно [46].

Однако, согласно данным систематического литературного обзора, показатели специфичности двойного окрашивания для поражений CIN2+ в разных возрастных группах пациенток сопоставимы по сравнению с Пап-тестом и составляют 92,0—96,25% и 92,6—96,3% соответственно [47].

Пациенток с цитологическим заключением атипичных плоских клеток, которые не исключают HSIL (ASC-H), направляют на кольпоскопию с последующим гистологическим исследованием, а также проводят им ВПЧ-тестирование [36]. Однако стратификация таких пациенток с помощью метода р16/Ki-67, возможно, позволит избежать чрезмерного инвазивного обследования и лечения пациенток. Согласно результатам метаанализа по оценке эффективности различных методов при стратификации пациенток с цитологическим заключением ASC-H для выявления CIN2+ и CIN3+, чувствительность теста на выявление ВПЧ ВКР составила 93% и 91% соответственно, специфичность — 45% и 42%. Генотипирование ВПЧ 16/18 типов оказалось менее чувствительным (50%), но более специфичным (74%). Для двойного окрашивания p16/Ki-67 Se и Sp для CIN2+ составили 94% и 50% соответственно [48]. В своей работе Y. Wu и соавт. показали, что специфичность при использовании двойного иммуноокрашивания p16/Ki-67 была выше по сравнению с тестом на ВПЧ ВКР (88,9% против 40,7%) [49].

Заключение

Метод двойного окрашивания имеет высокие показатели чувствительности и специфичности метода и может использоваться как биомаркер в выявлении неоплазий в программах скрининга на основе первичного ВПЧ-тестирования. Данный метод также может быть эффективно использован для уточняющей диагностики степени поражения в дополнение к цитологическому методу. Однако необходим анализ для оценки рентабельности и экономической эффективности данного исследования в программах скрининга РШМ в России.

Финансирование. Работа выполнена в рамках госзадания ИИФ УрО РАН (регистрационный номер НИОКТР 122020900136-4).

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Авторы подтверждают, что статья или ее части ранее не были опубликованы.

Литература / References:

  1. Злокачественные новообразования в России в 2021 году (заболеваемость и смертность). Под ред. Каприна А.Д., Старинского В.В., Шахзадовой А.О. М.: МНИОИ им. П.А. Герцена — филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России; 2022:252. 
  2. Canfell K. Towards the global elimination of cervical cancer. Papillomavirus Res. 2019;8:100170. https://doi.org/10.1016/j.pvr.2019.100170
  3. Короленкова Л.И. Клинико-морфологическая концепция возникновения и течение тяжелых CIN. Клиническая лабораторная диагностика. 2014;59(6):18-22. 
  4. Zhang S, Xu H, Zhang L, Qiao Y. Cervical cancer: Epidemiology, risk factors and screening. Chin J Cancer Res. 2020;32(6):720-728.  https://doi.org/10.21147/j.issn.1000-9604.2020.06.05
  5. Female Genital Tumours: WHO Classification of Tumours, 5th ed. International Agency for Research in Cancer: Lyon, France, 2020.
  6. Singh D, Vignat J, Lorenzoni V, Eslahi M, Ginsburg O, Lauby-Secretan B, Arbyn M, Basu P, Bray F, Vaccarella S. Global estimates of incidence and mortality of cervical cancer in 2020: A baseline analysis of the WHO Global Cervical Cancer Elimination Initiative. Lancet Glob Health. 2023;11(2):e197-e206. https://doi.org/10.1016/s2214-109x(22)00501-0
  7. Committee on Practice Bulletins — Gynecology. Practice bulletin No. 168: cervical cancer screening and prevention. Obstet Gynecol. 2016;128(4):111-130.  https://doi.org/10.1097/aog.0000000000001708
  8. Fernandes S, Abreu, Silva R. Validation of CINtec® PLUS cytology kit in the diagnosis of persistent HPV infections — Cohort study in the Portuguese population. J Cytol. 2021;38:94-100.  https://doi.org/10.4103/joc.joc_173_20
  9. El-Zein M, Gotlieb W, Gilbert L, Hemmings R, Behr MA, Franco EL, for the STAIN-IT Study Group Dual staining for p16/Ki-67 to detect high-grade cervical lesions: Results from the Screening Triage Ascertaining Intraepithelial Neoplasia by Immunostain Testing study. Int J Cancer. 2021;148:492-501.  https://doi.org/10.1002/ijc.33250
  10. Ratnam S, Jang D, Gilbert L, Alaghehbandan R, Schell M, Needle R, Ecobichon-Morris A, Wang PP, Rahman M, Costescu D, et al. CINtec PLUS and cobas HPV testing for triaging Canadian women referred to colposcopy with a history of low-grade squamous intraepithelial lesion: Baseline findings. Papillomavirus Res. 2020;10:100206. https://doi.org/10.1016/j.pvr.2020.100206
  11. Zhang R, Ge X, You K, Guo Y, Guo H, Wang Y, Geng L. p16/Ki67 dual staining improves the detection specificity of high-grade cervical lesions. J Obstet Gynaecol Res. 2018;44(11):2077-2084. https://doi.org/10.1111/jog.13760
  12. Sun H, Shen K, Cao D. Progress in immunocytochemical staining for cervical cancer screening. Cancer Manag Res. 2019 Feb 22; 11:1817-1827. https://doi.org/10.2147/cmar.s195349
  13. Li Yu, Lingyan Fei, Xubin Liu, Xufang Pi, Liantang Wang, Shangwu Chen, Application of p16/Ki-67 dual-staining cytology in cervical cancers. Journal of Cancer. 2019;10(12):2654-2660. https://doi.org/10.7150/jca.32743
  14. Шамаракова М.В., Асатурова А.В., Трегубова А.В. Файзуллина, Н.М., Шиляев А.Ю. Современные возможности иммуноцитохимических исследований в диагностике интраэпителиальных поражений шейки матки. Новости клинической цитологии России. 2020;24(2):18-26.  https://doi.org/10.24411/1562-4943-2020-2-0004
  15. Cicenas J, Kvederaviciute K, Meskinyte I, Meskinyte-Kausiliene E, Skeberdyte A, Cicenas J. KRAS, TP53, CDKN2A, SMAD4, BRCA1, and BRCA2 Mutations in Pancreatic Cancer. Cancers (Basel). 2018;9:42.  https://doi.org/10.3390/cancers9050042
  16. Uguen A, Briac Guibourg, Marie Uguen Another Point of View about Cyclin D1 and p16 Expression in Blue Nevi and Malignant Melanomas Appl. Immunohistochem. Mol Morphol. 2017;25(8):e70-e71.  https://doi.org/10.1097/pai.0000000000000431
  17. Rambau PF, Vierkant RA, Intermaggio MP, Köbel M. Association of p16 expression with prognosis varies across ovarian carcinoma histotypes: an Ovarian Tumor Tissue Analysis consortium study. The journal of pathology. Clinical research. 2018;4(4):250-261.  https://doi.org/10.1002/cjp2.109
  18. Celewicz A. Perspectives in HPV Secondary Screening and Personalized Th erapy Basing on Our Understanding of HPV-Related Carcinogenesis Pathways. Mediators Infl amm. 2020. https://doi.org/10.1155/2020/2607594
  19. Kim KI, Lee KH, Kim TR, et al. Ki-67 as a predictor of response to neoadjuvant chemotherapy in breast cancer patients. J Breast Cancer. 2014;17:1:40-46.  https://doi.org/10.4048/jbc.2014.17.1.40
  20. Montagna E, Bagnardi V, Viale G, et al. Changes in PgR and Ki-67 in residual tumour and outcome of breast cancer patients treated with neoadjuvant chemotherapy. Ann Oncol. 2015;26:2:307-313.  https://doi.org/10.1093/annonc/mdu528
  21. Sun M, Shen Y, Ren ML, Dong YM. Meta-analysis on the performance of p16/Ki-67 dual immunostaining in detecting high-grade cervical intraepithelial neoplasm. J Cancer Res Ther. 2018 Sept;14(Suppl):S587-S593. https://doi.org/10.4103/0973-1482.183216
  22. Silva DC, Goncalves AK, Cobucci RN, Mendonca RC, Lima PH, Cavalcanti GJ. Immunohistochemical expression of p16, Ki-67 and p53 in cervical lesions — A systematic review. Pathol Res Pract. 2017;213:723-729.  https://doi.org/10.1016/j.prp.2017.03.003
  23. Waldstrøm M, Christensen RK, Ørnskov D. Evaluation of p16(INK4a)/Ki-67 dual stain in comparison with an mRNA human papillomavirus test on liquid-based cytology samples with low-grade squamous intraepithelial lesion. Cancer Cytopathol. 2013;121(3):136-145.  https://doi.org/10.1002/cncy.21233
  24. Byun SW, Lee A, Kim S, Choi YJ, Lee YS, Park JS. Immunostaining of p16(INK4a)/Ki-67 and L1 capsid protein on liquid-based cytology specimens obtained from ASC-H and LSIL-H cases. Int J Med Sci. 2013;10:1602-1607. https://doi.org/10.7150/ijms.6526
  25. Schmidt D, Bergeron C, Denton KJ, Ridder R; European CINtec Cytology Study Group. p16/ki-67 dual-stain cytology in the triage of ASCUS and LSIL papanicolaou cytology: Results from the European equivocal or mildly abnormal Papanicolaou cytology study. Cancer Cytopathol. 2011;119:158-166.  https://doi.org/10.1002/cncy.20140
  26. Chen CC, Huang LW, Bai CH, Lee CC. Predictive value of p16/Ki-67 immunocytochemistry for triage of women with abnormal Papanicolaou test in cervical cancer screening: a systematic review and meta-analysis. Ann Saudi Med. 2016;36(4):245-251.  https://doi.org/10.5144/0256-4947.2016.245
  27. Katki HA, Schiffman M, Castle PE, Fetterman B, Poitras NE, Lorey T, et al. Benchmarking CIN 3+ risk as the basis for incorporating HPV and Pap cotesting into cervical screening and management guidelines. J Low Genit Tract Dis. 2013; 7:28-35.  https://doi.org/10.1097/LGT.0b013e318285423c
  28. Wentzensen N, Schwartz L, Zuna RE, Smith K, Mathews C, Gold MA, et al. Performance of p16/Ki-67 immunostaining to detect cervical cancer precursors in a colposcopy referral population. Clin Cancer Res. 2012;18(15):4154-4162. https://doi.org/10.1158/1078-0432.ccr-12-0270
  29. Tay TKY, Lim KL, Hilmy MH, Thike AA, Goh ST, Song LH, et al. Comparison of the sensitivity and specificity of p16/Ki-67 dual staining and HPV DNA testing of abnormal cervical cytology in the detection of histology proven cervical intraepithelial neoplasia grade 2 and above (CIN 2+). Malays J Pathol. 2017;39(3):257-265. PMID: 29279588.
  30. Possati-Resende JC, Fregnani JH, Kerr LM, Mauad EC, Longatto-Filho A, Scapulatempo-Neto C. The Accuracy of p16/Ki-67 and HPV Test in the Detection of CIN2/3 in Women Diagnosed with ASC-US or LSIL. PLoS One. 2015;10(7):e0134445. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0134445
  31. Gothwal M, Nalwa A, Singh P, Yadav G, Bhati M, Samriya N. Role of Cervical Cancer Biomarkers p16 and Ki67 in Abnormal Cervical Cytological Smear. J Obstet Gynaecol India. 2021 Feb; 71(1):72-77.  https://doi.org/10.1007/s13224-020-01380-y
  32. Das D, Sengupta M, Basu K, Tirkey M, Datta C, Chatterjee U. Role of p16/Ki-67 Dual immunostaining in detection of cervical cancer precursors. J Cytol. 2018;35:153-158.  https://doi.org/10.4103/JOC.JOC_4_17
  33. Aromseree S, Wongjumpa W, Ekalaksananan T, Temtanakitpaisan A, Kleebkaow P, Srisathaporn S, Tongchai P, Pientong C. P16/Ki-67 Dual Staining in Positive Human Papillomavirus DNA Testing for Predictive Diagnosis of Abnormal Cervical Lesions in Northeastern Thai Women. Asian Pac J Cancer Prev. 2022 Oct 01; 23(10):3405-3411. https://doi.org/10.31557/APJCP.2022.23.10.3405
  34. Magkana M, Mentzelopoulou P, Magkana E, Pampanos A, Daskalakis G, Domali E, Rodolakis A, Pappa K. The p16/ki-67 assay is a safe, effective and rapid approach to triage women with mild cervical lesions. PLoS One. 2021 June 11;16(6):e0253045. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0253045
  35. Yu J, Zhu HT, Zhao JJ, Su JZ, Xia YD. [Sorting role of p16(INK4a)/Ki-67 double immunostaining in the cervical cytology specimens of ASCUS and LSIL cases]. Zhonghua Bing Li Xue Za Zhi. 2017 May 08; 46(5):323-326. (In Chinese). https://doi.org/10.3760/cma.j.issn.0529-5807.2017.05.008
  36. Цервикальная интраэпителиальная неоплазия, эрозия и эктропион шейки матки: клинические рекомендации. М. 2021:45. 
  37. De Carvalho SH, Rosa DAN, Santos ALF, de Medeiros APP. Description of referrals for colposcopy in a hospital in Brazil. Rev Bras de Ginecol e Obstet. 2020;42(3):140-145.  https://doi.org/10.1055/s-0040-1708886
  38. Loopik DL, Koenjer LM, Siebers AG, Melchers WJG, Bekkers RLM. Benefit and burden in the Dutch cytology-based vs high-risk human papillomavirus-based cervical cancer screening program. Am J Obstet Gynecol. 2020. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2020.08.026
  39. Wentzensen N, Walker J, Smith K, et al. A prospective study of risk-based colposcopy demonstrates improved detection of cervical precancers. Am J Obstet Gynecol. 2018;218(6):604.e601-604.e608. https://doi.org/10.1016/j.ajog.2018.02.009
  40. Torres-Ibarra L, Cuzick J, Lorincz AT, et al. Comparison of HPV-16 and HPV-18 genotyping and cytological testing as triage testing within human papillomavirus-based screening in Mexico. JAMA Netw Open. 2019;2(11):e1915781. https://doi.org/10.1001/jamanetworkopen.2019.15781
  41. Jiang MY, Wu Z, Li T, Yu L, Zhang SK, Zhang X, Qu P, Sun P, Xi MR, Liu X, Liao G, Sun L, Zhang Y, Chen W, Qiao YL. Performance of HPV Genotyping Combined with p16/Ki-67 in Detection of Cervical Precancer and Cancer Among HPV-Positive Chinese Women. Cancer Prev Res (Phila). 2020;13(2):163-172.  https://doi.org/10.1158/1940-6207.CAPR-19-0144
  42. Ebisch RM, van der Horst J, Hermsen M, Rijstenberg LL, Vedder JE, Bulten J, Bosgraaf RP, Verhoef VM, Heideman DA, Snijders PJ, Meijer CJ, van Kemenade FJ, Massuger LF, Melchers WJ, Bekkers RL, Siebers AG. Evaluation of p16/Ki-67 dual-stained cytology as triage test for high-risk human papillomavirus-positive women. Mod Pathol. 2017;30(7):1021-1031. https://doi.org/10.1038/modpathol.2017.16
  43. Zhang R, Ge X, You K, Guo Y, Guo H, Wang Y, Geng L. p16/Ki67 dual staining improves the detection specificity of high-grade cervical lesions. J Obstet Gynaecol Res. 2018 Nov;44(11):2077-2084. https://doi.org/10.1111/jog.13760
  44. Luttmer R, Dijkstra MG, Snijders PJ, Berkhof J, van Kemenade FJ, Rozendaal L, Helmerhorst TJ, Verheijen RH, Ter Harmsel WA, van Baal WM, Graziosi PG, Quint WG, Spruijt JW, van Dijken DK, Heideman DA, Meijer CJ. p16/Ki-67 dual-stained cytology for detecting cervical (pre)cancer in a HPV-positive gynecologic outpatient population. Mod Pathol. 2016 Aug;29(8):870-878.  https://doi.org/10.1038/modpathol.2016.80
  45. Qian Q-P, Zhang X, Ding B, Jiang S-W, Li Z-M, Ren M-L, Shen Y. Performance of P16/Ki67 dual staining in triaging hr-HPV-positive population during cervical Cancer screening in the younger women. Clin Chim Acta. 2018 Aug;483:281-285.  https://doi.org/10.1016/j.cca.2018.05.023
  46. Zhu Y, Ren C, Yang L, Zhang X, Liu L, Wang Z. Performance of p16/Ki67 immunostaining, HPV E6/E7 mRNA testing, and HPV DNA assay to detect high-grade cervical dysplasia in women with ASCUS. BMC Cancer. 2019 Mar 27;19(1):271.  https://doi.org/10.1186/s12885-019-5492-9
  47. Wiebren A.A. Tjalma, Diagnostic performance of dual-staining cytology for cervical cancer screening: A systematic literature review. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2017;210:275-280.  https://doi.org/10.1016/j.ejogrb.2017.01.009
  48. Xu L, Verdoodt F, Wentzensen N, Bergeron C, Arbyn M. Triage of ASC-H: A meta-analysis of the accuracy of high-risk HPV testing and other markers to detect cervical precancer. Cancer Cytopathol. 2016 Apr;124(4):261-272.  https://doi.org/10.1002/cncy.21661
  49. Wu Y, Zhao J, Hu J, Wu XW, Zhu LR. Significance of p16/Ki-67 double immunocytochemical staining in cervical cytology ASCUS, LSIL, and ASC-H. Zhonghua Fu Chan Ke Za Zhi. 2017;52(11): 734-739.  https://doi.org/10.3760/cma.j.issn.0529-567X.2017.11.004

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.