Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Петрухина Н.Б.

Кафедра стоматологии ФППОВ ГБОУ ВПО "Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова" Минздрава РФ

Зорина О.А.

ГБОУ ВПО "Первый МГМУ имени И.М. Сеченова"

Ших Е.В.

Кафедра клинической фармакологии и пропедевтики внутренних болезней ГБОУ ВПО "Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова"

Шибаева А.В.

Институт биохимической физики им. Н.М. Эмануэля РАН, Москва;
Институт полиомиелита и вирусных энцефалитов им. М.П. Чумакова РАМН, Москва

Шевелев А.Б.

Институт полиомиелита и вирусных энцефалитов им. М.П. Чумакова РАМН, Москва

Изучение взаимосвязи состава микробиома пародонта и кишечника в норме и при патологии методами глубокого секвенирования

Авторы:

Петрухина Н.Б., Зорина О.А., Ших Е.В., Шибаева А.В., Шевелев А.Б.

Подробнее об авторах

Журнал: Стоматология. 2016;95(2): 8‑13

Просмотров: 858

Загрузок: 10


Как цитировать:

Петрухина Н.Б., Зорина О.А., Ших Е.В., Шибаева А.В., Шевелев А.Б. Изучение взаимосвязи состава микробиома пародонта и кишечника в норме и при патологии методами глубокого секвенирования. Стоматология. 2016;95(2):8‑13.
Petrukhina NB, Zorina OA, Shikh EV, Shibaeva AV, Shevelev AB. Study of mutual dependence of periodontal and colonic microbiome in health and pathology using NSG-sequencing. Stomatology. 2016;95(2):8‑13. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/stomat20169528-13

Рекомендуем статьи по данной теме:
Про­фи­лак­ти­ка вос­па­ле­ния тка­ней па­ро­дон­та при мо­де­ли­ро­ва­нии мик­рог­ра­ви­та­ции. Сто­ма­то­ло­гия. 2024;(6-2):23-28
Эво­лю­ци­он­ные тен­ден­ции из­ме­не­ния мик­ро­эле­мен­тно­го сос­та­ва эма­ли, по­вер­хностных сло­ев ден­ти­на, це­мен­та зу­бов че­ло­ве­ка в Се­ве­ро-За­пад­ном ре­ги­оне Си­би­ри в нор­ме и при па­то­ло­гии в X—XX ве­ках. Сто­ма­то­ло­гия. 2025;(1):5-8
Ви­та­мин D и его роль в за­бо­ле­ва­ни­ях по­лос­ти рта. Сто­ма­то­ло­гия. 2025;(1):81-86
Фун­кци­ональ­ные ок­клю­зи­он­ные кон­так­ты зу­бов у боль­ных па­ро­дон­ти­том. Рос­сий­ская сто­ма­то­ло­гия. 2025;(1):11-17
Сов­ре­мен­ные на­уч­ные и прак­ти­чес­кие под­хо­ды к по­ис­ку би­омар­ке­ров ста­ре­ния. Вос­ста­но­ви­тель­ные би­отех­но­ло­гии, про­фи­лак­ти­чес­кая, циф­ро­вая и пре­дик­тив­ная ме­ди­ци­на. 2024;(3):46-52
Воз­рас­тные осо­бен­нос­ти ком­по­зи­ции мик­ро­би­оты ки­шеч­ни­ка ма­как ре­зу­сов, со­дер­жа­щих­ся в ус­ло­ви­ях не­во­ли. Мо­ле­ку­ляр­ная ге­не­ти­ка, мик­ро­би­оло­гия и ви­ру­со­ло­гия. 2024;(3):22-28
Осо­бен­нос­ти по­ис­ка он­ко­ло­ги­чес­кой па­то­ло­гии на ам­бу­ла­тор­ном эта­пе. Кли­ни­чес­кий слу­чай. Про­фи­лак­ти­чес­кая ме­ди­ци­на. 2024;(10):97-100
Ин­тег­ра­ция NGS-тес­ти­ро­ва­ния со стан­дар­тны­ми ме­то­да­ми мо­ле­ку­ляр­но-ге­не­ти­чес­ких ис­сле­до­ва­ний в он­ко­ло­гии. Он­ко­ло­гия. Жур­нал им. П.А. Гер­це­на. 2024;(6):84-90
Вы­со­коп­ро­из­во­ди­тель­ное сек­ве­ни­ро­ва­ние как инстру­мент для де­тек­ти­ро­ва­ния и иден­ти­фи­ка­ции па­то­ге­нов в кли­ни­чес­ком ма­те­ри­але. Ла­бо­ра­тор­ная служ­ба. 2024;(4):49-56
Син­дром Ай­кар­ди—Гутье­рес 6-го ти­па, ас­со­ци­иро­ван­ный с ком­па­унд-ге­те­ро­зи­гот­ным ва­ри­ан­том в ге­не ADAR: пер­вое опи­са­ние кли­ни­чес­ко­го слу­чая в рос­сий­ской по­пу­ля­ции. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(1):131-138

Большинство исследователей в мире рассматривает микробный фактор как основной в развитии воспалительных заболеваний пародонта [12].

Патология пародонта редко бывает не связанной с другими заболеваниями. Имеются работы, в которых методами медицинской статистики показана взаимосвязь между повышенным риском развития пародонтита и болезнями гастродуоденальной зоны, возбудителями которых является Helicobacter pylori. Однако доминирующими остаются фекально-оральный и орально-оральный механизмы передачи H. pylori [1, 13]. Около 10% лиц, инфицированных H. pylori, страдают язвенными болезнями желудочно-кишечного тракта (ЖКТ), от 1 до 3% — аденокарциномой желудка и около 0,1% — лимфомой, ассоциированной со слизистой оболочкой ЖКТ [14].

В работах других авторов показано, что накопление в кишечнике облигатного внутриклеточного эндосимбионта Akkermansia muciniphila положительно влияет на риск возникновения у таких пациентов диабета, ожирения, атопического дерматита и постантибиотической диареи, ассоциированных с Clostridium dificile [3—7].

Важность изучения факторов риска возникновения пародонтита определяется еще и тем, что в России распространенность этого заболевания у пациентов в возрасте до 25 лет за последние десятилетия существенно выросла. Состав микробиома пародонта у пациентов с агрессивным пародонтитом рассмотрен в нескольких работах, выполненных современными высокоточными методами: с помощью NGS-секвенирования [9—11] и гибридизации на микрочипах (HOMIM) [2]. Однако авторы этих работ акцентировали внимание преимущественно на пародонтопатогенах, не придавая достаточного значения потенциальной пародонтопротекторной микрофлоре.

Выявленные в перечисленных работах пародонтопатогены в основном представлены Aggregatibacter actinomycetemcomitans и компонентами так называемого красного комплекса по Сокранскому, которые давно известны и могут быть выявлены и без использования NGS-технологий с помощью общедоступных наборов для полимеразной цепной реакции (ПЦР) в реальном времени. I. Adler, S. Huse и соавт. [2, 8] подчеркивают важную роль в развитии агрессивного пародонтита Parvimonas micra и Filifactor alocis.

С учетом изложенного, целью настоящей работы явилось изучение методом глубокого секвенирования взаимосвязи состава микробиома пародонта и кишечника у пациентов с пародонтитом разной степени тяжести и у лиц со здоровым пародонтом.

Материал и методы

В исследование включили пациентов, наблюдавшихся в ЦНИИС и ЧЛХ Минздрава Р.Ф..

Были сформированы 2 выборки: здоровые лица (15 человек) и пациенты с хроническим генерализованным пародонтитом (ХГП) разной степени тяжести (15 человек). Все пациенты, включенные в исследование, не имели системных заболеваний и подписали информированное согласие, в котором были подробно описаны условия участия в исследовании. Степень тяжести пародонтита устанавливали по данным клинического обследования, глубине пародонтальных карманов (ПК) и степени деструкции костной ткани.

Для максимальной объективизации результатов и цифрового выражения уровня гигиены полости рта, степени воспаления тканей пародонта применяли стандартные методики определения индексов Silness—Loe и Muhlemann—Cowell, а степень подвижности зубов устанавливали по Miller в модификации Flezar. В качестве дополнительного метода обследования для уточнения состояния костного субстрата использовали цифровую ортопантомографию.

Образцы материала из ПК отбирали с помощью стерильного бумажного эндодонтического штифта по 4 пробы от каждого пациента: 2 пробы «А» из ПК в области первых моляров (при их отсутствии — в области премоляров) и 2 пробы «Б» из ПК резцов. Материал для исследования брали дважды от каждого пациента.

Для выделения ДНК штифты помещали в пробирки типа Эппендорф объемом 1,5 мл, содержащие по 0,5 мл раствора для гомогенизации образцов из набора Проба-Рапид («ДНК-Технология», Москва). Суммарную ДНК материала из ПК пациентов выделяли с помощью набора реагентов Проба-ГС (ООО «НПО ДНК-Технология», Россия). Препарат ДНК, соответствующий 1/10 объема 1 смыва (50 мкл), растворяли в 50 мкл элюирующего раствора (комплектация Проба-ГС).

С применением метода NGS-секвенирования банков суммарной ДНК отделяемого ПК с праймерами на область V6 16S рДНК анализировали представленность видов и родов бактерий в микрофлоре пародонта пациентов с пародонтитом и лиц со здоровым пародонтом.

Обработку данных глубокого секвенирования проводили согласно следующему протоколу:

— распределение и изучение данных по библиотекам на основании последовательностей баркодов проводилось с помощью программы Sabre (https://github.com/najoshi/sabre); предъявлялось требование точного совпадения последовательности баркодов с ожидаемой; в результате удалось идентифицировать 72,3% индивидуальных последовательностей;

— проводился тримминг с использованием программы Trimmomatic (http://www.usadellab.org/cms/?page= trimmomatic); набор параметров:

LEADING:25 (триммирование с левого конца по Q25);

TRAILING:25 (триммирование с правого конца по Q25);

SLIDINGWINDOW:4:15 (триммирование с помощью плавающего окна, длина окна — 4, минимальное среднее значение качества в окне — 15);

MINLEN:36 (минимальная длина тримминга);

— с помощью команды ILLUMINACLIP из последовательности удаляли последовательности баркодов и другие технические последовательности;

— анализ метагеномных образцов по 16SРНК проводился с помощью программы Mothur (http://www.mothur.org/); использовался протокол http://www.mothur.org/wiki/ MiSeq_SOP в варианте OTU-based analysis; для статистической обработки результатов использовали пакет программ Statistica 8.0;

— для проверки гипотезы о существовании достоверных статистических различий в представленности OTU в микробных консорциумах пародонта и кишечника после анализа выборок на нормальность распределения (по Колмогорову—Смирнову) был использован параметрический критерий Стьюдента.

Результаты и обсуждение

Исследование образцов 16SрДНК методом метагеномного секвенирования на платформе Illumina MiSeq

NGS-секвенирование образцов суммарной ДНК материала из ПК и кишечного содержимого обеспечило разрешение от 91 234 до 213 786 индивидуальных последовательностей нуклеотидов на образец. Анализ этих последовательностей позволил идентифицировать в образцах обоих типов по 260—268 родов и 497—500 видов бактерий.

Сопоставление списков нуклеотидов дало возможность установить совпадение 242 (93%) родов из 260, т. е. микробиом пародонта и кишечника во многом сходен. Более того, среди несовпадающих родов преобладают микроорганизмы, заведомо не способные выживать во внутренней среде организма человека. По-видимому, они занесены туда с водой или пищей: например, водоросли Leuconostoc и Spirulina, симбионты растений (фитопатогены) Rhizobium, Bradirhizobium, Agrobacterium, представители аэробной микрофлоры Pseudomonas, Burkholderia, Sphingomonas, Pseudoxanthomonas, а также митохондрии животных.

Сопоставление встречаемости в микробиоценозах кишечника и пародонта OTU ранга вида выявляет существенно большие различия, чем в случае OTU ранга рода: из 500 видов совпадают только 272. Сходство между анаэробными консорциумами пародонта и прямой кишки проявляется и в том, что доминирующим видом в обоих случаях является Fusobacterium nucleatum.

Анализ выборок по Колмогорову—Смирнову показал распределение признаков, близкое к нормальному. Поэтому дальнейшее сравнение родов бактерий в микробиоценозе кишечника у групп пациентов с наличием и отсутствием ХГП было проведено с применением критерия Стьюдента и подтвердило наличие существенных различий между группами (табл. 1).

Таблица 1. Идентификация в составе микробиоценоза кишечника родов бактерий, указывающая на различия между пациентами с диагнозом ХГП и контролем (уровень достоверности: t>3,0 при р≤0,05); M±m

Достоверность полученных данных была проверена путем сопоставления состава родов в микробиоценозе пародонта у групп пациентов с наличием и отсутствием диагноза ХГП по той же методологической схеме; наличие существенных различий подтвердилось между группами (табл. 2).

Таблица 2. Идентификация в составе микробиоценоза пародонта родов бактерий, свидетельствующая о различиях между пациентами с диагнозом ХГП и контролем (уровень достоверности: t>3,0 при р≤0,05); M±m

Аналогичным способом было проведено сопоставление состава родов бактерий в микробиоценозе пародонта у групп пациентов с наличием и отсутствием диагноза ХГП, что также подтвердило наличие существенных различий между группами (см. табл. 2).

Анализируя данные табл. 1 и 2, необходимо отметить, что на уровне родов бактерий наблюдаются только три группы, повышение концентрации которых связано c патологическим состоянием пародонта: Brachymonas, Longilinea и Streptococcus. Причем для последнего рода различия между контрольной и основной группами статистически недостоверны, хотя средние величины различаются почти в 4 раза. Все 3 рода относятся к микрофлоре кишечника, а не пародонта, что подтверждает тезис о системном характере взаимосвязи между составом микробиоценозов кишечника и пародонта. Существенно большее количество групп: 20 родов микрофлоры кишечника и 6 родов микрофлоры пародонта ассоциированы со здоровым пародонтом. Роды Akkermansia, Thalassospira, Oxalobacter, Gracilibacter, Fibrobacter и Howardella представлены в фекалиях лиц со здоровым пародонтом в 200, 105, 88, 51, 27 и 25 раз в большей концентрации, чем в фекалиях пациентов с воспалительными поражениями пародонта. Они могут рассматриваться как потенциальные энтеропротекторы системного действия. Обращает на себя внимание присутствие среди протекторной микрофлоры пародонта рода Aggregatibacter, в который входит опасный пародонтопатоген Aggregatibacter actinomycetemcomitans. По-видимому, этот факт объясняется тем, что наиболее опасными конкурентами пародонтопатогенов могут являться их ближайшие таксономические родственники, обладающие сходным типом метаболизма, но не имеющие факторов патогенности.

Наиболее интересен факт обнаружения в кишечнике лиц со здоровым пародонтом повышенной доли бактерий рода Akkermansia (содержит единственный вид Akkermansia muciniphila). С 2013 г. опубликовано более 20 работ, в которых повышенный уровень A. muciniphila в микробиоценозе кишечника ассоциируется с индивидуальной устойчивостью человека к ожирению, диабету 2-го типа и развитию метаболического синдрома при любом типе питания [4]. В экспериментах на мышах и в ходе клинических исследований авторы установили, что повышение доли этой бактерии эффективно предотвращает развитие ожирения и диабета 2-го типа, в том числе при наличии генетической предрасположенности к диабету (на трансгенных мышах). Повышение содержания этой бактерии увеличивает продукцию эндогенных каннабиноидов, что способствует снижению склонности пациентов к локальным воспалительным реакциям. При этом авторы этой и других публикаций констатируют невозможность культивирования A. muciniphila на искусственных средах. Поэтому единственным методом влияния на ее численность остается использование пребиотиков.

Следующей задачей работы было сравнение количества бактерий различных видов в микробиоценозе кишечника у пациентов с наличием и отсутствием ХГП; сравнение также выполнялось с применением критерия Стьюдента (табл. 3).

Таблица 3. Идентификация в составе микробиоценоза кишечника видов бактерий, свидетельствующая о различиях между пациентами с ХГП и контроля (уровень достоверности: t>3,0 при р≤0,05); M±m

Аналогичным способом было выполнено сравнение количественного состава бактерий различных видов в микробиоценозе пародонта у групп пациентов с наличием и отсутствием ХГП (табл. 4).

Таблица 4. Идентификация в составе микробиоценоза пародонта видов бактерий, свидетельствующая о различиях между пациентами с диагнозом ХГП и контролем (уровень достоверности: t>3,0 при р≤0,05); M±m

Анализ выявил следующие закономерности:

— у пациентов с диагнозом ХГП наблюдается повышенное содержание в составе поддесневой микрофлоры 3 пародонтопатогенов «красного комплекса» по Сокранскому: P. gingivalis (p=0,0001), T. forsythensis (p=0,0002) и T. denticola (p=0,0012). В среднем различия в степени обсемененности этими бактериями для групп здоровых и больных ХГП составляют: для P. gingivalis — 6,7 цикла (104 раза), для T. forsythensis — 4,3 цикла (17 раз), для T. denticola — 2,3 цикла (4,9 раза). Обсемененность A. аctinomycetemcomitans и P. intermedia не является существенным фактором патогенеза, они в равной мере встречаются в контроле и у пациентов с ХГП соответственно (p=0,56 и 0,09);

— у пациентов с диагнозом ХГП наблюдается повышенное содержание в микробиоме кишечника представителей семейств Enterobacteriaceae (p=0,01) и Eubacteriaceae (p=0,003). В среднем различия в степени обсемененности этими бактериями для групп здоровых и больных пародонтитом составляют: для Enterobacteriaceae — 2,6 цикла (6 раз), для Eubacteriaceae — 3,9 цикла (15 раз).

Анализируя перечень видов из состава микробиоценозов кишечника и пародонта, ассоциированных с тем или иным состоянием пародонта, необходимо отметить, что, как и при анализе родов, в нем резко преобладают виды-протекторы, тогда как видов-патогенов насчитывается только два: Leptotrichia spp. и Brachymonas spp. Оба они идентифицированы в качестве фактора риска развития пародонтита в микробиоме кишечника, однако степень ассоциации этого признака с повышенным риском развития пародонтита невысока (соответственно t=4,0 и 3,3). Напротив, число видов-протекторов, повышение доли которых в консорциуме снижает риск развития пародонтита, достаточно велико: 39 видов в микробиоме кишечника и 19 — в микробиоме пародонта.

Наиболее значим из обнаруженных маркеров отсутствия предрасположенности к ХГП оказалось повышение доли в консорциуме A. muciniphila (t=133,7 при р=10–6). Этот результат полностью совпадает с наблюдениями, сделанными при анализе ассоциации по родам, что ожидаемо: в роде Akkermansia в настоящее время присутствует только 1 вид. Опубликованные данные о биологии A. muciniphila не позволяют судить о механизме ее воздействия на состояние здоровья человека [7], но имеется несколько статистически подтвержденных сообщений о положительном влиянии этой бактерии на риск развития диабета, ожирения, атопического дерматита и постантибиотической диареи, ассоциированной с C. dificile [3]. Имеются данные лабораторных исследований, показывающие способность A. muciniphila непосредственно влиять на снижение уровня холестерина в крови, провоспалительных цитокинов в крови, метаболизм антиоксидантов, поступающих с пищей. В совокупности эти наблюдения скорее позволяют предполагать наличие системных эффектов A. muciniphila на организм в целом, которые обусловливают лучшую или худшую степень защиты пародонта от воспалительных поражений. Опираясь на данные публикаций, аналогичный эффект, хотя и менее выраженный, может быть приписан и виду Ruminococcus bromii [7], повышение доли которого в консорциуме кишечника, по нашим данным, тесно связано с развитием пародонтита.

Описывая состав прочих видов, повышение доли которых в консорциуме влияет на риск развития пародонтита, необходимо отметить большое число видов, родственных известным пародонтопатогенам.

Системный характер взаимосвязи между составом микробиоценозов кишечника и пародонта подтверждается сходством между анаэробными консорциумами пародонта и ЖКТ.

Нами выявлено, что у пациентов со здоровым пародонтом процентное содержание P. gingivalis в консорциуме кишечника среднем в 2 раза выше, чем у пациентов с ХГП. Доля другого пародонтопатогена — T. denticola — в консорциуме кишечника контрольной группы в 6 раз выше, чем у пациентов с ХГП. При этом качественно оба вида пародонтопатогенов присутствуют в микробиоме кишечника всех пациентов как со здоровым, так и с пораженным пародонтом. Можно предположить, что защитный эффект гиперколонизации кишечника P. gingivalis и T. denticola опосредован на уровне индукции специфического иммунитета против пародонтопатогенов в форме выработки протективных антител. Не исключено также, что различия в содержании P. gingivalis и T. denticola в кишечнике двух сравниваемых групп обусловлены неодинаковым поведением других механизмов иммунитета на системном или местном уровне. Факт повсеместной встречаемости P. gingivalis и T. denticola в кишечнике всех пациентов вне зависимости от пародонтологического диагноза позволяет предполагать, что прямой обмен микрофлорой между слизистыми различных участков желудочно-кишечного тракта хотя и существует, но не являeтся единственным или даже центральным механизмом стабилизации состава микробиоценозов. По-видимому, эту функцию в первую очередь выполняют трофические цепи, симбиотические и антагонистические взаимодействия между анаэробными консорциумами в составе микробиоценоза, которые принципиально сходны в обоих случаях. Сходство между анаэробными консорциумами пародонта и прямой кишки проявляется и в том, что доминирующим видом в обоих случаях является Fusobacterium nucleatum.

При анализе пародонтопатогенных микроорганизмов, выявленных методом NGS-секвенирования, установлены наиболее близкие таксономические родственники большинства патогенов: A. segnis и A. aphrophilus (родственники A. actinomycetemcomitans), T. vencentii (родственник T. denticola), P. baroniae, Prevotella salivae и P. spp. (родственники P. intermedia), а также C. concisus (родственник C. jejuni — возбудителя энтероколитов).

Таким образом, наблюдаемая тенденция к острой конкуренции между близкими видами, включающими патогенные и протекторые варианты, позволяет предполагать аналогичное явление и внутри видов. Системный характер взаимосвязи между составом микробиоценозов кишечника и пародонта подтверждается сходством между анаэробными консорциумами пародонта и ЖКТ.

Работа выполнена при финансовой поддержке Министерства образования и науки РФ (государственное задание № 19.1724.2014/К в сфере научной деятельности).

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.