Опухолевые модели в онкологических исследованиях

Карпечкин М.О.

Московский научно-исследовательский онкологический институт им. П.А. Герцена — филиал ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр радиологии» Минздрава России

ORCID: 0000-0001-8817-2736

Давыдов Д.В.

ORCID: 0000-0001-5506-6021

Морозова Н.Б.

ORCID: 0000-0002-7159-805X

Воронцова М.С.

ORCID: 0000-0002-9320-1746

Опухолевые модели в онкологических исследованиях

Авторы:

Карпечкин М.О., Давыдов Д.В., Морозова Н.Б., Воронцова М.С.

Подробнее об авторах

Журнал: Онкология. Журнал им. П.А. Герцена. 2024;13(4): 72‑76

DOI: 10.17116/onkolog20241304172

Загрузок: 2

Связаться с автором

Оглавление

Как цитировать:

Карпечкин М.О., Давыдов Д.В., Морозова Н.Б., Воронцова М.С. Опухолевые модели в онкологических исследованиях. Онкология. Журнал им. П.А. Герцена. 2024;13(4):72‑76.
Karpechkin MO, Davydov DV, Morozova NB, Vorontsova MS. Tumor models in cancer research. P.A. Herzen Journal of Oncology. 2024;13(4):72‑76. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/onkolog20241304172

Подписка 2025 (P.A. Herzen Journal of Oncology)

Закрыть метаданные

Рекомендуем статьи по данной теме:

Роль фармакогеномики в персонифицированном лечении онкологических заболеваний. Онкология. Журнал им. П.А. Герцена. 2023;(6):75-81

Бесконтрольное ингибирование контрольных точек. Онкология. Журнал им. П.А. Герцена. 2024;(2):67-73

Замещение комбинированных дефектов верхней челюсти с использованием аддитивных технологий и сложносоставного тканевого комплекса из бассейна торакодорзальной артерии. Клинический пример. Пластическая хирургия и эстетическая медицина. 2023;(4):112-119

Выбор оптимального решения в профилактике ВТЭО у онкохирургических пациентов со сниженной функцией почек. Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова. 2024;(1):119-126

Современная оперативная гериатрическая гинекология. Проблемы репродукции. 2024;(1):10-25

Лечение, сохраняющее фертильность у онкологических пациентов: чем мы можем помочь в XXI веке?. Проблемы репродукции. 2024;(1):26-63

Пререабилитация онкологических пациентов перед обширным хирургическим вмешательством в брюшной и грудной полостях: обзор литературы. Вопросы курортологии, физиотерапии и лечебной физической культуры. 2024;(2):46-56

Взаимосвязь между беременностью и риском развития злокачественных новообразований женской репродуктивной системы. Российский вестник акушера-гинеколога. 2024;(3):48-54

Стоимость поддерживающей терапии солидных злокачественных новообразований в Российской Федерации. Часть 1. Медицинские технологии. Оценка и выбор. 2024;(3):93-103

Согласно статистическим данным, онкологическая заболеваемость выходит на первое место в мире. Несмотря на то что различные виды опухолей известны относительно давно, в настоящее время наука далека от досконального понимания канцерогенеза, следовательно, и от полного излечения от опухолей. Постоянно проводятся эксперименты по разработке не только новых методов лечения, но и лекарственных средств. Все эти опыты основаны на опухолевых моделях. В данной статье приведены основные опухолевые модели, используемые в онкологии.

Ключевые слова:

онкология

опухолевая модель

мышиная модель

in vivo

in vitro

Авторы:

Карпечкин М.О.

ORCID: 0000-0001-8817-2736

Давыдов Д.В.

ORCID: 0000-0001-5506-6021

Морозова Н.Б.

ORCID: 0000-0002-7159-805X

Воронцова М.С.

ORCID: 0000-0002-9320-1746

Дата поступления:

29.05.2024

Дата принятия в печать:

13.06.2024

Список литературы:

Каприн А.Д., Старинский В.В., Шахзадова А.О., ред. Состояние онкологической помощи населению России в 2022 году. М.: МНИОИ им. П.А. Герцена — филиал ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России; 2023.
Жукова И.В., Колпак Е.П. Математические модели злокачественной опухоли. Вестник Санкт-Петербургского университета. Прикладная математика. Информатика. Процессы управления. 2014;3:5-18.
Китаева К.В., Ризванов А.А., Соловьева В.В. Современные методы доклинического скрининга противоопухолевых препаратов с применением с применением тест-систем на основе культур клеток. Ученые записки Казанского университета. Серия: Естественные науки. 2021;163(2):155-176. https://doi.org/10.26907/2542-064x.2021.2.155-176
Мингалеева Р.Н., Соловьева В.В., Блатт Н.Л., Ризванов А.А. Применение культур клеток и тканей для скрининга противоопухолевых препаратов in vitro. Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. 2013;8(2):20-28.
Uchida Y, Tanaka S, Aihara A, Adikrisna R, Yoshitake K, Matsumura S, Mitsunori Y, Murakata A, Noguchi N, Irie T, et al. Analogy between sphere forming ability and stemness of human hepatoma cells. Oncol Rep. 2010;24(5):1147-1151. https://doi.org/10.3892/or_00000966
Chen HC. Boyden chamber assay. Methods Mol Biol. 2005;294:15-22. https://doi.org/10.1385/1-59259-860-9:015
Mehta P, Rahman Z, Ten Dijke P, Boukany PE. Microfluidics meets 3D cancer cell migration. Trends Cancer. 2022;8(8):683-697. https://doi.org/10.1016/j.trecan.2022.03.006
Холоденко Р.В., Холоденко И.В., Доронин И.И. Опухолевые модели в изучении онкологических заболеваний. Иммунология. 2013;5:282-286.
Katt ME, Placone AL, Wong AD, Xu ZS, Searson PC. In vitro tumor models: advantages, disadvantages, variables, and selecting the right platform. Front Bioeng Biotechnol. 2016;4:12. https://doi.org/10.3389/fbioe.2016.00012
Бокова У.А., Третьякова М.С., Щеголева А.А., Денисов Е.В. Мобильные системы in vivo для исследований в онкологии. Успехи молекулярной онкологии. 2023;10(2):8-16. https://doi.org/10.17650/2313-805x-2023-10-2-8-16
Souto EP, Dobrolecki LE, Villanueva H, Sikora AG, Lewis MT. In vivo modeling of human breast cancer using cell line and patient-derived xenografts. J Mammary Gland Biol Neoplasia. 2022;27(2):211-230. https://doi.org/10.1007/s10911-022-09520-y
Болотских Л.А., Каркищенко В.Н., Каркищенко Н.Н., Семенов Х.Х., Касинская Н.В., Капанадзе Г.Д., Ревякин А.О., Матвеенко Е.Л. Создание лабораторных животных СПФ-статуса как основа экспериментальной медицины. Биомедицина. 2013;4:158-163.
Sengupta P. The laboratory rat: relating its age with human’s. Int J Prev Med. 2013;4(6):624-630.
Гайдай Е.А., Гайдай Д.С. Генетическое разнообразие экспериментальных мышей и крыс: история возникновения, способы получения и контроля. Лабораторные животные для научных исследований. 2019;4. https://doi.org/10/29926/2618723X-2019-04-09
Трещалина Е.М. Иммунодефицитные мыши Balb/c nude и моделирование различных вариантов опухолевого роста для доклинических исследований. Российский биотерапевтический журнал. 2017;16(3):6-13. https://doi.org/10.17650/1726-9784-2017-16-3-6-13
Xia X, Li H, Satheesan S, Zhou J, Rossi JJ. Humanized NOD/SCID/IL2rγnull (hu-NSG) mouse model for HIV replication and latency studies. J Vis Exp. 2019;(143):10.3791/58255. https://doi.org/10.3791/58255
Нехаева Т.Л., Чернов А.Н., Торопова Я.Г., Галагудза М.М., Балдуева И.А. Разнообразие опухолевых моделей для тестирования противоопухолевой активности веществ у мышей. Вопросы онкологии. 2020;66(4):353-363.
Klein G, Klein E. The transformation of a solid transplantable mouse carcinoma into an «ascites tumor». Cancer Res. 1951;11(6):466-469.
Тимофеева Н.Ю., Бубнова Н.В., Стручко Г.Ю., Кострова О.Ю., Стоменская И.С. Методы экспериментального моделирования метастазирования. Биомедицина. 2021;17(4):44-49. https://doi.org/10.33647/2074-5982-17-4-44-49
Scholz CC, Berger DP, Winterhalter BR, Henss H, Fiebig HH. Correlation of drug response in patients and in the clonogenic assay with solid human tumour xenografts. Eur J Cancer. 1990;26(8):901-905. https://doi.org/10.1016/0277-5379(90)90196-z
Киблицкая А.А., Максимов А.Ю., Гончарова А.С., Непомнящая Е.М., Златник Е.Ю., Егоров Г.Ю., Лукбанова Е.А., Заикина Е.В., Волкова А.В. Варианты создания гетеротопических и ортотопических pdx-моделей колоректального рака человека. Бюллетень сибирской медицины. 2022;21(3):50-58. https://doi.org/10.20538/1682-0363-2022-3-50-58
Legrand N, Weijer K, Spits H. Experimental models to study development and function of the human immune system in vivo. J Immunol. 2006;176(4):2053-2058. https://doi.org/10.4049/jimmunol.176.4.2053
Гудратов Н.О. Линейные мыши: достоинства и недостатки. Биомедицина. 2004;4:40-42.
Kellar A, Egan C, Morris D. Preclinical murine models for lung cancer: clinical trial applications. Biomed Res Int. 2015;2015:621324. https://doi.org/10.1155/2015/621324
Evans JP, Suttona PA, Winiarski BK. Fenwick SW, Malik HZ, Vimalachandran D, Tweedle EM, Costello E, Palmer DH, Park BK, et al. From mice to men: murine models of colorectal cancer for use in translational research. Crit Rev Oncol Hematol. 2016;98:94-105. https://doi.org/10.1016/j.critrevonc.2015.10.009
Стуков А.Н., Вершинина С.Ф., Козявин Н.А., Семиглазова Т.Ю., Филатова Л.В., Латипова Д.Х., Иванцов А.О., Беспалов В.Г., Семенов А.П., Беляева О.А. и др. Изучение активности ломустина при перевиваемом HER2-положительном раке молочной железы у мышей линии FVB/N, трансгенных по HER2. Сибирский онкологический журнал. 2019;18(5):54-60. https://doi.org/10.21294/1814-4861-2019-18-5-54-60
Dutt A, Wong KK. Mouse models of lung cancer. Clin Cancer Res. 2006;12(14 Pt. 2):4396s-4402s. https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-06-0414
Kemp CJ. Animal models of chemical carcinogenesis: driving breakthroughs in cancer research for 100 years. Cold Spring Harb Protoc. 2015;2015(10):865-874. https://doi.org/10.1101/pdb.top069906
Kasala ER, Bodduluru LN, Barua CC. Benzo(a)pyrene induced lung cancer: role of dietary phytochemicals in chemoprevention. Pharmacol Rep. 2015;67(5):996-1009. https://doi.org/10.1016/j.pharep.2015.03.004

Закрыть метаданные