Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Бровкина А.Ф.

ФГБОУ ДПО «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Минздрава России

Сычев Д.А.

ФГБОУ ДПО «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Минздрава России

Торопова О.С.

ФГБОУ ДПО «Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования» Минздрава России

Влияние полиморфизма генов CYP3A4, CYP3A5 и NR3C1 на эффективность глюкокортикоидной терапии у больных эндокринной офтальмопатией

Авторы:

Бровкина А.Ф., Сычев Д.А., Торопова О.С.

Подробнее об авторах

Журнал: Вестник офтальмологии. 2020;136(6): 125‑132

Прочитано: 3322 раза


Как цитировать:

Бровкина А.Ф., Сычев Д.А., Торопова О.С. Влияние полиморфизма генов CYP3A4, CYP3A5 и NR3C1 на эффективность глюкокортикоидной терапии у больных эндокринной офтальмопатией. Вестник офтальмологии. 2020;136(6):125‑132.
Brovkina AF, Sychev DA, Toropova OS. Influence of CYP3A4, CYP3A5, and NR3C1 genes polymorphism on the effectiveness of glucocorticoid therapy in patients with endocrine ophthalmopathy. Russian Annals of Ophthalmology. 2020;136(6):125‑132. (In Russ., In Engl.)
https://doi.org/10.17116/oftalma2020136062125

Рекомендуем статьи по данной теме:
Кли­ни­ко-пси­хо­па­то­ло­ги­чес­кие осо­бен­нос­ти ре­зис­тен­тной ши­зоф­ре­нии. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(2):43-50

Эндокринную офтальмопатию (ЭОП; в зарубежной литературе — офтальмопатия/орбитопатия Грейвса) диагностируют у 25—50% пациентов с болезнью Грейвса [1]. В то же время эту патологию относят к редким заболеваниям [2]. Легкую степень ЭОП выявляют у 15% пациентов с гипертиреозом Грейвса [3], доля случаев с умеренно выраженным и тяжелым поражением с угрозой утраты зрения достигает 4,9% [4—6]. Патогенез ЭОП остается до конца не распознанным [7]. Имеются публикации, подтверждающие роль в возникновении ЭОП-факторов риска (генетическая предрасположенность, факторы окружающей среды, инфекция, стресс), но их реальное влияние на развитие патологического процесса остается предметом дискуссий [8]. Сегодня не вызывает сомнения, что T-клетки, ответственные за начало заболевания, B-клетки и орбитальные фибробласты являются ключевыми в развитии ЭОП. T-клетки активируются при встрече с пептидами TSH-R (рецептор тиреотропного гормона) на антиген-презентирующих клетках, B-клетки начинают секретировать антитела против TSH-R. Эти антитела стимулируют фолликулярные клетки щитовидной железы и орбитальные фибробласты. Последние, пролиферируя, вызывают изменения в мягких тканях орбиты [8]. Орбитальные фибробласты, T- и B-клетки, тесно взаимодействуя, запускают каскады иммунных и химических реакций [9, 10], что и приводит к развитию патологических изменений в экстраокулярных мышцах (воспаление) и орбитальной клетчатке (адипогенез) с последующим их фиброзом [8, 11]. Показано, что медиаторами T- и B-клеток являются цитокины (интерлейкин-2 и интерлейкин-16) [12, 13]. Еще в 1999 г. L.A. Kaback и T.J. Smith [14] отметили способность орбитальных фибробластов экспрессировать множественные ферменты, которые участвуют в биосинтезе гликозаминогликана гиалуроната, что впоследствии подтвердили другие исследователи [15]. Однако все еще остается множество вопросов в расшифровке патогенеза ЭОП, не уточнены биомаркеры, позволяющие диагностировать ЭОП на раннем этапе ее развития и прогнозировать результативность проводимой терапии. Клиническая картина ЭОП поливариантна, что затрудняет адекватное определение сроков лечения и корректную оценку их эффективности. Достаточно широко распространенная классификация ЭОП — Шкала клинической активности (Clinical Activity Score, CAS), предназначенная для оценки степени активности процесса, подвергается в последние годы все большей обоснованной критике [16—22]. Это связано с тем, что под термином «активность процесса» сторонники классификации CAS подразумевают степень выраженности клинических симптомов, хотя последнее свидетельствует больше в пользу компенсации патологического процесса. А активность процесса характеризуется временными параметрами, которые определяют длительность воспалительной реакции. Неактивному процессу свойственно замещение элементов воспаления в тканях их фиброзом.

В своей клинической практике на протяжении почти 30 лет мы подразделяем ЭОП на три клинические формы с выделением в двух из них (отечный экзофтальм и эндокринная миопатия) степени компенсации процесса. Сегодня доказано, что в основе механизма развития клинических симптомов отечного экзофтальма лежит клеточная инфильтрация мягкотканного содержимого орбиты (T- и B-лимфоциты, макрофаги, тучные и плазматические клетки), накопление гликозаминогликанов (приводят к избыточному оводнению мягких тканей орбиты). Все это способствует увеличению объема экстраокулярных мыщц и орбитальной клетчатки. Именно эти изменения лежат в основе развития экзофтальма.

В исходе воспалительного процесса спустя 16—18 мес развивается фиброз тканей орбиты [21, 23—26]. Местом первичной атаки патологического процесса могут быть как прямые мышцы глаза (миогенный вариант отечного экзофтальма), так и орбитальная клетчатка (липогенный вариант отечного экзофтальма) [22, 25, 27, 28]. Чаще встречается смешанный вариант отечного экзофтальма, клиническое течение которого зависит от преобладания зоны поражения той или другой ткани [29]. Из представленных клинических форм ЭОП наиболее тяжело протекает отечный экзофтальм миогенной и смешанной формы. Такие больные составляют от 5 до 7% среди всей группы больных ЭОП [30]. Что касается липогенного варианта отечного экзофтальма, то к настоящему времени сложилось мнение, что у больных этой подгруппы часть орбитальных фибробластов (преадипоциты) способны дифференцироваться в зрелые адипоциты. Это и отличает их от фибробластов других локализаций [25, 26, 31, 32]. По данным H. Li и соавт. [33], орбитальные фибробласты у таких больных на фоне повышенной чувствительности к воспалительным цитокинам могут приобретать внутренний фибропролиферативный фенотип с формированием фиброза.

Более 65 лет основным методом патогенетического лечения больных ЭОП являются глюкокортикоиды (ГК). Наряду с положительными результатами лечения отмечают наличие и стероидорезистентных форм ЭОП, частота которых колеблется в пределах 4—5% [21]. По мнению других авторов, число пациентов, не реагирующих на глюкокортикоидную (ГК-) терапию, может составлять 20—30% [3]. Получаемый удовлетворительный ответ на ГК-терапию у 60—80% пациентов связывают с межиндивидуальной изменчивостью [34]. На молекулярном уровне ГК оказывают свои лечебные эффекты на клетки-мишени путем связывания с ГК-рецептором NR3C1 под влиянием ферментов, принимающих участие в метаболизме стероидов [35]. Наибольшую роль играют ферменты CYP3А4 и CYP3А5 системы цитохрома Р450 [36, 37]. Причины формирования резистентности к ГК до конца не известны. В последнее время в литературе появились сведения, что одной из причин неэффективного лечения ГК аутоиммунных заболеваний могут быть индивидуальные генетические особенности, обусловленные наличием полиморфных вариантов генов ГК-рецептора NR3C1 и ферментов системы цитохрома Р450 [38—40]. Полагают, что полиморфизм генов ферментов оказывает влияние на эффективность терапии не только за счет изменения процессов всасывания и экскреции препаратов, но также за счет структуры и функции рецепторов, на которые воздействуют лекарственные вещества [41]. Имеются сведения о роли полиморфных вариантов гена ГК-рецептора NR3C1 и цитохрома Р450 на развитие и формирование резистентности к ГК при таких аутоиммунных заболеваниях, как бронхиальная астма, ревматоидный артрит, системная красная волчанка, болезнь Крона, неспецифический язвенный колит [42—45]. Полагают, что она может достигать 50% [46, 47]. ЭОП относят к аутоиммунным заболеваниям, и она также может быть представлена стероидорезистентными формами. Было показано, что активизация воспаления у больных ЭОП обусловлена дисбалансом в перекрестных помехах между NR3C1 и ядерным фактором каппа-B (NF-κB) — медиатором воспаления [25]. Однако публикации по этой теме единичны, и посвящены они изучению влияния полиморфизма гена NR3C1 на резистентность больных ЭОП к ГК-терапии [3, 25, 48].

Цель исследования — изучить возможности фармакогенетического тестирования по полиморфизму гена ГК-рецептора NR3C1 и цитохрома Р450 в прогнозировании эффективности ГК-терапии у больных с отечным экзофтальмом как одной из клинических форм ЭОП.

Материал и методы

Обследовано 75 больных ЭОП (150 орбит). Женщин было 58, мужчин — 17, средний возраст составил 52,65±12,6 года (от 27 до 84 лет). Из них 52 пациента (104 орбиты) были обследованы и пролечены нами. Ретроспективная оценка состояния клинической картины до ГК-терапии проведена по медицинской документации у 23 больных (46 орбит), и эта группа послужила контролем. Распределение больных ЭОП по клиническим формам представлено в табл. 1. Активность процесса определяли по краткости анамнеза (активная стадия отечного экзофтальма длится до 18 мес, эндокринной миопатии — до 5 мес [49]), стадию компенсации патологического процесса — по степени выраженности клинических симптомов (суб- и декомпенсированный отечный экзофтальм). Длительность заболевания варьировала от 2 мес до 4 лет (табл. 2).

Таблица 1. Распределение больных ЭОП по клиническим формам

Клиническая форма ЭОП

Степень компенсации процесса

Число больных (количество орбит)

Отечный экзофтальм:

миогенный

Суб- и декомпенсация

37 (74)

липогенный

Компенсация

12 (24)

смешанный

Субкомпенсация

9 (18)

Эндокринная миопатия

Субкомпенсация по диплопии

8 (16)

Эндокринная миопатия в стадии фиброза

9 (18)

Всего

75 (150)

Таблица 2. Длительность ЭОП у больных с учетом клинических форм

Варианты клинических форм ЭОП

Средняя длительность, мес

Отечный экзофтальм:

миогенный

7,3±3,4

липогенный

25,9±14,2*

смешанный

7,6±3,84*

Эндокринная миопатия:

субкомпенсация по диплопии

4,4±1,5

в стадии фиброза

7,8±2,1*

Примечание. * — длительность анамнеза до начала лечения. ГК-терапию проводили по месту жительства. Оценка эффективности ГК-терапии проведена ретроспективно.

Все больные получали ГК-терапию: в виде пульс-терапии — 43 пациента, ретробульбарные инъекции — 32 пациента (из них 7 человек дополнительно принимали ГК внутрь). Тип ответа на ГК-терапию с учетом анамнеза представлен в табл. 3.

Таблица 3. Тип ответа на ГК-терапию с учетом анамнеза

Клиническая форма

Ответ на ГК-терапию

Число больных (количество орбит)

Длительность заболевания, мес

Отечный экзофтальм:

миогенный

Положительный

30 (60)

7,2±2,8

Резистентность

7 (14)

7,4±4,0

липогенный

Положительный

Резистентность

12 (24)

25,9±14,2

смешанный

Положительный

7 (14)

6,4±3,4

Резистентность

2 (4)

12,0±0

Эндокринная миопатия:

субкомпенсация по диплопии

Положительный

6 (12)

4,2±1,2

Резистентность

2 (4)

5,0±2,8

в стадии фиброза

Положительный

Резистентность

9 (18)

7,8±2,1

Методы обследования включали анализ жалоб и анамнеза заболевания, стандартный офтальмологический осмотр (острота зрения, тонометрия по Маклакову/пневмотонометрия при поражении роговицы, периметрия), наружный осмотр глаза с оценкой состояния периорбитальных тканей, определение формы и величины глазной щели (вертикальный размер), положения глаза в орбите, экзофтальмометрию по Гертелю, биомикроскопию и биомикроофтальмоскопию. Состояние экстраокулярных мыщц и ретробульбарной клетчатки (биометрия, форма, плотность ткани) оценивали по данным ультразвукового сканирования и компьютерной томографии орбит.

Генетический анализ полиморфных маркеров A6986G гена CYP3A5, C>Tintron 6 гена CYP3A4 и rs6190 гена NR3C1 проводили с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени.

Статистический анализ зависимости ответа на ГК-терапию от генотипа полиморфизма исследуемых генов для выборок малого объема проводили с использованием непараметрического статистического критерия Манна—Уитни с помощью программы Statistica 10.0 (StatSoft Inc., США).

Результаты и обсуждение

В обследованной группе преобладали женщины (77,3%), мужчин было 22,7%. Миогенный и смешанный отечный экзофтальм диагностирован у 46 больных (92 орбиты), липогенный — у 12 (24 орбиты), эндокринная миопатия — у 17 больных (34 орбиты). Суб- и декомпенсированный отечный экзофтальм, эндокринная миопатия имелись у 54 больных (108 орбит), компенсация процесса — у 12 (липогенная форма отечного экзофтальма), ЭОП в стадия фиброза — у 9 больных. Эффективность проводимой ГК-терапии оценивали по клиническим симптомам воспалительного процесса (уменьшение и полный регресс отека и гиперемии слезного мясца и полулунной складки, исчезновение хемоза, уменьшение экзофтальма, нормализация внутриглазного давления, восстановление подвижности глаза, исчезновение диплопии, повышение или полное восстановление зрительных функций).

В зависимости от ответа на ГК-терапию больные были разделены на две группы: положительный ответ наблюдали у 43 больных (86 орбит), его отсутствие — у 32 пациентов (64 орбиты). Из 75 больных получали ГК-терапию по месту жительства и к нам поступили в связи с отсутствием эффекта 23 человека, в том числе больные липогенным вариантом отечного экзофтальма (n=12), первичной миопатией в стадии фиброза (n=9) и так называемый смешанный вариант отечного экзофтальма (n=2).

Результаты генотипирования по полиморфному маркеру A6986G гена CYP3A5, C>Tintron 6 гена CYP3A4 и rs6190 гена NR3C1 в исследуемых группах представлены в табл. 4.

Таблица 4. Результаты ГК-терапии у больных ЭОП с учетом распределения генотипов полиморфизма генов NR3C1, CYP3A5 и CYP3A4

Ответ на ГК-терапию

CYP3A5 (A6986G)

CYP3A4*22 (C>T intron 6 rs35599367)

NR3C1 (rs6190)

GG

AG

СС

СТ

GG

AG

Положительный ответ, n (%)

36 (48)

7 (9,3)

41 (54,7)

2 (2,6)

43 (57,3)

0

Резистентность, n (%)

27 (36)

5 (6,7)

32 (42,7)

0

31 (41,3)

1 (1,4)

Всего

63

12

73

2

74

1

Как следует из табл. 4, какой-либо закономерности в распределении носителей гомо- и гетерозиготных генотипов полиморфизма генов CYP3A5, CYP3A4 и NR3C1 и их влиянии на ГК-ответ у больных ЭОП не выявлено (p>0,05). Но наблюдалась бóльшая частота встречаемости положительного ответа на ГК-терапию у больных ЭОП с гомозиготным генотипом полиморфизма всех трех исследуемых генов (соответственно 48; 54,7 и 57,3%). B. Boyle и соавторы исследовали роль четырех других полиморфизмов гена рецептора ГК (N363S, ER22/23EK, A3669G и BclI) у пациентов с ЭОП и при сопоставлении с контролем также не выявили преимущества ни одного из них [50]. Подобная частота встречаемости гомозиготных генотипов CYP3A5, CYP3A4 и NR3C1 соответствует частоте их распространенности среди населения северного и западноевропейского происхождения: 92,8% — гомозиготный генотип GG полиморфизма гена CYP3A5, 90,3% — генотип GG полиморфизма гена рецептора ГК (сайт SNPedia — база данных однонуклеотидного полиморфизма).

В табл. 5 представлены реакция на ГК-терапию клинических форм ЭОП и распределение генотипов полиморфизма A6986G гена CYP3A5, C>Tintron 6 гена CYP3A4 и rs6190 гена NR3C1.

Таблица 5. Ответ на ГК-терапию с учетом клинических форм ЭОП и распределения генотипов полиморфизма генов CYP3A5, CYP3A4 и NR3C1

Клиническая форма

Ответ на ГК-терапию

CYP3A5 (A6986G)

CYP3A4*22 (C>T intron 6 rs35599367)

NR3C1 (rs6190)

GG

AG

СС

СТ

GG

AG

Отечный экзофтальм:

миогенный

Положительный

25

5

29

1

30

0

Резистентность

6

1

7

0

7

0

липогенный

Резистентность

8

4

12

0

12

0

смешанный

Положительный

6

1

6

1

7

0

Резистентность

2

0

2

0

2

0

Эндокринная миопатия:

активная

Положительный

5

1

6

0

6

0

Резистентность

2

0

2

0

2

0

фиброз

Положительный

0

0

0

0

0

0

Резистентность

9

0

9

0

8

1

Всего

63

12

73

2

74

1

Негативный ответ на ГК-терапию наблюдали у 12% больных миогеннным и смешанным вариантами отечного экзофтальма в стадии суб- и декомпенсации. Как правило, эти больные до начала лечения имели небольшую длительность заболевания, следовательно, патологический процесс можно было расценивать как активную стадию. Объяснение такому факту представили в своей работе I.L. Romero-Kusabara и соавт. [25]. Исследователи выявили повышение уровня экспрессии NR3C1 непосредственно в мышечной ткани (биоптат измененной мыщцы у больных ЭОП) по сравнению с контрольной группой и заключили, что чувствительность к ГК может зависеть от баланса между экспрессией NR3C1 и концентрацией медиаторов воспаления, таких как NF-κB и FOS, непосредственно в мышечной ткани.

Косвенным подтверждением сказанному могут служить два наших наблюдения. Речь идет о больных, страдающих смешанным вариантом отечного экзофтальма, с длительностью заболевания до начала ГК-терапии в пределах 12 мес. В обоих случаях четкого терапевтического ответа на ГК-терапию не получено. В связи с этим с целью эвакуации избытка орбитальной клетчатки больным была проведена внутренняя декомпрессия орбиты. В послеоперационном периоде отмечался хороший косметический и функциональный эффект. Есть основание полагать, что в таких случаях наряду с воспалительными цитокинами немалую роль играет снижение противовоспалительной функции NR3C1 в орбитальной клетчатке, наполненной дифференцированными фибробластами, что характерно для липогенного варианта отечного экзофтальма [10, 26].

Аналогичный ответ на ГК-терапию был получен у всех 12 больных, страдающих липогенным вариантом отечного экзофтальма с длительностью заболевания в среднем около 25 мес. Для этого типа отечного экзофтальма характерно довольно монотонное клиническое течение с осевым экзофтальмом без признаков воспаления и с постепенным переходом в стадию фиброза. Процесс, как правило, компенсирован. Именно эти больные в группе отечного экзофтальма и составляют основную «стероидорезистентную» группу.

Молекулярно-биохимические исследования последних лет позволили объяснить причину неэффективности ГК-терапии. Фибробласты в экстраокулярных мышцах у больных ЭОП, как правило, относятся к Thy-1-положительным, а большинство фибробластов в орбитальном жире — к Thy-1-отрицательным, они-то и становятся зрелыми адипоцитами [8, 51, 52]. Активированные орбитальные фибробласты при липогенном отечном экзофтальме пролиферируют, дифференцируются в адипоциты и миофибробласты и играют ключевую роль в продукции внеклеточного матрикса. Чрезмерная активность орбитальных фибробластов способствует расширению, ремоделированию и фиброзу орбитальных тканей [26]. Но до развития фиброза противовоспалительная функция NR3C1 может быть снижена в мягкотканном содержимом орбиты, которое инфильтрировано дифференцированными фибробластами и представителями воспаления в виде профибротических цитокинов [11].

Заключение

Полученные результаты фармакогенетического тестирования по гену ГК-рецептора NR3C1 и цитохрома Р450 не позволяют с достоверностью подтвердить влияние полиморфизма исследуемых генов на эффективность ГК-терапии у больных ЭОП. Возможным объяснением резистентности к ГК у пациентов с отечным экзофтальмом является снижение противовоспалительной функции ГК-рецептора NR3C1 орбитальной клетчатки ввиду большого содержания дифференцированных фибробластов и быстрого развития фиброзных изменений. Необходимо учитывать клинико-диагностические критерии (клиническую форму ЭОП, длительность заболевания до начала проведения ГК-терапии).

Исследование выполнено при финансовой поддержке РФФИ в рамках научного проекта №19-315-90038.

Участие авторов:

Концепция и дизайн исследования: А.Б.

Сбор и обработка материала: О.Т.

Статистическая обработка данных: О.Т.

Написание текста: А.Б., О.Т.

Редактирование: Д.С.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Smith TJ. Pathogenesis of Graves’ orbitopathy: A 2010 update. J Endocrinol Invest. 2010;33(6):414-421.  https://doi.org/10.1007/BF03346614
  2. Perros P, Hegedüs, Bartalena L, Marcocci C, Kahaly GJ, Baldeschi L, Salvi M, Lazarus JH, Eckstein A, Pitz S, Boboridis K, Anagnostis P, Ayvaz G, Boschi A, Brix TH, Currò N, Konuk O, Marinò M, Mitchell AL, Stankovic B, Törüner FB, von Arx G, Zarković M, Wiersinga WM. Graves’ orbitopathy as a rare disease in Europe: a European Group on Graves’ Orbitopathy (EUGOGO) position statement. Orphanet J Rare Dis. 2017;12:72-74.  https://doi.org/10.1186/s13023-017-0625-1
  3. Vannucchi G, Covelli D, Campi I, Origo D, Curro N, Cirello V, Dazzi D, Beck-Peccoz P, Salvi M. The therapeutic outcomes of intravenous steroids therapy for active Graves orbitopathy is influenced by the time of response but not polymorph of the glucocorticoid receptor. Eur J Endocrinol. 2013; 170(1):55-61.  https://doi.org/10.1530/EJE-13-0611
  4. Abraham-Nordling M, Byström K, Törring O, Lantz M, Berg G, Calissendorff J. Incidence of hyperthyroidism in Sweden. Eur J Endocrinol. 2011; 165:899-905.  https://doi.org/10.1530/EJE-11-0548
  5. Zaletel K, Gaberscek S, Pirnat E. Ten-year follow-up of thyroid epidemiology in Slovenia after increase in salt iodization. Croat Med J. 2011;52:615-621.  https://doi.org/10.3325/cmj.2011.52.615
  6. Tanda ML, Piantanida E, Liparulo L, Veronesi G, Lai A, Sassi L, Pariani N, Gallo D, Azzolini C, Ferrario M, Bartalena L. Prevalence and natural history of Graves’ orbitopathy in a large series of patients with newly diagnosed Graves’ hyperthyroidism seen at a single center. J Clin Endocrinol Metab. 2013;98:1443-1449. https://doi.org/10.1210/jc.2012-3873
  7. Brent GA. Graves’ Disease. N Engl J Med. 2008;358(24):2594-2605. https://doi.org/10.1056/NEJMcp0801880
  8. Wang Y, Smith TJ. Current concepts in the molecular pathogenesis of thyroid-associated ophthalmopathy. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2014;55(3):1735-1748. https://doi.org/10.1167/iovs.14-14002
  9. Lehmann GM, Garcia-Bates TM, Smith TJ, Feldon SE, Phipps RP. Regulation of lymphocyte function by PPARγ: relevance to thyroid eye disease-related inflammation. PPAR Res. 2008;2008:895-901.  https://doi.org/10.1155/2008/895901
  10. Khong JJ, McNab AA, Ebeling PR, Craig JE, Selva D. Pathogenesis of thyroid eye disease: review and update on molecular mechanisms. Br J Ophthalmol. 2016;100(1):142-150.  https://doi.org/10.1136/bjophthalmol-2015-307399
  11. Smith TJ. TSH-receptor-expressing fibrocytes and thyroid-associated ophthalmopathy. Nat Rev Endocrinol. 2015;11(3):171-181.  https://doi.org/10.1038/nrendo.2014.226
  12. Liang C, Du W, Dong Q, Liu X, Li W, Wang Y, Gao G. Expression levels and genetic polymorphisms of interleukin-2 and interleukin-10 as biomarkers of Graves’ disease. Exp Ther Med. 2015;9(3):925-930.  https://doi.org/10.3892/etm.2015.2180
  13. Mysliwiec J, Palyga I, Nikolajuk A, Kowalska A, Gorska M. Serum interleukin-16 and RANTES during treatment of Graves’ orbitopathy with corticosteroids and teleradiotherapy. Endokrynol Pol. 2012;63(2):92-96. 
  14. Kaback LA, Smith TJ. Expression of hyaluronan synthase messenger ribonucleic acids and their induction by interleukin-1beta in human orbital fibroblasts: potential insight into the molecular pathogenesis of thyroid-associated ophthalmopathy. J Clin Endocrinol Metab. 1999;84(11):4079-4084. https://doi.org/10.1210/jcem.84.11.6111
  15. Tsui S, Fernando R, Chen B, Smith TJ. Divergent Sp1 levels may underlie differential expression of UDP glucose dehydrogenase by fibroblasts: Role in susceptibility to orbital Graves’ disease. J Biol Chem. 2011;286(27):24487-24499. https://doi.org/10.1074/jbc.M111.241166
  16. Goh MS, McNab AA. Orbital decompression in Graves’ orbitopathy: efficacy and safety. Intern Med J. 2005;35(10):586-591.  https://doi.org/10.1111/j.1445-5994.2005.00933.X
  17. Бровкина А.Ф., Стоюхина А.С. Классификация эндокринной офтальмопатии. Проблемы эндокринологии. 2006;52(5):11-14. 
  18. Stiebel-Kalish H, Robenshtok E, Hasanreisoglu M, Ezrachi D, Shimon I, Leibovici L. Treatment modalities for Graves’ ophthalmopathy: systematic review and meta-analysis. J Clin Endocrinol Metab. 2009;94(8):2708-2716. https://doi.org/10.1210/jc.2009-0376
  19. Tachibana S, Murakami T, Noguchi H, Noguchi Y, Nakashima A, Ohyabu Y, Noguchi S. Orbital magnetic resonance imaging combined with clinical activity score can improve the sensitivity of detection of disease activity and prediction of response to immunosuppressive therapy for Graves’ ophthalmopathy. Endocr J. 2010;57(10):853-861.  https://doi.org/10.1507/endocrj.k10e-156
  20. Dolman PJ. Evaluating Graves’ orbitopathy. Best Pract Res Clin Endocrinol Metab. 2012;26(3):229-248.  https://doi.org/10.1016/j.beem.2011.11.007
  21. Bartalena L, Baldeschi L, Boboridis K, Eckstein A, Kahaly GJ, Marcocci C, Perros P, Salvi M, Wiersinga WM. The 2016 European Thyroid Association/European Group on Graves’ Orbitopathy Guidelines for the Management of Graves’ Orbitopathy. Eur Thyroid J. 2016;5(1):9-26.  https://doi.org/10.1159/000443828
  22. Turck N, Eperon S, De Los Angeles G, Obéric A, Hamédani M. Thyroid-Associated Orbitopathy and BiomaMarkers: Where We Are and What We Can Hope for the Future. Dis Markers. 2018;2018:7010196. https://doi.org/10.1155/2018/7010196
  23. Бровкина А.Ф. Современные аспекты патогенеза и лечения эндокринной офтальмопатии. Вестник Российской академии медицинских наук. 2003;(5):52-54. 
  24. Bahn RS. Pathophysiology of Graves’ ophthalmopathy: the cycle of disease. J Clin Endocrinol Metab. 2003;88(5):1939-1946. https://doi.org/10.1210/jc.2002-030010
  25. Romero-Kusabara IL, Filho JV, Scalissi NM, Melo KC, Demartino G, Longui CA, Melo MR, Cury AN. Distinct inflammatory gene expression in extraocular muscle and fat from patients with Graves’ orbitopathy. Eur J Endocrinol. 2017;176(4):481-488.  https://doi.org/10.1530/EJE-16-0945
  26. Łacheta D, Miśkiewicz P, Głuszko A, Nowicka G, Struga M, Kantor I, Poślednik KB, Mirza S, Szczepański MJ. Immunological Aspects of Graves’ Ophthalmopathy. Biomed Res Int. 2019;2019:7453260. https://doi.org/10.1155/2019/7453260
  27. Nunery WR, Martin RT, Heinz GW, Gavin TJ. The association of cigarette smoking with clinical subtypes of ophthalmic Graves’ disease. Ophthalmic Plast Reconstr Surg. 1993;9(2):77-82.  https://doi.org/10.1097/00002341-199306000-00001
  28. Бровкина А.Ф., Аубакирова А.С., Яценко О.Ю., Мослехи Ш. Липогенный вариант отечного экзофтальма (клиника, лечение). Вестник офтальмологии. 2008;(2):28-30. 
  29. Бровкина А.Ф., Кармазановский Г.Г., Яценко О.Ю. Изменение экстраокулярных мышц и ретробульбарной клетчатки у больных отечным экзофтальмом в свете компьютерной томографии. Журнал Медицинская визуализация. 2007;(4):7-10. 
  30. Бровкина А.Ф. Эндокринная офтальмопатия. М.: ГЭОТАР-Мед; 2004.
  31. Koumas L, Smith TJ, Feldon S, Blumberg N, Phipps RP. Thy-1 Expression in Human Fibroblast Subsets Defines Myofibroblastic or Lipofibroblastic Phenotypes. Am J Pathol. 2003;163(4):1291-1300. https://doi.org/10.1016/S0002-9440(10)63488-8
  32. Khoo TK, Coenen MJ, Schiefer AR, Kumar S, Bahn RS. Evidence for enhanced Thy-1 (CD90) expression in orbital fibroblasts of patients with Graves’ophthalmopathy. Thyroid. 2008;18(12):1291-1296. https://doi.org/10.1089/thy.2008.0255
  33. Li H, Fitchett C, Kozdon K, Jayaram H, Ros GEE, Bailly M, Ezra DG. Independent Adipogenic and Contractile Properties of Fibroblasts in Graves’ Orbitopathy: An In Vitro Model for the Evaluation of Treatments. PLoS One. 2014;9(4):e95586. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0095586
  34. Kahaly GJ, Shimony O, Gellman YN, Lytton SD, Eshkar-Sebban L, Rosenblum N, Refaeli E, Kassem SIlany J, Naor D. Regulatory T-cells in Graves’ orbitopathy: baseline findings and immunomodulation by anti-T lymphocyte globulin. J Clin Endocrinol Metabolism. 2011;96(2):422-429.  https://doi.org/10.1210/jc.2010-1424
  35. Oakley RH, Cidlowski JA. The Biology of the Glucocorticoid Receptor: New Signaling Mechanisms in Health and Disease. J Allergy Clin Immunol. 2013; 132(5):1033-1044. https://doi.org/10.1016/j.jaci.2013.09.007
  36. Murai T, Reilly CA, Ward RM, Yost GS. The inhaled glucocorticoid fluticasone propionate efficiently inactivates cytochrome P450 3A5, a predominant lung P450 enzyme. Chem Res Toxicol. 2010;23(8):1356-1364. https://doi.org/10.1021/tx100124k
  37. Sychev DA, Ashraf G Md, Svistunov AA. The cytochrome P450 isoenzyme and some new opportunities for the prediction of negative drug interaction in vivo. Drug Des Devel Ther. 2018;12:1147-1156. https://doi.org/10.2147/DDDT.S149069
  38. Orlovsky MA. Allelic polymorphism of glucocorticoid receptor NR3C1 (GR): from molecular biology to clinical implications. Biopolym Cell. 2012;28(5): 338-351.  https://doi.org/10.7124/bc.000061
  39. Ingelman-Sundberg M. Pharmacogenetics of cytochrome P450 and its applications in drug therapy: the past, present and future. Trends Pharmacol Sci. 2004;25(4):193-200.  https://doi.org/10.1016/j.tips.2004.02.007
  40. Molnár Á, Patócs A, Likó I, Nyírő G, Rácz K, Tóth M, Sármán B. An unexpected, mild phenotype of glucocorticoid resistance associated with glucocorticoid receptor gene mutation case report and review of the literature. BMC Med Genet. 2018;19(1):37.  https://doi.org/10.1186/s12881-018-0552-6
  41. Tompkins LM, Wallace AD. Mechanisms of cytochrome P450 induction. J Biochem Mol Toxicol. 2007;21(4):176-181.  https://doi.org/10.1002/jbt.20180
  42. Stockmann C, Fassl B, Gaedigk R, Nkoy F, Uchida DA, Monson S, Reilly CA, Leeder JS, Yost GS, Ward RM. Fluticasone Propionate Pharmacogenetics: CYP3A4*22 Polymorphism and Pediatric Asthma Control. J Pediatr. 2013;162(6):1222-1227. https://doi.org/10.1016/j.jpeds.2012.11.031
  43. Залетова Н.К., Чухловин А.Б., Третьяк А.Т., Востокова Л.П., Корниенко Е.А. Генетические факторы, влияющие на эффективность терапии глюкокортикоидами при хронических воспалительных заболеваниях кишечника у детей. Педиатр. 2015;6(3):91-97. 
  44. Quax RAM, Koper JW, Huisman AM, Weel A, Hazes JMW, Lamberts SWJ, Feelders RA. Polymorphisms in the glucocorticoid receptor gene and in the glucocorticoid-induced transcript 1 gene are associated with disease activity and response to glucocorticoid bridging therapy in rheumatoid arthritis. Rheumatol Int. 2015;35(8):1325-1333. https://doi.org/10.1007/s00296-015-3235-z
  45. Ito A, Okada Y, Hashita T. Sex Differences in the Blood Concentration of Tacrolimus in Systemic Lupus Erythematosus and Rheumatoid Arthritis Patients with CYP3A5*3/*3. Biochem Genet. 2017;55(3):268-277.  https://doi.org/10.1007/s10528-017-9795-8
  46. Lane S, Lee T. Mechanisms of corticosteroid resistance in asthmatic patients. Int Arch Allergy Immunol. 1997;113:193-195.  https://doi.org/10.1159/000237544
  47. Panek M, Pietras T, Kupryś-Lipińska I. The analysis of the factors influencing the development of glucocorticoid resistance in the etiopathogenesis of severe bronchial asthma. Postepy Biochemii. 2010;56(4):373-382. 
  48. Саакян С.В., Пантелеева О.Г., Батырбекова Ф.Х., Сирмайс О.С., Мартиросян Н.С., Петунина Н.А., Цыганков А.Ю., Логинов В.И., Бурденный А.М. Генетические факторы развития резистентности к глюкокортикоидам у больных эндокринной офтальмопатией. Эффективная фармакотерапия. 2019;15(33):18-23.  https://doi.org/10.33978/2307-3586-2019-15-33-18-23
  49. Бровкина А.Ф., Жукова О.Д. Эндокринная миопатия — одна из клинических форм эндокринной офтальмопатии. Практическая медицина. 2016;2(94):17-21. 
  50. Boyle B, Korányi K, Patocs A, Liko I, Szappanos A, Bertalan R, Racz K, Balazs C. Polymorphisms of the glucocorticoid receptor gene in Graves ophthalmopathy. Br J Ophthalmol. 2008;92(1):131-134.  https://doi.org/10.1136/bjo.2007.126789
  51. Lehmann GM, Feldon SE, Smith TJ, Phipps RP. Immune mechanisms in thyroid eye disease. Thyroid. 2008;18(9):959-965.  https://doi.org/10.1089/thy.2007.0407
  52. Smith TJ, Tsai CC, Shih MJ, Tsui S, Chen B, Han R, Naik V, King CS, Press C, Kamat S, Goldberg RA, Phipps RP, Douglas RS, Gianoukakis AG. Unique attributes of orbital fibroblasts and global alterations in IGF-1 receptor signaling could explain thyroid-associated ophthalmopathy. Thyroid. 2008;18(9):983-988.  https://doi.org/10.1089/thy.2007.0404

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.