Торшин И.Ю.

Федеральный исследовательский центр «Информатика и управление» Российской академии наук

Громова О.А.

ФИЦ «Информатика и управление» Российской академии наук

О неврологических функциях и синергизме витаминов B1, B6 и B12

Авторы:

Торшин И.Ю., Громова О.А.

Подробнее об авторах

Журнал: Российский журнал боли. 2022;20(1): 56‑64

Прочитано: 54631 раз


Как цитировать:

Торшин И.Ю., Громова О.А. О неврологических функциях и синергизме витаминов B1, B6 и B12. Российский журнал боли. 2022;20(1):56‑64.
Torshin IYu, Gromova OA. Neurological functions and synergism of vitamins B1, B6 and B12. Russian Journal of Pain. 2022;20(1):56‑64. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/pain20222001156

Рекомендуем статьи по данной теме:
Эку­ли­зу­маб в ле­че­нии за­бо­ле­ва­ний спек­тра оп­ти­ко­ней­ро­ми­ели­та. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2025;(7-2):60-65

Введение

Дефицит витаминов группы B приводит к развитию неврологических заболеваний. Например, выраженный хронический дефицит витамина B1 у пациентов с алкоголизмом приводит к развитию синдрома С.С. Корсакова, характеризующегося снижением памяти на ближайшие события, депрессией, плаксивостью и демиелинизацией нейронов коры головного мозга и периферических нервов. Витамины B6 и B12 необходимы для метаболизации фолатов и обезвреживания гомоцистеина, что существенно для снижения нейровоспаления [1].

Неврологические эффекты витаминов группы B осуществляются прежде всего посредством поддержания активности соответствующих ферментов в составе протеома человека. Анализ 22 витамин-B1-зависимых белков, 78 витамин-B6-зависимых белков и 24 витамин-B12-зависимых белков протеома позволил провести комплексную системно-биологическую оценку синергических эффектов витаминов B1, B6, B12 (включая оценку влияния на синтез АТФ, нейротрансмиттеров и метаболизм аминокислот) и оценить спектр клинических применений сочетания этих витаминов [2].

В настоящей работе представлены результаты систематического анализа неврологических эффектов витаминов B1 (тиамин), B6 (пиридоксин) и B12 (цианокобаламин). Проведен анализ 1670 публикаций по фундаментальным и клиническим исследованиям неврологических эффектов витаминов B1, B6, B12 (запрос «(thiamine OR vitamin B1 OR benfotiamine OR pyridoxine OR pyridoxal OR vitamin B6 OR vitamin B12 OR cobalamin OR cyanocobalamin) AND neuron» в базе биомедицинских публикаций PubMed). Данная выборка текстов публикаций анализировалась с использованием топологического и метрического подходов к анализу данных [3].

Далее последовательно рассмотрены результаты исследований неврологических эффектов отдельных витаминов из группы B1, B6 и B12, основные механизмы молекулярного синергизма витаминов B1, B6, B12, участие витаминов B1, B6, B12 в детоксикации организма, синергизм B1+B6+B12 в терапии последствий приема алкоголя, нейродегенерации, демиелинизации и в терапии боли.

Неврологические эффекты витамина B1

Систематический анализ воздействий тиамина на протеом человека позволил выделить наиболее важные направления воздействия тиамина на организм: 1) воздействие на структуру нейронов (миелиновая оболочка, активация сигнального пути рецептора аденозина, развитие пирамидальных нейронов, развитие таламуса, гиппокампа, стриатума, коры мозжечка); 2) энергетический метаболизм клетки (синтез АТФ, митохондрии, цикл Кребса, пируватдегидрогеназа, оксоглутарат дегидрогеназа); 3) метаболизм углеводов (транскетолаза, гликоли), жиров и аминокислот с разветвленной цепью; 4) кроветворение (дифференцировка клеток при гемопоэзе) [2].

Перечисленные выше эффекты обусловлены коферментным действием производного тиамина (тиамина трифосфата), который встраивается в структуру соответствующих ферментов протеома. Некоферментное действие тиамина включает поддержку ацетилхолинергической нейротрансмиссии при совместном высвобождении тиамина и ацетилхолина в синаптическую щель. При участии тиаминтрифосфата осуществляется фосфорилирование белка рапсина, связанного с рецептором ацетилхолина. Кроме того, тиамин непосредственно взаимодействует с рецептором TAS2R1, что приводит к активации синаптических ионных каналов [4].

Дефицит тиамина может быть результатом его недостаточного потребления, повышенной потребности при различных заболеваниях, чрезмерного выведения, в том числе при хроническом употреблении алкоголя. Дефицит тиамина влияет на многие системы органов, включая сердечно-сосудистую, скелетно-мышечную, желудочно-кишечную, а также на центральную (ЦНС) и периферическую нервную систему [5].

Нервная ткань особенно чувствительна к дефициту тиамина, что в условиях глубокого авитаминоза приводит к энцефалопатии Вернике (энцефалопатия, глазодвигательная дисфункция и атаксия, гипоактивный делирий) [6]. Недостаточная концентрация тиамина в мозге вызывает каскад нежелательных событий (нарушение окислительного метаболизма, нейровоспаление, нейродегенерацию), характерных для нейродегенеративных заболеваний (болезни Альцгеймера, Паркинсона, Гентингтона) [7]. Известны вестибулярные и окуломоторные нарушения при дефиците тиамина [8].

Дефицит тиамина нейротоксичен, приводит к поведенческим расстройствам, связанным с повреждениями сосудов, нейровоспалением и дегенерацией нейронов. Дефицит тиамина стимулирует активацию микроглии и сосудистые реакции, приводящие к нейродегенерации таламуса. Эксайтотоксичность глутамата, вероятно, играет незначительную роль на ранней стадии нейродегенерации, связанной с дефицитом тиамина. На ранних стадиях основной вклад в нейродегенерацию вносит дисфункция эндотелия сосудов, приводящая к нарушению снабжения нейронов соответствующими нутриентами и дефициту B1 [9].

Дефицит тиамина способствует лейкоцитарной инфильтрации и усугубляет течение экспериментального аутоиммунного энцефаломиелита (ЭАЭ), который является моделью рассеянного склероза. На обострение ЭАЭ на фоне дефицита тиамина указывают патологические изменения в спинном мозге, включая активацию микроглии и резкое увеличение (до 140%) инфильтрации лейкоцитами T-хелперами (Th1 и Th17). Дефицит тиамина увеличивал экспрессию хемокина CCL2 и его рецептора CCR2, что связано с более сильным пролиферативным ответом лейкоцитов [10], приводящим к формированию лейкоцитоза.

Экспериментальный дефицит тиамина способствует усилению окислительного стресса (отмечены более низкие уровни антиоксидантных ферментов каталазы, глутатионредуктазы, глутатионпероксидазы, супероксиддисмутазы, глутатионтрансферазы) и вызывает нейродегенерацию, подтверждаемую гистопатологическими исследованиями [11].

Метаболизм тиамина имеет решающее значение для роста нейрональных сетей. Обеспеченность нервной ткани тиамином необходима для координации роста тел нейронов и дендритов. При нарушениях метаболизма тиамина формируются микроцефалия и нейродегенеративные изменения [12]. Кроме того, дефицит тиамина способствует формированию дефектов образования синапсов. В результате происходит системное снижение возбуждающей нейротрансмиссии, что сопровождается нарушением долговременной потенциации в структурах гиппокампа [13].

Дефицит тиамина приводит к усилению нейродегенеративных процессов в ряде областей головного мозга: в коре, продолговатом мозге и особенно в мозжечке. Связь между дисфункцией метаболизма углеводов (снижением активности тиамин-зависимых ферментов пируватдегидрогеназы, кетоглутаратдегидрогеназы и транскетолазы) и гибелью нейронов опосредована тем, что дефицит B1 увеличивает ток Ca2+ вследствие повышения уровней кальциевых каналов типа CaV1/2L в зернистых нейронах мозжечка [14]. Дефицит тиамина во время эмбрионального или раннего постнатального развития вызывает нарушения моторного контроля вследствие дисфункции мозжечка. Дефицит тиамина in vitro ускоряет инактивацию калиевого тока A-типа в зернистых нейронах, что приводит к гиперактивности и к апоптозу нейронов мозжечка [15].

Следует обязательно упомянуть временны́е рамки обратимости нейродегенерации, вызванной дефицитом витамина B1. Как отмечено ранее, дефицит тиамина уменьшает активность тиамин-зависимых ферментов, нарушает функцию митохондрий, ухудшает окислительный метаболизм и вызывает апоптоз нейронов. У мышей оценивалась динамика этих изменений в нейронах и микроглии, индуцированных дефицитом тиамина. Значительная потеря нейронов (29%) произошла через 8—9 дней после воспроизведения дефицита тиамина. Количество микроглии в исследованных областях мозга увеличилось на 16% к 8-м суткам эксперимента и почти на 400% к 11-м суткам. Введение тиамина на 8-е сутки дефицита витамина B1 блокировало дальнейшую потерю нейронов и гиперактивацию микроглии. Однако более позднее введение тиамина (на 11-е сутки) лишь частично обращало действие авитаминоза B1. Таким образом, необратимые изменения, ведущие к гибели нейронов и к гиперактивации микроглии, происходят на 8—9-е сутки глубокого дефицита витамина B1 [16].

Неврологические эффекты витамина B6

Витамин B6 (пиридоксин, пиридоксаль, пиридоксамин) участвует в метаболизме аминокислот, углеводов и жиров, необходим для нормального кроветворения, функционирования ЦНС и периферической нервной системы. Витамин B6 обеспечивает синаптическую передачу, процессы возбуждения/торможения в ЦНС, участвует в транспорте сфингозина, входящего в состав оболочки нервов, и в синтезе катехоламинов.

Пиридоксаль-5’-фосфат (ПЛФ) — биологически активная форма витамина B6, которая является кофактором около 80 ПЛФ-зависимых ферментов, вовлеченных в метаболизм углеводов, аминокислот, гема и нейротрансмиттеров. Систематический анализ биологической роли этих ферментов позволил установить следующие механизмы действия витамина B6 на организм: 1) энергетический метаболизм клетки и синтез АТФ (ответ на гипоксию, катаболизм гликогена и глюконеогенез, митохондриальный матрикс, метаболизм 2-оксоглутарата, метаболизм глиоксилата, биосинтез пирувата); 2) метаболизм аминокислот (цистеин, фенилаланин, аланин, аспартат, серин, глутамат, триптофан, лизин), включая активность трансаминаз; 3) структура и функция нейронов (биосинтез сфинголипидов, миелина, ГАМК); 4) гомеостаз синергических витамину B6 микронутриентов (таких как магний, тетрагидрофолат, гем, селен, НАДФ, молибдоптерин) [2].

Экспериментальные и клинические исследования подтверждают суммированные выше результаты протеомного анализа. ПЛФ-зависимые ферменты пиридоксалькиназа, ПЛФ-оксидаза и ряд ПЛФ-фосфатаз необходимы для метаболизации поступающего с пищей витамина B6, и врожденные дефекты в соответствующих генах вызывают недостаточность ПЛФ в нейронах. Внутриклеточный дефицит ПЛФ увеличивает возбудимость клеток Пуркинье мозжечка [17] и участвует в формировании неонатальной эпилептической энцефалопатии. Это заболевание не реагирует на обычные противоэпилептические препараты, но зачастую эффективно лечится ПЛФ, пиридоксином и другими витамерами B6 в соответствующих дозировках [18].

Дефицит витамина B6 связан с существенными нарушениями метаболизма аминокислот в ЦНС. У пациентов с витамин-B6-зависимой эпилепсией отмечаются сниженные концентрации серина и глицина в головном мозге [19]. Дефицит витамина B6 ассоциирован с центральными нарушениями проведения возбуждающих импульсов, обусловленными нарушениями обмена аспартата и глутамата [20]. Наследственная гомоцистинурия — еще одна аминоацидопатия, связанная с дефицитом витамина B6. При ранней диагностике этого заболевания и своевременном применении пиридоксина/ПЛФ в повышенных дозах можно избежать развития тяжелых неврологических и сосудистых осложнений гомоцистинурии. Лечение высокими дозами пиридоксина значительно облегчает дистонию конечностей и походки у таких пациентов [21].

Экспериментальная диета с высоким содержанием метионина, низким содержанием фолатов и витаминов B6/B1 вызывает нейродегенерацию и последующую потерю кратковременной памяти у мышей. Нарушение мозгового кровообращения на фоне такой диеты происходит, вероятно, вследствие повышенной проницаемости пиальных сосудов мягкой мозговой оболочки (так называемой микроваскулярной утечки) и снижения экспрессии эндотелиального кадхерина сосудов на фоне снижения активности нейрональной синтетазы оксида азота. Интересно отметить, что формирование существенных повреждений нейронов предшествует формированию эндотелиопатии [22].

Пренатальное развитие нейронов при экспериментальном дефиците витамина B6 у крыс связано с уменьшением общего количества нормальных нейронов в неокортексе и с увеличением процента сморщенных нейронов (700—1500% от контроля). Дефицит витамина B6 также приводил к снижению количества дендритов более высокой иерархии, к более низкой плотности синапсов в неокортексе, к нарушениям организации клеток Пуркинье в мозжечке и к уменьшению количества миелинизированных аксонов [23].

В экспериментальной модели ишемии диетарный дефицит витамина B6 стимулирует снижение концентрации нейротрофического фактора головного мозга BDNF, количества делящихся нейронов и нейробластов при одновременном увеличении уровней гомоцистеина, показателей окислительного стресса и степени повреждения нейронов [24].

При назначении пиридоксина в лечебных целях следует помнить, что данное вещество характеризуется достаточно узким коридором терапевтической безопасности. В эксперименте было показано, что назначение пиридоксина в дозах более 500 мг/сут в течение продолжительного периода времени может вызвать повреждение сенсорных нервных волокон и стимулировать развитие периферической полинейропатии [25].

Неврологические эффекты витамина B12

Витамин B12 участвует в синтезе нуклеотидов, является важным фактором нормального роста, кроветворения и развития эпителиальных клеток; необходим для метаболизма фолиевой кислоты и синтеза миелина. Системно-биологический анализ B12-зависимых белков [2] позволил суммировать воздействие витамина B12 на организм следующим образом: 1) метаболизм жиров (холестерина, жирных кислот с короткой цепью); 2) кроветворение (метилирование ДНК, метаболизм фолатов, дифференцировка гемопоэтических клеток-предшественников, переработка гомоцистеина, B12-зависимая анемия); 3) метаболизм микронутриентов (фолатов, витамина D, гема, экспрессия фолат-зависимых генов); 4) нейропротекторный и нейротрофический эффекты (ответ на повреждение аксонов, регенерация аксонов, клеточный ответ на оксид азота (NO), метаболизм глутатиона).

При дефиците витамина B12 активность соответствующих белков протеома нарушается, что снижает выживаемость нейронов и способствует гипоксии нервной ткани. Содержание кобаламина в головном мозге снижено при деменции, дегенерации миелина, атрофии мозга, расширении желудочков мозга и при поражениях сосудов мозга [26]. У пациентов с дефицитом витамина B12 невропатия мелких волокон подтверждается гистологическими исследованиями [27].

Известно, что дефицит витамина B12 ассоциирован с нарушениями развития нервной системы и нейродегенерацией. В частности, посредством контроля экспрессии лейкоцитарной антиген-зависимой рецепторной тирозин-протеинфосфатазы (LARPRTP) витамин B12 регулирует миграцию глиальных клеток и образование синапсов. Диетарный витамин B12 имеет решающее значение для экспрессии изофермента PTP-3A LARPRTP в нейронах и в глии. Экспрессия PTP-3A LARPRTP регулирует образование синапсов посредством взаимодействия с белком внеклеточного матрикса NID-1 [28].

У детей и подростков с дефицитом витамина B12 (n=33; 8—17 лет) среднее значение толщины желтого пятна сетчатки глаза составило 261,2±17,6 мкм в группе дефицита витамина B12 и 267,7±17,4 мкм в группе контроля, а среднее значение толщины хориоидеи — соответственно 360,1±59,8 мкм и 316,9±95,4 мкм. Нормальная толщина хориоидеи у здоровых людей составляет 250—350 мкм, а более высокие значения соответствуют хориоретинопатии на фоне повышенного воспаления [29].

В организме человека абсорбция цианокобаламина имеет некоторые особенности. При пероральном приеме витамин B12 всасывается путем активного транспорта (с участием внутреннего фактора Касла, вырабатываемого клетками желудка) или посредством пассивной диффузии. При этом посредством активного транспорта может единовременно всосаться не более 1,5 мкг витамина B12 (6—9 мкг в сутки). Незначительная часть витамина B12 (~1%) может проникать в кровь путем пассивной диффузии на протяжении всего кишечника. С увеличением дозы цианокобаламина процент всасывания из кишечника уменьшается [30].

О молекулярных механизмах синергического действия витаминов B1, B6, B12

У пациентов с неврологической симптоматикой традиционно используются витамины группы B в комбинации B1+B6+B12. Такая комбинация возникла не случайно, она основана на долговременной клинической практике лечения полинейропатий различного генеза, алкоголизма, деменции и др. Проведенный в работе [2] систематический анализ биологических ролей B1, B6, B12-зависимых белков показал многочисленные синергические взаимодействия этих витаминов на молекулярном уровне, включающие метаболизм аминокислот, углеводов, липидов, формирование структур нейронов, кроветворение, синтез АТФ и др.

В частности, тройственный синергизм B1+B6+B12 необходим для поддержания функции различных компартментов клетки (митохондрий, клеточных мембран, пероксисом, ядра клетки), для синтеза АТФ, профилактики анемии, врожденных пороков развития плода. Парный синергизм B1+B6 необходим для катаболизма аминокислот, глюкозы, жирных кислот, синтеза белка на рибосоме. Синергическое сочетание B1+B12 профилактирует расстройства метаболизма аминокислот с разветвленной цепью и липидов (диагнозы группы E71), а синергическое сочетание B1+B6 важно для профилактики дистрофии мышц, энцефалопатии. Сочетание B6+B12 важно для профилактики наследственной и идиопатической нейропатии (G60), нарушений метаболизма порфирина и билирубина (E80) [2].

Наиболее известным и крайне важным направлением тройственного синергического действия витаминов B1, B6, B12 является регуляция процессов нейровоспаления, осуществляемая, в частности, посредством обезвреживания гомоцистеина. Обычно повышенный уровень гомоцистеина связывают только с недостатком фолатов в пище. Однако повышенный уровень гомоцистеина также является результатом дефицита других витаминов группы B (прежде всего B6 и B12). В крупномасштабном исследовании здоровых добровольцев (n=10 601; средний возраст 56 лет) было проанализировано влияние всех известных витамеров B6, фолатов, кобаламина, рибофлавина на уровни гомоцистеина в крови. Было установлено, что более высоким концентрациям пиридоксаль-5-фосфата в крови соответствуют более низкие уровни гомоцистеина [31].

Важным результатом проведенного ранее протеомного анализа является установление молекулярных механизмов тройственного синергического действия витаминов B1, B6, B12, направленного на поддержание миелиновой оболочки нервных волокон [2]. Кроме того, синергизм данных витаминов проявляется в противоопухолевом действии при их сочетанном применении. При субхроническом внутрижелудочном введении комбинации B1+B6+B12 животным-опухоленосителям в ежедневной дозе 110 мг/кг наблюдалась устойчивая тенденция к торможению роста перевиваемой эпидермоидной карциномы легких Льюис [32].

Перечисленные молекулярные механизмы синергизма B1+B6+B12 важны для поддержки систем детоксикации организма, для терапии последствий приема алкоголя, лечения нейродегенеративных и демиелинизирующих заболеваний и для терапии боли.

Витамины B1, B6, B12 и системы детоксикации организма

Печень является одним из основных органов детоксикации. Именно в гепатоцитах происходит превращение ксенобиотиков в растворимые соединения, которые затем удаляются из организма с желчью или с мочой. Процесс детоксикации в печени включает два последовательных этапа: 1-я фаза — окисление, восстановление, гидроксилирование и гидролиз ксенобиотиков до промежуточных метаболитов; 2-я фаза — конъюгация, метилирование, сульфатирование и глюкуронизация промежуточных продуктов до конечных растворимых продуктов. В зависимости от химического состава и свойств ксенобиотики (канцерогены, лекарственные препараты, наркотические вещества и др.) подвергаются разным биохимическим реакциям [5].

Реакции 1-й фазы детоксикации осуществляются цитохромами P450. Кроме детоксикации ксенобиотиков цитохромы P450 необходимы для синтеза стероидов, желчных кислот и жирных кислот. Для нормальной работы системы цитохромов P450 необходимы витамины и микроэлементы, в первую очередь витамины группы B, аскорбиновая кислота (витамин C), токоферол (витамин E), цинк, магний, а также медь и селен.

В ходе реакций 2-й фазы детоксикации к промежуточным метаболитам присоединяются метильные, сульфгидрильные, ацильные группы, остатки глюкуроновой кислоты и аминокислот или глутатион, в результате чего модифицированные ксенобиотики гидрофилизируются и окончательно выводятся из организма. Витамины и микроэлементы также являются необходимыми участниками этих реакций. Так, одним из главных компонентов реакции метилирования является S-аденозилметионин (SAM), для синтеза которого требуются фолаты, витамин B6 и витамин B12. Для реакции сульфатирования требуются серосодержащие соединения, ацетилирования — тиамин (витамин B1), витамин C, пантотеновая кислота (витамин B5) и др. [5]

Таким образом, детоксикационные свойства витаминов важны для обезвреживания нейротоксичных ксенобиотиков. Всасывание тиамина ацинарными клетками поджелудочной железы происходит посредством опосредованного носителями процесса переносчиками тиамина THTR-1 и THTR-2. Хроническое воздействие алкоголя подавляет всасывание тиамина [33]. Пероральный прием пиридоксина эффективен при лечении пациентов с тяжелым отравлением изониазидом и рифампицином [34]. В зависимости от обеспеченности витамином B12 этанол может в меньшей степени снижать уровень глутатиона в печени и в головном мозге крыс [35]. Для профилактики врожденных пороков развития нервной системы, вызванных этанолом, комбинированный прием фолиевой кислоты и витамина B12 более эффективен, чем применение только фолиевой кислоты [36].

Следует отметить, что противотуберкулезные препараты являются классическим примером для создания моделей нейротоксичности в фармакологии. Экспериментальное исследование степени токсичности и оценка классов опасности 17 противотуберкулезных препаратов на крысах (n=3400) и мышах (n=3400) показали, что включение пиридоксина гидрохлорида в состав комбинированных противотуберкулезных препаратов позволяет значительно уменьшить их токсичность [37]. Таким образом, дефицит витаминов группы B, участвующих в регуляции детоксикационной системы печени, может приводить к неблагоприятным последствиям для ЦНС.

Синергизм витаминов B1, B6, B12 в терапии последствий приема алкоголя

При лечении больных алкогольными психозами особо важное значение имеет введение витаминов группы B. В федеральных клинических рекомендациях Российского общества психиатров по диагностике и лечению абстинентного состояния с делирием при алкогольном делирии рекомендуется использование витаминов группы B (тиамина, пиридоксина, цинокобаламина, фолатов) и аскорбиновой кислоты. В продромальном периоде лечения алкогольного делирия витаминотерапия проводится повышенными дозами витаминов B1 (6% 4 мл в/м), B6 (5% 4 мл в/м), B12 (0,01% 2 мл в/м), C (5% 5 мл в/в) и фолиевой кислоты (1 мг внутрь). В стадии развернутого делирия дозы витамины B1 и B6 вводят внутривенно и в более высоких дозах: чередуется введение витамина B1 6% 5—10 мл в/в до 2 раз в сутки и витамина B6 5% 5мл в/в 1 раз в сутки. Витамин B12 применяют в дозе 0,01% 2 мл в/м, а фолиевую кислоту принимают внутрь по 1 мг [38].

Наиболее ярким примером алкоголь-ассоциированных гиповитаминозов является выраженный дефицит витамина B1 у пациентов, страдающих алкогольной зависимостью. Хронический алкоголизм всегда связан с дефицитом тиамина, вызывающим селективную нейродегенерацию в головном мозге. Авитаминоз B1 усиливает гибель нейронов при участии РНК-активированной протеинкиназы PKR. Считается, что во многом развитие тяжелой формы белой горячки, как и острой формы энцефалопатии Гайе—Вернике, связано с дефицитом именно витамина B1. В таких состояниях тиамин вводится в повышенных дозах (до 500—1000 мг/сут). Именно в таких дозах с помощью тиамина удается погасить окислительные процессы и уменьшить выраженность гипоксии головного мозга у пациентов с алкоголизмом [39].

Синергизм витаминов B1, B6, B12 в терапии дегенеративных и демиелинизирующих изменений нервной ткани

Комплекс витаминов группы B инициирует рост и развитие эмбриональных клеток мозга человека in vitro. Торможение нейродегенеративных изменений при использовании синергической комбинации B1+B6+B12 связано: 1) с торможением апоптоза нейронов, стимулируемого дефицитом витаминов; 2) с нейротрофическими и 3) с ремиелинизирующими эффектами каждого из этих витаминов.

Антагонисты тиамина (ампролиум, окситиамин, пиритиамин), вызывающие активацию транспортера тиамина THTR1, запускают p53-зависимый апоптоз дифференцированных нейронов линии SH-SY5Y [40]. Дефицит тиамина, вызванный антагонистами тиамина в культуре нейронов крыс PC-12, приводил к апоптозу, опосредованному каспазой-3 [41]. Дефицит тиамина вызывает стресс эндоплазматического ретикулума и усиливает окислительный стресс в нейронах, связанный с увеличением уровней апоптотических маркеров GRP78, XBP-1, CHOP, ATF-6, фосфорилированного eIF2а и расщепленной каспазы-12 [42].

Проапоптотические эффекты дефицита витамина В1 связаны: 1) с нарушениями холинергической нейротрансмиссии; 2) с нейровоспалением и повреждениями сосудов; 3) с усилением эксайтотоксичности глутамата; 4) с увеличением активности фактора гипоксии HIF-1а. Рассмотрим эти эффекты более подробно.

Нейрохимические изменения на фоне дефицита тиамина (снижение экспрессии холинацетилтрансферазы, маркера пресинапса холинергических нейронов, в коре, гиппокампе и в других областях мозга) соответствуют потере холинергической активности. Введение агониста мускариновых рецепторов M1 (соединения McN-A-343) устраняло нарушения памяти, наблюдаемые у мышей с дефицитом тиамина [43].

Как было отмечено ранее, дефицит витамина B1 ассоциирован с повреждениями сосудов и с нейровоспалением (гиперактивацией микроглии) [9]. Эксайтотоксичность глутамата приобретает все большее и большее значение на более поздних стадиях гиповитаминоза B1 и вызывает, в частности, массовую гибель клеток обонятельных луковиц у мышей. Гибель клеток в обонятельной луковице частично тормозилась при введении антагонистов NMDA-рецепторов глутамата [44].

Дефицит тиамина активирует индуцируемый гипоксией фактор HIF-1а, что усиливает апоптотоз астроцитов у мышей. Фармакологическое ингибирование HIF-1а на фоне компенсации дефицита тиамина снижало экспрессию проапоптотических генов-мишеней HIF-1а и тормозило апоптоз астроцитов [45].

Адекватная обеспеченность нейронов витаминами B6 и B12 также важна для торможения апоптоза. Витамин B6 защищает нейроны от окислительного стресса [46]. Витамин B12 улучшает восстановление функций головного мозга после травматического повреждения посредством снижения окислительного стресса в эндоплазматическом ретикулуме нейронов [47]. Витамины B1 и B12 ослабляют апоптоз нейронов на модели церебрального паралича за счет увеличения экспрессии BDNF по сигнальному механизму MALAT1/miR-1 [48]. Витамин B12 также ингибирует апоптоз миобластов сосудов через сигнальный путь Erk1/2 [49].

Для каждого из витаминов B1, B6, B12 были продемонстрированы нейротрофические эффекты. У мышей с дефицитом витамина B1 обнаружены нарушения формирования гиппокамп-зависимой памяти, потери нейронов гиппокампа и дендритных шипиков [50]. В экспериментальной модели ишемии диетарный дефицит витамина B6 ассоциирован со снижением концентрации нейротрофического фактора головного мозга BDNF и, соответственно, с более низким количеством делящихся нейронов [24].

Витамин B12 (метилкобаламин) способствует более интенсивному росту нейритов в мозжечке [51]. При дефиците витамина B12 у крыс уровни фактора роста нервов (NGF) в коре головного мозга были ниже и когнитивные функции были нарушены (p<0,01). Комбинированный прием витамина B12 и омега-3 жирных кислот приводил к повышению уровней NGF в гиппокампе и в коре головного мозга, что способствовало улучшению показателей когнитивных тестов [52].

Лечение кроликов с холодовыми поражениями подкожного нерва синергической комбинацией B1, B6, B12 привело к большему количеству регенерирующих аксонов и к меньшему количеству дегенерирующих аксонов по сравнению с контролем [53].

Адекватная обеспеченность витаминами B1, B6, B12 необходима для нормальной миелинизации нейронов. Нарушения нервной проводимости при острой аксональной полинейропатии в рамках синдрома С.С. Корсакова обусловлены, в частности, дефектами миелинизации вследствие низкой обеспеченности витамином B1 [54]. Экспериментальный дефицит витамина B6 у крыс приводил к снижению количества миелинизированных аксонов [23]. Отрицательный эффект истощения запасов витамина B12 (например, при интоксикации цианидом калия) включает увеличение процента немиелинизированных нервных волокон [55]. После воспроизведения модели травматического повреждения у крыс применение витамина B12 усиливало регенерацию аксонов, репарацию миелина, проявляло нейропротекторные эффекты, улучшая восстановление функций головного мозга [47].

Посредством улучшения миелинизации обонятельных сенсорных нейронов витамин B12 способствует преодолению аносмии, которая встречается у 80% пациентов с COVID-19. Короткие курсы (до 2—3 нед) высокодозной парентеральной терапии тиамином, пиридоксином и цианокобаламином могут быть использованы в комплексе терапевтических мероприятий для улучшения клинических исходов у пациентов с COVID-19, особенно у пожилых, у пациентов с полигиповитаминозом, сахарным диабетом 2-го типа, гипергомоцистеинемией, тромбофилией и с высоким риском развития сепсиса [56].

Однократная внутримышечная инъекция 10 мг витамина B12, 100 мг витамина B6 и 100 мг витамина B1 пожилым людям (n=51; средний возраст 73±3 года; 47% женщин) с концентрацией витамина B12 в сыворотке менее 120 пмоль/л приводила к снижению гомоцистеина и метилмалонового диальдегида в плазме крови (p<0,001), что было ассоциировано с устойчивым улучшением миелинизации и проводимости периферических нервов [57].

Синергизм витаминов B1, B6, B12 в терапии боли

Местное введение тиамина облегчает продолжающуюся боль на модели ожога второй степени у крыс [58]. Высокодозная терапия тиамином per os ослабляет симптоматику разновидности хронической головной боли, известной как кластерная головная боль [59]. Напомним, что в патофизиологии кластерной головной боли участвует дисфункция гипоталамуса — одной из областей мозга, наиболее повреждаемой на фоне дефицита тиамина.

Витамин B6 (в виде ПЛФ) подавляет пуринергические рецепторы P2X — катион-проницаемые ионные каналы, открывающиеся в ответ на связывание АТФ. Пуринергические рецепторы присутствуют в нейронах, поперечно-полосатых мышечных клетках, эпителиоцитах и лейкоцитах. Пуринорецепторы опосредуют быструю возбуждающую нейротрансмиссию в центральной и периферической нервной системе, участвуя в формировании нейропатической боли, воспаления и повреждений клеток в условиях ишемии. Рецепторы P2X являются таргетными белками для разработки новых терапевтических средств для лечения хронической боли, воспаления [60], для нейропротекции [61] и для улучшения функционального восстановления после повреждений спинного мозга [62]. ПЛФ ингибировал рецепторы P2X2, P2X2/3 со значениями константы ингибирования IC50, равными 7 мкмоль/л и 13 мкмоль/л соответственно. Такие значения IC50 позволяют утверждать, что ПЛФ — эффективный антагонист ноцицептивных рецепторов P2X [63].

Метилкобаламин облегчает нейропатическую боль, вызванную винкристином у крыс, снижая потерю периферических нервных волокон и устраняя дисбаланс цитокинов в спинном мозге [64]. У пациентов с дефицитом витамина B12 отмечается нейропатия мелких волокон, подтверждаемая гистологически [27]. Витамин B12 широко используется в лечении боли [65, 66]. В частности, в рандомизированном двойном слепом плацебо-контролируемом клиническом исследовании (монотерапия витамином B12 1000 мкг/сут парентерально в течение 15 сут) было показано достоверное уменьшение боли у пациентов с болью в нижней части спины и радикулярным синдромом [67].

Внутрибрюшинное введение B1 (5 мг/кг, 10 мг/кг, 33 мг/кг и 100 мг/кг), B6 (33 мг/кг и 100 мг/кг) и B12 (0,5 мг/кг и 2 мг/кг) значительно уменьшало термическую гипералгезию у крыс. Введение комплекса витаминов B1/B6/B12 в дозе 33/33/0,5 мг/кг в течение 2 нед приводило к долгосрочному подавлению термической гипералгезии [68].

Витамин B6 и комбинации витаминов B1, B6 и B12 влияют на ноцицептивную активность таламуса у крыс. Внутрибрюшинное введение комбинации B1+B6+B12 дозозависимо снижало ноцицепцию. Значение константы активации ED50 комбинации B1+B6+B12 составило 4,6 мл/кг, в то время как значение ED50 только для витамина B6 было гораздо выше — 189 мг/кг. Минимальные эффективные дозы для комбинации B1+B6+B12 и только для витамина B6 составили 0,5 мл/кг и 40 мг/кг соответственно [69].

Для лечения болевых синдромов в острой фазе заболевания возможно применение препарата Комбилипен (раствор для инъекций, который содержит тиамина гидрохлорид 100 мг, пиридоксина гидрохлорид 100 мг, цианокобаламин 1 мг, лидокаина гидрохлорид 20 мг). Комбилипен рекомендован в терапии дорсалгии, люмбоишиалгии, вызванной дегенеративными изменениями позвоночника, а также для терапии мононейропатий и полинейропатий различного генеза и плексопатии.

После завершения инъекционного курса рекомендован переход на пероральную форму Комбилипен табс по 1 таблетке 1—3 раза в сутки. Ступенчатая терапия с применением инъекционной и пероральной форм связана с тем, что терапевтический эффект витаминов группы B нарастает при длительном приеме. В частности, в экспериментальном исследовании на модели артрита было показано влияние длительного применения витамина B1 на выраженность воспаления и боли [70]. На фоне терапии тиамином отмечено отчетливое сокращение отечности ткани, снижение выраженности гипералгезии и уровня провоспалительных цитокинов (TNF-α и IL-1ß). Применение жирорастворимого бенфотиамина в составе препарата Комбилипен табс может существенно повышать биодоступность тиамина [71, 72].

Рекомендованный курс лечения препаратом Комбилипен табс, согласно инструкции по медицинскому применению, составляет 4 недели [73]. Такого курса вполне достаточно для устранения сочетанного гиповитаминоза B1, B6 и B12 и достижения положительного результата лечения [69]. В состав препарата Комбилипен табс входит 100 мг пиридоксина, что при приеме 3 таблеток в сутки составляет 300 мг/сут. Такая доза безопасна даже при длительном приеме.

Заключение

Эффективность применения комбинации B1+B6+B12 в комплексной терапии алкоголизма, нейродегенерации/демиелинизации, полинейропатии и боли связана с длительно существующим и своевременно не диагностированным сочетанным дефицитом этих витаминов. В основе синергизма B1+B6+B12 лежат особые взаимозависимые молекулярные механизмы, связанные с торможением апоптоза нейронов, антиоксидантным и нейротрофическим действием, детоксикацией, снижением нейровоспаления и с широким кругом метаболических эффектов (таких как синтез АТФ, метаболизм аминокислот, жиров, углеводов и др.). Учитывая, что неврологическая патология зачастую коморбидна с нарушениями углеводного, аминокислотного, жирового обмена и детоксикации, включение комбинации B1+B6+B12 в комплексную терапию у таких пациентов может существенно повышать эффективность лечения.

Исследование выполнено при поддержке гранта Российского научного фонда (проект №20-12-00175) ИГХТУ.

The study was supported by a grant from the Russian Science Foundation (project No. 20-12-00175) ISUCT.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Торшин И.Ю., Громова О.А. Экспертный анализ данных в молекулярной фармакологии. 2012;748. 
  2. Громова О.А., Торшин И.Ю., Гусев Е.И. Синергидные нейропротекторные эффекты тиамина, пиридоксина и цианокобаламина в рамках протеома человека. Фармакокинетика и фармакодинамика. 2017;(1):40-51. 
  3. Torshin IYu, Rudakov KV. On the Procedures of Generation of Numerical Features Over Partitions of Sets of Objects in the Problem of Predicting Numerical Target Variables. Pattern Recognition and Image Analysis. 2019;29(4):654-667.  https://doi.org/10.1134/S1054661819040175
  4. Aleshin VA, Mkrtchyan GV, Bunik VI. Mechanisms of Non-coenzyme Action of Thiamine: Protein Targets and Medical Significance. Biochemistry (Mosc). 2019;84(8):829-850. PMID: 31522667. https://doi.org/10.1134/S0006297919080017
  5. Громова О.А., Ребров В.Г. Витамины, макро- и микроэлементы. Обучающие программы РСЦ института микроэлементов ЮНЕСКО. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2008;954. 
  6. Truong T, Hetzel F, Stiff KM, Husnain MG. Case of hypoactive delirium precipitated by thiamine deficiency. BMJ Case Rep. 2021;14(3):e239886. PMID: 33731408. https://doi.org/10.1136/bcr-2020-239886
  7. Liu D, Ke Z, Luo J. Thiamine Deficiency and Neurodegeneration: the Interplay Among Oxidative Stress, Endoplasmic Reticulum Stress, and Autophagy. Mol Neurobiol. 2017;54(7):5440-5448. Epub 2016 Sep 5. PMID: 27596507. https://doi.org/10.1007/s12035-016-0079-9
  8. Kattah JC. The Spectrum of Vestibular and Ocular Motor Abnormalities in Thiamine Deficiency. Curr Neurol Neurosci Rep. 2017;17(5):40. PMID: 28365885. https://doi.org/10.1007/s11910-017-0747-9
  9. Bowyer JF, Tranter KM, Sarkar S, Hanig JP. Microglial activation and vascular responses that are associated with early thalamic neurodegeneration resulting from thiamine deficiency. Neurotoxicology. 2018;65:98-110. PMID: 29427613. https://doi.org/10.1016/j.neuro.2018.02.005
  10. Ji Z, Fan Z, Zhang Y, Yu R, Yang H, Zhou C, Luo J, Ke ZJ. Thiamine deficiency promotes T cell infiltration in experimental autoimmune encephalomyelitis: the involvement of CCL2. J Immunol. 2014;193(5):2157-2167. PMID: 25063874. https://doi.org/10.4049/jimmunol.1302702
  11. Chauhan A, Srivastva N, Bubber P. Thiamine Deficiency Induced Dietary Disparity Promotes Oxidative Stress and Neurodegeneration. Indian J Clin Biochem. 2018;33(4):422-428. Epub 2017 Sept 01. PMID: 30319188. https://doi.org/10.1007/s12291-017-0690-1
  12. Liu H, Sang S, Lu Y, Wang Z, Yu X, Zhong C. Thiamine metabolism is critical for regulating correlated growth of dendrite arbors and neuronal somata. Sci Rep. 2017;7(1):5342. PMID: 28706281. https://doi.org/10.1038/s41598-017-05476-w
  13. Yu Q, Liu H, Sang S, Chen L, Zhao Y, Wang Y, Zhong C. Thiamine deficiency contributes to synapse and neural circuit defects. Biol Res. 2018;51(1):35. PMID: 30231926. https://doi.org/10.1186/s40659-018-0184-5
  14. Moreira-Lobo DC, Cruz JS, Silva FR, Ribeiro FM, Kushmerick C, Oliveira FA. Thiamine Deficiency Increases Ca2+ Current and CaV1.2 L-type Ca2+ Channel Levels in Cerebellum Granular Neurons. Cell Mol Neurobiol. 2017;37(3):453-460. Epub 2016 May 02. PMID: 27140189. https://doi.org/10.1007/s10571-016-0378-8
  15. Cruz JS, Kushmerick C, Moreira-Lobo DC, Oliveira FA. Thiamine deficiency in vitro accelerates A-type potassium current inactivation in cerebellar granule neurons. Neuroscience. 2012;221:108-114. PMID: 22771620. https://doi.org/10.1016/j.neuroscience.2012.06.053
  16. Ke ZJ, DeGiorgio LA, Volpe BT, Gibson GE. Reversal of thiamine deficiency-induced neurodegeneration. J Neuropathol Exp Neurol. 2003;62(2):195-207. PMID: 12578229. https://doi.org/10.1093/jnen/62.2.195
  17. Bolaños-Burgos IC, Bernal-Correa AM, Mahecha GAB, Ribeiro ÂM, Kushmerick C. Thiamine Deficiency Increases Intrinsic Excitability of Mouse Purkinje Cells. Cerebellum. 2021;20(2):186-202. PMID: 33098550. https://doi.org/10.1007/s12311-020-01202-x
  18. Ghatge MS, Al Mughram M, Omar AM, Safo MK. Inborn errors in the vitamin B6 salvage enzymes associated with neonatal epileptic encephalopathy and other pathologies. Biochimie. 2021;183:18-29. PMID: 33421502. https://doi.org/10.1016/j.biochi.2020.12.025
  19. Ramos RJ, Pras-Raves ML, Gerrits J, van der Ham M, Willemsen M, Prinsen H, Burgering B, Jans JJ, Verhoeven-Duif NM. Vitamin B6 is essential for serine de novo biosynthesis. J Inherit Metab Dis. 2017;40(6):883-891. PMID: 28801717. https://doi.org/10.1007/s10545-017-0061-3
  20. Claus D, Neundörfer B, Warecka K. The influence of vitamin B6 deficiency on somatosensory stimulus conduction in the rat. Eur Arch Psychiatry Neurol Sci. 1984;234(2):102-105. PMID: 6094193. https://doi.org/10.1007/BF00381215
  21. Rezazadeh A, Oveisgharan S, Shahidi G, Naghdi R. A Case Report of HomocystinuriaWith Dystonia and Stroke. Child Neurol Open. 2014;1(1):2329048X14545870. PMID: 28503581. https://doi.org/10.1177/2329048X14545870
  22. Nuru M, Muradashvili N, Kalani A, Lominadze D, Tyagi N. High methionine, low folate and low vitamin B6/B12 (HM-LF-LV) diet causes neurodegeneration and subsequent short-term memory loss. Metab Brain Dis. 2018;33(6):1923-1934. PMID: 30094804. https://doi.org/10.1007/s11011-018-0298-z
  23. Kirksey A, Morré DM, Wasynczuk AZ. Neuronal development in vitamin B6 deficiency. Ann N Y Acad Sci. 1990;585:202-218. PMID: 2356985. https://doi.org/10.1111/j.1749-6632.1990.tb28054.x
  24. Jung HY, Kim W, Hahn KR, Kang MS, Kim TH, Kwon HJ, Nam SM, Chung JY, Choi JH, Yoon YS, Kim DW, Yoo DY, Hwang IK. Pyridoxine Deficiency Exacerbates Neuronal Damage after Ischemia by Increasing Oxidative Stress and Reduces Proliferating Cells and Neuroblasts in the Gerbil Hippocampus. Int J Mol Sci. 2020;21(15):5551. PMID: 32759679. https://doi.org/10.3390/ijms21155551
  25. Cohen M, Bendich A. Safety of pyridoxine — A review of human and animal studies. Toxicology Letters. 1986;34:129-139. 
  26. Inada M, Toyoshima M, Kameyama M. Cobalamin contents of the brains in some clinical and pathologic states. Int J Vitam Nutr Res. 1982;52(4):423-429. PMID: 7160970.
  27. Güneş HN, Bekircan-Kurt CE, Tan E, Erdem-Özdamar S. The histopathological evaluation of small fiber neuropathy in patients with vitamin B12 deficiency. Acta Neurol Belg. 2018;118(3):405-410. Epub 2017 Oct 19. PMID: 29052170. https://doi.org/10.1007/s13760-017-0847-y
  28. Zhang A, Ackley BD, Yan D. Vitamin B12 Regulates Glial Migration and Synapse Formation through Isoform-Specific Control of PTP-3/LAR PRTP Expression. Cell Rep. 2020;30(12):3981-3988.e3. PMID: 32209461. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2020.02.113
  29. Ayyildiz T, Dulkadiroglu R, Yilmaz M, Polat OA, Gunes A. Evaluation of macular, retinal nerve fiber layer and choroidal thickness by optical coherence tomography in children and adolescents with vitamin B12 deficiency. Int Ophthalmol. 2021;41(7):2399-2404. Epub 2021 Mar 25. PMID: 33768408. https://doi.org/10.1007/s10792-021-01794-1
  30. Carmel R. Efficacy and safety of fortification and supplementation with vitamin B12: biochemical and physiological effects. Food Nutr Bull. 2008;29(V2):S177-S187.
  31. Midttun O, Hustad S, Schneede J, Vollset SE, Ueland PM. Plasma vitamin B-6 forms and their relation to transsulfuration metabolites in a large, population-based study. Am J Clin Nutr. 2007;86(1):131-138. 
  32. Стаховская Л.В., Громова О.А., Торшин И.Ю., Филимонова М.В. Противоопухолевые эффекты сочетанного применения витаминов В1, В6 и В12. Неврология, нейропсихиатрия, психосоматика. 2017;9(4):101-105.  https://doi.org/10.14412/2074-2711-2017-4-101-105
  33. Subramanya SB, Subramanian VS, Sekar VT, Said HM. Thiamin uptake by pancreatic acinar cells: effect of chronic alcohol feeding/exposure. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2011;301(5):G896-904. Epub 2011 Aug 25. PMID: 21868632. https://doi.org/10.1152/ajpgi.00308.2011
  34. Dilrukshi MDSA, Ratnayake CAP, Gnanathasan CA. Oral pyridoxine can substitute for intravenous pyridoxine in managing patients with severe poisoning with isoniazid and rifampicin fixed dose combination tablets: A case report. BMC Res Notes. 2017;10(1):370. PMID: 28789699. https://doi.org/10.1186/s13104-017-2678-6
  35. Waly MI, Kharbanda KK, Deth RC. Ethanol lowers glutathione in rat liver and brain and inhibits methionine synthase in a cobalamin-dependent manner. Alcohol Clin Exp Res. 2011;35(2):277-283. Epub 2010 Dec 1. PMID: 21121936. https://doi.org/10.1111/j.1530-0277.2010.01343.x
  36. Xu Y, Li L, Zhang Z, Li Y. Effects of folinic acid and Vitamin B12 on ethanol-induced developmental toxicity in mouse. Toxicol Lett. 2006;167(3):167-172. Epub 2006 Sept 17. PMID: 17052868. https://doi.org/10.1016/j.toxlet.2006.07.341
  37. Усов К.И., Юшков Г.Г., Машанов А.В. Острая токсичность противотуберкулезных препаратов, содержащих и не содержащих пиридоксина гидрохлорид (экспериментальное исследование). Туберкулез и болезни легких. 2014;(12):76-82. 
  38. Федеральные клинические рекомендации по диагностике и лечению абстинентного состояния с делирием, вызванного употреблением психоактивных веществ. Российское общество психиатров. Июль 2014. Ссылка активна на 27.07.21.  https://psychiatr.ru/download/1680
  39. Гофман А.Г. Лечение больных алкогольными психозами. Русский медицинский журнал. 2002;12:556-566. 
  40. Chornyy S, Parkhomenko Y, Chorna N. Thiamine antagonists trigger p53-dependent apoptosis in differentiated SH-SY5Y cells. Sci Rep. 2017;7(1):10632. PMID: 28878400. https://doi.org/10.1038/s41598-017-10878-x
  41. Chornyy S, Parkhomenko J, Chorna N. Thiamine deficiency caused by thiamine antagonists triggers upregulation of apoptosis inducing factor gene expression and leads to caspase 3-mediated apoptosis in neuronally differentiated rat PC-12 cells. Acta Biochim Pol. 2007;54(2):315-22. PMID: 17502925 
  42. Wang X, Xu M, Frank JA, Ke ZJ, Luo J. Thiamine deficiency induces endoplasmic reticulum stress and oxidative stress in human neurons derived from induced pluripotent stem cells. Toxicol Appl Pharmacol. 2017;320:26-31. PMID: 28193519. https://doi.org/10.1016/j.taap.2017.02.009
  43. Nakagawasai O. Behavioral and neurochemical alterations following thiamine deficiency in rodents: relationship to functions of cholinergic neurons. Yakugaku Zasshi. 2005;125(7):549-54. PMID: 15997211. https://doi.org/10.1248/yakushi.125.549
  44. Hamada S, Hirashima H, Imaeda M, Okamoto Y, Hamaguchi-Hamada K, Kurumata-Shigeto M. Thiamine deficiency induces massive cell death in the olfactory bulbs of mice. J Neuropathol Exp Neurol. 2013;72(12):1193-1202. PMID: 24226264. https://doi.org/10.1097/NEN.0000000000000017
  45. Zera K, Zastre J. Thiamine deficiency activates hypoxia inducible factor-1α to facilitate pro-apoptotic responses in mouse primary astrocytes. PLoS One. 2017;12(10):e0186707. eCollection 2017. PMID: 29045486. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0186707
  46. Danielyan KE, Simonyan AA. Protective abilities of pyridoxine in experimental oxidative stress settings in vivo and in vitro. Biomed Pharmacother. 2017;86:537-540. Epub 2016 Dec 23. PMID: 28024289. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2016.12.053
  47. Wu F, Xu K, Liu L, Zhang K, Xia L, Zhang M, Teng C, Tong H, He Y, Xue Y, Zhang H, Chen D, Hu A. Vitamin B12 Enhances Nerve Repair and Improves Functional Recovery After Traumatic Brain Injury by Inhibiting ER Stress-Induced Neuron Injury. Front Pharmacol. 2019;10:406. eCollection 2019. PMID: 31105562. https://doi.org/10.3389/fphar.2019.00406
  48. Li EY, Zhao PJ, Jian J, Yin BQ, Sun ZY, Xu CX, Tang YC, Wu H. Vitamin B1 and B12 mitigates neuron apoptosis in cerebral palsy by augmenting BDNF expression through MALAT1/miR-1 axis. Cell Cycle. 2019;18(21):2849-2859. PMID: 31500509. https://doi.org/10.1080/15384101.2019.1638190
  49. Okamoto M, Tanaka H, Okada K, Kuroda Y, Nishimoto S, Murase T, Yoshikawa H. Methylcobalamin promotes proliferation and migration and inhibits apoptosis of C2C12 cells via the Erk1/2 signaling pathway. Biochem Biophys Res Commun. 2014;443(3):871-875. Epub 2013 Dec 14. PMID: 24342621. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2013.12.056
  50. Inaba H, Kishimoto T, Oishi S, Nagata K, Hasegawa S, Watanabe T, Kida S. Vitamin B1-deficient mice show impairment of hippocampus-dependent memory formation and loss of hippocampal neurons and dendritic spines: potential microendophenotypes of Wernicke-Korsakoff syndrome. Biosci Biotechnol Biochem. 2016;80(12):2425-2436. Epub 2016 Aug 31. PMID: 27576603. https://doi.org/10.1080/09168451.2016.1224639
  51. Okada K, Tanaka H, Temporin K, Okamoto M, Kuroda Y, Moritomo H, Murase T, Yoshikawa H. Akt/mammalian target of rapamycin signaling pathway regulates neurite outgrowth in cerebellar granule neurons stimulated by methylcobalamin. Neurosci Lett. 2011;495(3):201-204. Epub 2011 Mar 30. PMID: 21458538. https://doi.org/10.1016/j.neulet.2011.03.065
  52. Rathod RS, Khaire AA, Kale AA, Joshi SR. Effect of vitamin B12 and omega-3 fatty acid supplementation on brain neurotrophins and cognition in rats: A multigeneration study. Biochimie. 2016;128-129:201-208. Epub 2016 Aug 26. PMID: 27569259. https://doi.org/10.1016/j.biochi.2016.08.009
  53. Becker KW, Kienecker EW, Dick P. A contribution to the scientific assessment of degenerative and regenerative processes of peripheral nerve fibers following axonotmesis under the systemic administration of vitamins B1, B6 and B12 — light and electron microscopy findings of the saphenous nerve of the rabbit. Minim Invasive Neurosurg. 1990;33(4):113-121. PMID: 2395502. https://doi.org/10.1055/s-2008-1053569
  54. Ishibashi S, Yokota T, Shiojiri T, Matunaga T, Tanaka H, Nishina K, Hirota H, Inaba A, Yamada M, Kanda T, Mizusawa H. Reversible acute axonal polyneuropathy associated with Wernicke-Korsakoff syndrome: impaired physiological nerve conduction due to thiamine deficiency? J Neurol Neurosurg Psychiatry. 2003;74(5):674-676. PMID: 12700319. https://doi.org/10.1136/jnnp.74.5.674
  55. Knowles JF. An electron microscope study of the unmyelinated nerve fibres in normal baboon median nerves: negative effect of vitamin-B12 depletion. J Anat. 1976;121(Pt 3):461-474. PMID: 828156.
  56. Громова О.А., Торшин И.Ю., Чучалин А.Г. О перспективах применения тиамина, пиридоксина и цианокобаламина в комплексной терапии и реабилитации пациентов с COVID-19. Пульмонология. 2021;31(3):355-363.  https://doi.org/10.18093/0869-0189-2021-31-3-355-363
  57. Brito A, Verdugo R, Hertrampf E, Miller JW, Green R, Fedosov SN, Shahab-Ferdows S, Sanchez H, Albala C, Castillo JL, Matamala JM, Uauy R, Allen LH. Vitamin B-12 treatment of asymptomatic, deficient, elderly Chileans improves conductivity in myelinated peripheral nerves, but high serum folate impairs vitamin B-12 status response assessed by the combined indicator of vitamin B-12 status. Am J Clin Nutr. 2016;103(1):250-257. Epub 2015 Nov 25. PMID: 26607937. https://doi.org/10.3945/ajcn.115.116509
  58. Zhang K, Pei Y, Gan Z, Zhang X, Duan Y, Liu Y, Liu W. Local Administration of Thiamine Ameliorates Ongoing Pain in a Rat Model of Second-Degree Burn. J Burn Care Res. 2017;38(5):842-850. PMID: 28181986. https://doi.org/10.1097/BCR.0000000000000502
  59. Antonio C, Massimo T, Gianpaolo Z, Immacolata PM, Erika T. Oral High-Dose Thiamine Improves the Symptoms of Chronic Cluster Headache. Case Rep Neurol Med. 2018;2018:3901619. eCollection 2018. PMID: 29850313. https://doi.org/10.1155/2018/3901619
  60. North RA, Jarvis MF. P2X receptors as drug targets. Mol Pharmacol. 2013;83(4):759-769. Epub 2012 Dec 19. PMID: 23253448. https://doi.org/10.1124/mol.112.083758
  61. Lämmer AB, Beck A, Grummich B, Förschler A, Krügel T, Kahn T, Schneider D, Illes P, Franke H, Krügel U. The P2 receptor antagonist PPADS supports recovery from experimental stroke in vivo. PLoS One. 2011;6(5):e19983. Epub 2011 May 17. PMID: 21611146. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0019983
  62. Wang X, Arcuino G, Takano T, Lin J, Peng WG, Wan P, Li P, Xu Q, Liu QS, Goldman SA, Nedergaard M. P2X7 receptor inhibition improves recovery after spinal cord injury. Nat Med. 2004;10(8):821-827. Epub 2004 July 18. PMID: 15258577. https://doi.org/10.1038/nm1082
  63. Thériault O, Poulin H, Thomas GR, Friesen AD, Al-Shaqha WA, Chahine M. Pyridoxal-5’-phosphate (MC-1), a vitamin B6 derivative, inhibits expressed P2X receptors. Can J Physiol Pharmacol. 2014;92(3):189-96. PMID: 24593783. https://doi.org/10.1139/cjpp-2013-0404
  64. Xu J, Wang W, Zhong XX, Feng Y, Wei X, Liu XG. EXPRESS: Methylcobalamin ameliorates neuropathic pain induced by vincristine in rats: Effect on loss of peripheral nerve fibers and imbalance of cytokines in the spinal dorsal horn. Mol Pain. 2016;12:1744806916657089. PMID: 27306413. https://doi.org/10.1177/1744806916657089
  65. Громова О.А., Торшин И.Ю., Путилина М.В., Майорова Л.А., Семенов В.А. О механизмах синергидного действия толперизона, мелоксикама и витаминов группы В в терапии периферических болевых синдромов. Медицинский совет. 2020;(8):54-64.  https://doi.org/10.21518/2079-701X-2020-8-54-64
  66. Gromova OA, Torshin IYu, Maiorova LA, Koifman OI, Salnikov DS. Bioinformatic and chemoneurocytological analysis of the pharmacological properties of vitamin B12 and some of its derivatives. Journal of Porphyrins and Phthalocyanines. 2021;25(09):835-842.  https://doi.org/10.1142/S1088424621500644
  67. Mauro GL, Martorana U, Cataldo P, Brancato G, Letizia G. Vitamin B12 in low back pain: A randomised, double-blind, placebo-controlled study. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2000;4(3):53-58. 
  68. Wang ZB, Gan Q, Rupert RL, Zeng YM, Song XJ. Thiamine, pyridoxine, cyanocobalamin and their combination inhibit thermal, but not mechanical hyperalgesia in rats with primary sensory neuron injury. Pain. 2005;114(1-2):266-277. PMID: 15733653. https://doi.org/10.1016/j.pain.2004.12.027
  69. Jurna I, Carlsson KH, Kömen W, Bonke D. Acute effects of vitamin B6 and fixed combinations of vitamin B1, B6 and B12 on nociceptive activity evoked in the rat thalamus: dose-response relationship and combinations with morphine and paracetamol. Klin Wochenschr. 1990;68(2):129-135. PMID: 2157085. https://doi.org/10.1007/BF01646861
  70. Zaringhalam J, Akbari A, Zali A, Manaheji H, Nazemian V, Shadnoush M, Ezzatpanah S. Long-Term Treatment by Vitamin B1 and Reduction of Serum Proinflammatory Cytokines, Hyperalgesia, and Paw Edema in Adjuvant-Induced Arthritis. Basic Clin Neurosci. 2016;7(4):331-340. PMID: 27872694. https://doi.org/10.15412/J.BCN.03070406
  71. Bitsch R, Wolf M, Möller J, Heuzeroth L, Grüneklee D. Bioavailability assessment of the lipophilic benfotiamine as compared to a water-soluble thiamin derivative. Ann Nutr Metab. 1991;35(5):292-296. PMID: 1776825. https://doi.org/10.1159/000177659
  72. Раменская Г.В., Петухова О.А., Смирнов В.В. Клинико-фармакологические аспекты применения препаратов витамина В1 с различной растворимостью в жирах и водных средах. Неврология, нейропсихиатрия, психосоматика. 2012;4(4):67-70. 
  73. Государственный реестр лекарственных средств. Ссылка активна на 05.10.21.  https://grls.rosminzdrav.ru

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.