Галкина О.В.

Научно-исследовательский институт нефрологии Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова

Богданова Е.О.

Научно-исследовательский институт нефрологии Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова

Зубина И.М.

Научно-исследовательский институт нефрологии Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова

Левыкина Е.Н.

Научно-исследовательский институт нефрологии Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова

Анпилова А.О.

Научно-исследовательский институт нефрологии Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова

Сиповский В.Г.

ФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова» Минздрава России

Каронова Т.Л.

Институт эндокринологии ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова» Минздрава России

Панина И.Ю.

Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова

Смирнов А.В.

ФГБУ «Федеральный научно-клинический центр специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий» Федерального медико-биологического агентства России

25-гидроксивитамин D и дистрофические изменения тубулярного эпителия нефрона при хронической болезни почек

Авторы:

Галкина О.В., Богданова Е.О., Зубина И.М., Левыкина Е.Н., Анпилова А.О., Сиповский В.Г., Каронова Т.Л., Панина И.Ю., Смирнов А.В.

Подробнее об авторах

Журнал: Лабораторная служба. 2021;10(2): 8‑17

Прочитано: 1256 раз


Как цитировать:

Галкина О.В., Богданова Е.О., Зубина И.М., и др. 25-гидроксивитамин D и дистрофические изменения тубулярного эпителия нефрона при хронической болезни почек. Лабораторная служба. 2021;10(2):8‑17.
Galkina OV, Bogdanova EO, Zubina IM, et al. 25-hydroxyvitamine D and tubular lesions in chronic kidney disease. Laboratory Service. 2021;10(2):8‑17. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/labs2021100218

Рекомендуем статьи по данной теме:
Хро­ни­чес­кая бо­лезнь по­чек и на­ру­ше­ние мик­ро­цир­ку­ля­ции. Про­фи­лак­ти­чес­кая ме­ди­ци­на. 2025;(8):123-130

Введение

В настоящее время хорошо известно, что действие витамина D не ограничивается регуляцией кальций-фосфатного гомеостаза и также связано с клеточной пролиферацией и дифференцировкой, воспалением и иммунитетом [1, 2]. В кровообращении витамин D и его метаболиты транспортируются белком-переносчиком витамина D (DBP, 58-kD). Мегалин, также известный как Lrp2 (Low-density lipoprotein-related protein 2), или gp330, является трансмембранным рецептором, необходимым для поглощения 25-гидроксивитамин D (25OHD)-DBP [3] и синтеза активной формы в митохондриях извитого фрагмента проксимальных канальцев почек. Результаты экспериментальных исследований подтверждают потенциальные нефропротективные эффекты витамина D и его аналогов [4—13]. Защитное действие витамина D связывают с модуляцией многочисленных сигнальных путей, в том числе ренин-ангиотензин-альдостероновой системы (РААС) [14], ядерного фактора-κB (NF-κB) [15], трансформирующего фактора роста-β (TGF-β)/Smad [16], сигнального пути Wnt/β-катенин [15], обусловливающих негативную регуляцию клеточной гибели и фиброза. Поскольку 25-гидроксивитамин D является субстратом для синтеза активной формы, его дефицит приводит к снижению 1,25-дигидроксивитамина D (1,25(OH)2D) в циркуляции. Согласно экспериментальным и клиническим исследованиям, уровень 25OHD может снижаться под действием катаболического фермента CYP24 канальцев, экспрессия которого существенно возрастает при дисфункции почек [17]. Нарушение мегалин-опосредованного транспорта 25OHD в поврежденных проксимальных канальцах приводит к снижению доступного субстрата для синтеза 1,25(OH)2D [3]. В контексте новых данных исследование ассоциации между уровнем 25OHD и патологическими изменениями в почке представляет существенный интерес, поскольку измерение 25OHD является доступным лабораторным тестом, а восполнение дефицита витамина D — относительно простой клинической задачей. Целью исследования являлся анализ взаимосвязей между уровнем 25OHD и тубулоинтерстициальными изменениями у пациентов с начальными стадиями хронической болезни почек.

Материал и методы

В исследование были включены 100 человек: 44 мужчины и 56 женщин (возраст 39 (30—51) лет). Участники исследования были распределены следующим образом: контрольная группа условно здоровых лиц без нефрологической патологии и с нормальными значениями расчетной скорости клубочковой фильтрации (рСКФ; n=10), и группа пациентов с гломерулопатиями, первично поступивших на нефрологические отделения ПСПбГМУ им. акад. И.П. Павлова (табл. 1). Сбор образцов венозной крови и суточной мочи назначали накануне выполнения биопсии почки. Критериями исключения являлись острое повреждение почек, инфекционные заболевания, сердечная/легочная недостаточность, онкологические заболевания, иммуносупрессивная терапия, терапия препаратами витамина D в дозах, превышающих профилактические. Все пациенты проходили стационарное клиническое, лабораторное и инструментальное обследование согласно внутренним стандартам ПСПбГМУ им. акад. И.П. Павлова для пациентов с заболеваниями почек.

Таблица 1. Основные клинико-демографические показатели исследуемой группы пациентов (n=90)

Пол (мужчины:женщины), n:n

37:53

Возраст, годы

38 (30—50)

рСКФ, мл/мин/1,73 м2

64 (33—90)

ХБП (С1,С2 : С3,С4), n:n

47:43

IgA нефропатия:фокально-сегментарный гломерулосклероз:мембранозная нефропатия: болезнь минимальных изменений:мембрано-пролиферативный гломерулонефрит

50:20:11:10:9

Примечание. Данные представлены как медиана с интерквартильным размахом (Me, Q1—Q3), рСКФ — расчетная скорость клубочковой фильтрации (CKD-EPI).

Биохимические исследования. Кровь и мочу центрифугировали при 1500 g в течение 10 мин, после чего выполняли лабораторные исследования либо хранили аликвоты при температуре –80 °C до момента проведения теста (не более 6 мес). Концентрацию креатинина измеряли модифицированным методом Яффе путем регистрации кинетики реакции (значения калибратора прослеживаются до IDMS через SRM967 (NIST)) («Beckman Coulter», США). рСКФ рассчитывали по формуле CKD EPI [18]. Концентрацию белка в моче определяли методом с пирогаллоловым красным на автоматическом биохимическом анализаторе Synchron CX9 («Beckman Coulter», США). Для стандартизации результатов рассчитывали суточную протеинурию. Измерение концентрации интактного паратиреоидного гормона (ПТГ) в сыворотке крови пациентов проводили при помощи тест-системы Intact PTH на анализаторе Access Immunoassay System («Beckman Coulter», США). Концентрацию 25OHD в сыворотке крови измеряли с использованием тест-системы ARCHITECT 25OH витамин D («Abbott Laboratories», США) для количественного определения 25OHD2 и 25OHD3 [19] на анализаторе ARCHITECT i2000SR («Abbott Laboratories», США). Данная тест-система обладает надежными характеристиками получаемых результатов. Набор не определяет эпимеры (перекрестная реактивность с 3-epi 25-OH витамин D3 составляет 2,7%). Тест-система ARCHITECT 25-OH Vitamin D имеет коэффициент корреляции 0,90 для образцов сыворотки крови при сравнении с референсным методом хроматографии (ЖХ/МС/МС). По данным, приведенным в инструкции к тест-системе внутрилабораторный коэффициент вариации (КВ) составляет 2,6—4,6% (менее допустимых 10%). Согласно собственным исследованиям, внутрисерийный КВ составляет 1,6—5,92% и межсерийный — 2,15—2,63% [20].

Гистологическое исследование. Фрагменты почки фиксировали в 5% нейтральном формалине (pH 7,4) в течение 24 ч при комнатной температуре (22 °C). После стандартной обработки (обезвоживание и пропитка) из парафиновых блоков изготавливали серийные срезы толщиной 2—4 мкм. Морфологическое исследование включало анализ изменений на светооптическом уровне (семь стандартных окрасок). Выраженность распространенности дистрофических изменений тубулоинтерстиция оценивали полуколичественно в баллах (0 — <10%; 1 — 10—25%; 2 — 26—50%; 3 — >50%) по системе, разработанной в НИИ нефрологии ПСПбГМУ им. акад. И.П. Павлова. Суммарные дистрофические изменения тубулярного эпителия (ТИ) рассчитывали по формуле: ТИ (баллы) = (ЗДК+ГДК+ВДК+ППК)/4+АК, где ЗДК — зернистая дистрофия канальцев, ГДК — гиалиновокапельная дистрофия канальцев, ВДК — вакуольная дистрофия, ППК — пенистое перерождение канальцев и АК — атрофия канальцев.

Статистический анализ данных выполняли с помощью пакета программ SAS Enterprise Guide 9.4. Поскольку статистическое распределение большинства изученных параметров не соответствует нормальному, данные представлены как медиана и интерквартильный размах (Me, Q1—Q3). Для сравнения двух выборок использовали критерий Манна—Уитни, при сравнении большего количества выборок — критерий Краскела—Уоллиса. Для оценки связей между переменными применяли непараметрический ранговый коэффициент корреляции Спирмена и множественный линейный регрессионный анализ. Межгрупповые различия и регрессионные коэффициенты считали статистически значимыми при значении p<0,05.

Исследование одобрено локальным этическим комитетом ПСПбГМУ им. И.П. Павлова. Все участники подписывали информированное согласие на участие в исследовании.

Результаты

При анализе результатов пациенты были поделены на две группы по уровню расчетной скорости клубочковой фильтрации: 1-я группа — рСКФ ≥60 мл/мин/1,73м2 (ранние стадии ХБП C1 и C2, n=47) и 2-я группа — рСКФ <60 мл/мин/1,73м2 (более поздние стадии ХБП C3 и C4, n=43). Уровни суточной протеинурии в группах пациентов не различались (p=0,46): в 1-й группе протеинурия составляла 2,80 (0,97—8,26) г, а во 2-й группе — 2,28 (1,18—6,24) г. У пациентов 2-й группы наблюдали более выраженные фибропластические изменения тубулоинтерстиция — очаговый интерстициальный фиброз (рис. 1, а) и периваскулярный склероз (p<0,001). Достоверные различия между зернистой (p=0,096), гиалиновокапельной (p=0,10), вакуольной (p=0,14) дистрофией и пенистым перерождением (p=0,097) канальцев отсутствовали. Суммарные дегенеративные изменения тубулярного эпителия были более выражены при рСКФ <60 мл/мин/1,73м2 (рис. 1, б).

Рис. 1. Полуколичественная морфометрия выраженности очагового интерстициального фиброза (а) и суммарных тубулярных изменений (б) в группах пациентов с рСКФ ≥60 и <60 мл/мин/1,73м2.

У большинства обследованных был выявлен низкий уровень 25-гидроксивитамина D, соответствовавший недостатку или дефициту витамина D (рис. 2). У пациентов наблюдали тенденцию к снижению концентрации 25OHD в сыворотке крови по сравнению с контрольной группой, тем не менее данный тренд не был достоверным (p=0,06), различия между исследуемыми группами пациентов отсутствовали (p=0,14). Уровень ПТГ был выше у пациентов с рСКФ <60 мл/мин/1,73 м2 (59,8 (46,8—111,3)), чем у пациентов с рСКФ ≥60 мл/мин/1,73 м2 (29,6 (23,8—44,0), p=0,028). Корреляция между концентрациями 25OHD и ПТГ в сыворотке крови отсутствовала (r= –0,03, p=0,86).

Рис. 2. Уровень 25-гидроксивитамина D в сыворотке крови в контрольной группе и у пациентов с поражением почек при рСКФ ≥60 и <60 мл/мин/1,73м2.

Была выявлена достоверная взаимосвязь между снижением 25OHD и патологическими изменениями канальцев нефрона, в частности с зернистой и гиалиновокапельной дистрофией канальцев (табл. 2).

Таблица 2. Регрессионный анализ взаимосвязи между концентрацией 25-гидроксивитамина D (25OHD) и морфологией биоптата почки

Группа

n

ЗДК

ГДК

ВДК

ППК

АК

ТИ

ОИФ

ПВС

25OHD

Вся группа

90

–0,39*

–0,39*

–0,16

–0,19

0,16

–0,28*

0,15

0,11

рСКФ≥60

47

–0,42*

–0,34*

–0,23

–0,25

0,26

–0,38*

0,26

0,19

рСКФ<60

43

–0,42*

–0,50*

–0,10

–0,26

0,08

–0,34*

0,03

–0,01

Примечание. рСКФ — расчетная скорость клубочковой фильтрации, ЗДК — зернистая дистрофия канальцев, ГДК — гиалиновокапельная дистрофия канальцев, ВДК — вакуольная дистрофия, ППК — пенистое перерождение канальцев и АК — атрофия канальцев, ТИ — суммарные тубулярные изменения, ОИФ — очаговый интерстициальный фиброз, ПВС — периваскулярный склероз; в таблице указаны значения коэффициента корреляции Спирмена; * — p<0,05.

У пациентов с рСКФ ≥60 мл/мин/1,73 м2 выраженная дистрофия канальцев сочеталась с низкими значениями 25OHD (рис. 3, а, 4, а) и высокой протеинурией (рис. 3, в, 4, в). В группе пациентов с рСКФ <60 мл/мин/1,73 м2 степень выраженности дистрофии канальцев была ассоциирована со снижением концентрации 25OHD (рис. 3, б и 4, б) и не зависела от уровня протеинурии (рис. 3, г, 4, г). При множественном линейном регрессионном анализе было показано, что 25OHD является независимым предиктором ГДК (β= –0,33±0,11, p=0,046), несмотря на включение в модель протеинурии в качестве независимой переменной (β=0,22±0,11, p=0,062). Уровень протеинурии негативно коррелировал с концентрацией 25OHD в сыворотке крови (r= –0,56, p=0,012).

Рис. 3. Выраженность зернистой дистрофии канальцев (0—1 и 2 балла) и уровень 25-гидроксивитамина D (25OHD) в группе пациентов с рСКФ ≥60 (а) и <60 мл/мин/1,73м2 (б), протеинурии при рСКФ ≥60 (в) и <60 мл/мин/1,73м2 (г); рСКФ — расчетная скорость клубочковой фильтрации, ЗДК — зернистая дистрофия канальцев.

Рис. 4. Выраженность гиалиновокапельной дистрофии канальцев (0—1 и 2 балла) и уровень 25-гидроксивитамина D (25OHD) при рСКФ ≥60 (а) и <60 мл/мин/1,73 м2 (б), протеинурии при рСКФ ≥60 (в) и <60 мл/мин/1,73м2 (г); рСКФ — расчетная скорость клубочковой фильтрации, ГДК — гиалиновокапельная дистрофия канальцев.

Обсуждение

Заболевания, связанные с нарушением функции почек или повреждением канальцев, сопровождаются хроническим воспалением, обусловленным окислительным стрессом, ацидозом, снижением клиренса воспалительных цитокинов и стимуляцией воспалительных факторов [6, 21]. Экспериментальные модели in vitro, а также исследования на животных и клинические исследования продемонстрировали нефропротективные свойства витамина D и его аналогов [4—13]. Недостаток или дефицит витамина D традиционно сопутствуют ХБП [21—24]. С другой стороны, установлены иммуномодулирующие свойства витамина D, его способность оказывать реципрокное действие на регуляторные пути цитокинов, а также участие в ремоделировании внеклеточного матрикса [25, 26]. Следовательно, уровень обеспеченности витамином D может быть связан с изменениями как тубулярного (дистрофия и атрофия канальцев), так и интерстициального (интерстициальный фиброз) компонентов почки при иммунных гломерулопатиях. Ренальный фиброз является важнейшим механизмом прогрессирования ХБП, при котором центральную роль играют активация фибробластов и эпителиально-мезенхимальная трансформация (ЭМТ) клеток канальцев [27], запускаемые фиброгенными цитокинами, главным из которых является трансформирующий ростовой фактор β1 (TGF-β1) [28, 29]. Значительное количество данных свидетельствует о взаимосвязи между уровнем обеспеченности витамином D и интерстициальным фиброзом органов [2, 4, 5]. Доказано, что кальцитриол проявляет почечную защитную активность через множественные механизмы, такие как ингибирование воспаления почек, регуляция ренин-ангиотензиновой системы, блокировка активации мезангиальных клеток [14—16]. Исследования in vivo и in vitro показали, что D-гормон эффективно блокирует ЭМТ клеток канальцев — процесс, играющий центральную роль в развитии почечного интерстициального фиброза [28, 29]. В исследовании моделей фиброза почек аналог активной формы витамина D парикальцитол эффективно предотвращал TGF-β1-индуцированную ЭМТ и накопление внеклеточного матрикса [30]. По нашим данным, уровень очагового интерстициального фиброза был значительно выше у пациентов с рСКФ <60 мл/мин/1,73 м2 (ХБП C3—4), чем у пациентов с ХБП C1—2. Несмотря на то, что ранее в моделях экспериментальной ХБП мы подтвердили ассоциацию между сниженной концентрацией 25OHD в сыворотке и фиброзом почки [24] и миокарда [23], в представленном исследовании корреляция между 25OHD и ренальным фиброзом отсутствовала. Это может быть связано с тем, что у пациентов прогрессирование ХБП происходило на фоне предсуществующего недостатка или дефицита витамина D. В экспериментальном исследовании уровень кальцидиола у контрольных крыс был существенно выше, чем у крыс с экспериментальной ХБП (модель нефрэктомии 3/4 объема органа). Авторы применяли разные методики оценки выраженности ренального фиброза.

В представленном исследовании не выявлена связь 25OHD непосредственно с количеством полностью или частично склерозированных клубочков. Подобные результаты были получены в исследовании D. Dabak и соавт. [31], что не согласуется с некоторыми экспериментальными [32—35] и клиническими [36] данными о защитном действии 1,25(OH)2D на клубочки. В этих исследованиях авторы предположили, что снижение протеинурии под действием витамина D может ослаблять ассоциированное с протеинурией повреждение канальцев при нефропатиях [35—37]. Наблюдаемая нами корреляция между 25OHD и протеинурией может свидетельствовать в поддержку гипотезы о защитном действии кальцитриола (кальцитриол не определялся в этом исследовании) на гломерулы. Кроме того, мы продемонстрировали независимую от протеинурии связь 25OHD с гиалиновокапельной дистрофией канальцев. Полученные данные косвенно подтверждают нефропротективное действие витамина D на клубочки, что может быть связано со снижением протеинурии и ассоциированными с ней повреждениями эпителия канальцев.

Принято считать, что при ХБП снижение концентрации 1,25(OH)2D в сыворотке связано с нарушением второго этапа гидроксилирования из-за потери 1a-гидроксилазы почек (CYP27B1) в результате повреждения эпителия проксимальных канальцев [38, 39]. Помимо нарушений синтеза и катаболизма 1,25(OH)2D, ускоренная деградация его предшественника 25OHD также способствует формированию дефицита витамина D при ХБП [40]. Предполагают, что митохондриальный цитохром CYP24 играет существенную роль в катаболизме 25OHD (как и 1,25(OH)2D) при ХБП [41, 42]. Нокаут гена CYP24 значительно увеличивает период стабильности 25OHD, в то время как рост экспрессии мРНК и белка CYP24 сочетается с низким уровнем 25OHD [43, 44]. Следовательно, одним из объяснений обнаруженной нами взаимосвязи между 25OHD и тубулярным повреждением может являться увеличение активности CYP24 и деградации 25OHD при повреждении эпителия канальцев. Факторами, приводящими к снижению уровня витамина D при ХБП, также могут являться увеличение экскреции 25OHD-DBP с мочой, снижение синтеза 1,25(ОН)2D и секреции 25OHD/1,25(ОН)2D из-за нарушения кубилин-мегалинового транспорта в поврежденных почечных канальцах [3, 45]. Мы наблюдали повышение уровня суммарных дегенеративных изменений канальцев у пациентов с более поздними стадиями ХБП. В общей группе пациентов низкие концентрации 25OHD были ассоциированы с дистрофическими изменениями канальцев нефрона.

Следует отметить, что, несмотря на данные литературы о снижении 25OHD при ХБП, нами не было обнаружено значительных различий между концентрациями 25-OHD в сыворотке крови пациентов с ХБП C1—2, ХБП C3—4 и контрольной группы. Отсутствие снижения кальцидиола может быть связано с широкой распространенностью дефицита витамина D в общей популяции Северо-Западного региона России [20, 21], что подтверждалось нашими наблюдениями, где у большинства обследованных уровень 25OHD в сыворотке крови был ниже 30 нг/мл.

Эффекты витамина D разнообразны по своей физиологической направленности и не всегда предсказуемы. Собственные результаты и данные литературы свидетельствуют о том, что недостаток и дефицит кальцитриола и/или его предшественника 25OHD ассоциированы с системными негативными процессами в организме и неблагоприятным прогнозом при ХБП. Молекулярные механизмы защитного воздействия витамина D на почки при ХБП все еще остаются неясными и требуют дальнейших исследований.

Заключение

У пациентов с хронической болезнью почек низкие концентрации 25OHD в сыворотке крови ассоциированы с более выраженными дегенеративными изменениями тубулярного эпителия почки. Обнаруженная взаимосвязь, вероятно, обусловлена недостатком нефропротективного действия витамина D в условиях дефицита D-гормона, что приводит к опосредованному протеинурией повреждению тубулярного эпителия. Механизмы защитного действия витамина D требуют дальнейших исследований.

Авторы подтвердили отсутствие конфликта интересов, о котором необходимо сообщить.

Ограничения исследования: не определяли 1,25-(ОН)2D, мегалин, кубилин, FGF-23.

Литература / References:

  1. Makibayashi K, Tatematsu M, Hirata M, Fukushima N, Kusano K, Ohashi S, Abe H, Kuze K, Fukatsu A, Kita T, Doi T. A vitamin D analog ameliorates glomerular injury on rat glomerulonephritis. American Journal of Pathology. 2001;158(5):1733-1741. https://doi.org/10.1016/S0002-9440(10)64129-6
  2. Kuhlmann A, Haas CS, Gross M-L, Reulbach U, Holzinger M, Schwarz U, Ritz E, Amann K. 1,25-Dihydroxyvitamin D3 decreases podocyte loss and podocyte hypertrophy in the subtotally nephrectomized rat. American Journal of Physiology Renal Physiology. 2004;286:526-533.  https://doi.org/10.1152/ajprenal.00316.2003
  3. Gembillo G, Cernaro V, Siligato R, Curreri F, Catalano A, Santoro D. Protective Role of Vitamin D in Renal Tubulopathies. Metabolites. 2020;10(3):115.  https://doi.org/10.3390/metabo10030115
  4. Tan X, Li Y, Liu Y. Therapeutic role and potential mechanisms of active vitamin D in renal interstitial fibrosis. The Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology. 2007;103(3-5):491-496.  https://doi.org/10.1016/j.jsbmb.2006.11.011
  5. Deb KD, Sun T, Wong KE, Zhang Z, Ning G, Zhang Y, Kong J, Shi H, Chang A, Li Y C. Combined vitamin D analog and AT1 receptor antagonist synergistically block the development of kidney disease in a model of type 2 diabetes. Kidney International. 2010;77:1000-1009. https://doi.org/10.1038/ki.2010.22
  6. Sanchez-Nino M-D, Bozic M, Cordoba-Lanus E, Valcheva P, Gracia O, Ibarz M, Fernandez E, Navarro-Gonzalez JF, Ortiz A, Valdivielso JM. Beyond proteinuria: VDR activation reduces renal inflammation in experimental diabetic nephropathy. American Journal of Physiology Renal Physiology. 2012;302:647-657.  https://doi.org/10.1152/ajprenal.00090.2011
  7. Park JW, Bae EH, Kim IJ, Ma SK, Choi C, Lee J, Kim SW. Paricalcitol attenuates cyclosporine-induced kidney injury in rats. Kidney International. 2010;77(12):1076-1085. https://doi.org/10.1038/ki.2010.69
  8. Schwarz U, Amann K, Orth SR, Viciene AS, Wessels S, Ritz E. Effect of 1,25 (OH)2 vitamin D3 on glomerulosclerosis in subtotally nephrectomized rats. Kidney International. 1998;53:1696-1705. https://doi.org/10.1046/j.1523-1755.1998.00951.x
  9. He W, Kang YS, Dai C, Liu Y. Blockade of Wnt/beta-catenin signaling by paricalcitol ameliorates proteinuria and kidney injury. Journal of the American Society of Nephrology. 2011;22:90-103.  https://doi.org/10.1681/ASN.2009121236
  10. Park JW, Cho JW, Joo SY, Kim CS, Choi JS, Bae EH, Ma SK, Kim SH, JongUn Lee, Kim SW. Paricalcitol prevents cisplatin-induced renal injury by suppressing apoptosis and proliferation. European Journal of Pharmacology. 2012;683:301-309.  https://doi.org/10.1016/j.ejphar.2012.03.019
  11. Suh SH, Lee KE, Park JW, Kim IJ, Kim O, Kim CS, Choi JS, Bae EH, Ma SK, Lee JU, Kim SW. Antiapoptotic effect of paricalcitol in gentamicin-induced kidney injury. The Korean Journal of Physiology and Pharmacology. 2013;17(5):435-440.  https://doi.org/10.4196%2Fkjpp.2013.17.5.435
  12. Kim CS, Joo SY, Lee KE, Choi JS, Bae EH, Ma SK, Kim SH, Lee JU, Kim SW. Paricalcitol attenuates 4-hydroxy-2-hexenal-induced inflammation and epithelial-mesen-chymal transition in human renal proximal tubular epithelial cells. PLoS One. 2013;8(5):e63186. https://doi.org/10.1371%2Fjournal.pone.0063186
  13. Tan X, Li Y, Liu Y. Paricalcitol attenuates renal interstitial fibrosis in obstructive nephropathy. Journal of the American Society of Nephrology. 2007;17(12):3382-3393. https://doi.org/10.1681/ASN.2006050520
  14. Freundlich M, Quiroz Y, Zhang Z, Zhang Y, Btavo Y, Weisinger JR, Li YC, Rodriguez-Iturbe B. Suppression of renin-angiotensin gene expression in the kidney by paricalcitol. Kidney International. 2008;74(11):1394-1402. https://doi.org/10.1038/ki.2008.408
  15. Zhang Y, Deb DK, Kong J, Ning G, Wang Y, Li G, Chen Y, Zhang Z, Strugnell S, Sabbagh Y, Arbeeny C, Li YC. Long-term therapeutic effect of vitamin D analog doxercalciferol on diabetic nephropathy: strong synergism with AT1 receptor antagonist. American Journal of Physiology Renal Physiology. 2009;297(3):791-801.  https://doi.org/10.1152/ajprenal.00247.2009
  16. Li YC, Kong J, Wei M, Chen Z-F, Liu SQ, Cao L-P. 1,25-Dihydroxyvitamin D(3) is a negative endocrine regulator of the renin-angiotensin system. The Journal of Clinical Investigation. 2002;110(2):229-238.  https://doi.org/10.1172%2FJCI15219
  17. Helvig CF, Cuerrier D, Hosfield CM, Ireland B, Kharebov AZ, Kim JW, Ramjit NJ, Ryder K, Tabash SP, Herzenberg AM, Epps TM, Petkovich M. Dysregulation of renal vitamin D metabolism in the uremic rat. Kidney International. 2010;78(5):463-472.  https://doi.org/10.1038/ki.2010.168
  18. Levey AS, Stevens LA, Schmid CH, Yaping (Lucy) Zhang Y(L), Castro AF, Feldman HI, Kusek JW, Eggers P, Van Lente F, Greene T, Coresh J. A new equation to estimate glomerular filtration rate. Annals of Internal Medicine. 2009;150(9):604-612.  https://doi.org/10.7326/0003-4819-150-9-200905050-00006
  19. Hutchinson K, Healy M, Crowley V, Louw M, Rochev Y. Verification of Abbott 25-OH-vitamin D assay on the architect system. Practical Laboratory Medicine. 2017;7:27-35.  https://doi.org/10.1016/j.plabm.2017.01.001
  20. Karonova T, Andreeva A, Nikitina I, Belyaeva O, Mokhova E, Galkina O, Vasilyeva E, Grineva E. Prevalence of Vitamin D deficiency in the North-West region of Russia: A cross-sectional study. The Journal of steroid biochemistry and molecular biology. 2016;164:230-234.  https://doi.org/10.1016/j.jsbmb.2016.03.026
  21. Смирнов А.В., Волков М.М. Роль витамина D в замедлении прогрессирования хронической болезни почек. Нефрология. 2008;12(4):20-27.  https://doi.org/10.24884/1561-6274-2008-12-4-20-27
  22. Tian J, Liu Y, Williams LA, de Zeeuw D. Potential role of active vitamin D in retarding the progression of chronic kidney disease. Nephrology Dialysis Transplantation. 2007;22(2):321-328.  https://doi.org/10.1093/ndt/gfl595
  23. Богданова Е.О., Береснева О.Н., Галкина О.В., Парастаева М.М., Зубина И.М., Иванова Г.Т., Каюков И.Г., Кучер А.Г., Смирнов А.В. Витамин D и фибропластические процессы в миокарде спонтанно гипертензивных крыс с начальными стадиями хронической дисфункции почек. Артериальная гипертензия. 2020;26(1):107-118.  https://doi.org/10.18705/1607-419X-2020-26-1-107-118
  24. Богданова Е.О., Иванова Г.Т., Галкина О.В., Зубина И.М., Береснева О.Н., Парастаева М.М., Каюков И.Г., Добронравов В.А. Уровень 25-гидроксивитамина D в циркуляции ассоциирован с выраженностью фиброза почки (экспериментальное исследование). Нефрология. 2019;23(6):100-107.  https://doi.org/10.36485/1561-6274-2019-236-100-107
  25. Provvedini DM, Tsoukas CD, Deftos LJ, Manolagas SC. 1,25-dihydroxyvitamin D3 receptors in human leukocytes. Science. 1983;221:1181-1183. https://doi.org/10.1126/science.6310748
  26. Veldman CM, Cantorna MT, DeLuca HF. Expression of 1,25-dihydroxyvitamin D(3) receptor in the immune system. Archives of Biochemistry and Biophysics. 2000;374(2):334-338.  https://doi.org/10.1006/abbi.1999.1605
  27. Zeisberg M, Duffield JS. Resolved: EMT produces fibroblasts in the kidney. Journal of the American Society of Nephrology. 2010;21(8):1247-1253. https://doi.org/10.1681/ASN.2010060616
  28. Sato M, Muragaki Y, Saika S, Roberts AB, Ooshima A. Targeted disruption of TGF-beta1/Smad3 signaling protects against renal tubulointerstitial fibrosis induced by unilateral ureteral obstruction. The Journal of Clinical Investigation. 2003;112(10):1486-1494. https://doi.org/10.1172%2FJCI19270
  29. Rampanelli E, Rouschop K, Teske GJ, Claessen N, Leemans JC, Florquin S. CD44v3-v10 reduces the profibrotic effects of TGF-beta1 and attenuates tubular injury in the early stage of chronic obstructive nephropathy. American Journal of Physiology Renal Physiology. 2013;305:1445-1454. https://journals.physiology.org/doi/prev/20130911-aop/abs/10.1152/ajprenal.00340.2013
  30. Yoon HE, Yang CW. Established and newly proposed mechanisms of chronic cyclosporine nephropathy. The Korean Journal of Internal Medicine. 2009;24:81-92.  https://doi.org/10.3904%2Fkjim.2009.24.2.81
  31. Dabak DO, Kuloglu T, Ozercan MR. Effects of Vitamin D3 (Cholecalciferol) on Adriamycin-Induced Nephrotoxicity. Renal Failure. 2009;31:400-405.  https://doi.org/10.1080/08860220902883020
  32. Schwarz U, Amann K, Orth SR, Simonaviciene A, Wessels S, Ritz E. Effect of 1,25(OH)2 vitamin D3 on glomerulosclerosis in subtotally nephrectomized rats. Kidney International. 1998;53:1696-1705. https://doi.org/10.1046/j.1523-1755.1998.00951.x
  33. Panichi V, Migliori M, Taccola D, Filippi C, De Nisco L, Giovannini L, Palla R, Tetta C, Camussi G. Effects of 1,25(OH)2D in experimental mesangial proliferative nephritis in rats. Kidney International. 2001;60:87-95.  https://doi.org/10.1046/j.1523-1755.2001.00775.x
  34. Makibayshi K, Tatematsu M, Hirata M, Fukushima N, Kusano K, Ohashi S, Abe H, Kuze K, Fukatsu A, Kita T, Doi T. A vitamin D analog ameliorates glomerular injury on rat glomerulonephritis. The American Journal of Pathology. 2001;158:1733-1741. https://doi.org/10.1016%2FS0002-9440(10)64129-6
  35. Hirata M, Makibayashi K, Katsumata K, Kusano K, Watanabe T, Fukushima N, Doi T. 22-Oxacalcitriol prevents progressive glomerulosclerosis without adversely affecting calcium and phosphorus metabolism in subtotally nephrectomized rats. Nephrology Dialysis Transplantation. 2002;17:2132-2137. https://doi.org/10.1093/ndt/17.12.2132
  36. Zeisberg M, Duffield JS. Resolved: EMT produces fibroblasts in the kidney. Journal of the American Society of Nephrology. 2010;21:1247-1253. https://doi.org/10.1681/asn.2010060616
  37. Sato M, Muragaki Y, Saika S, Roberts AB, Ooshima A. Targeted disruption of TGF-beta1/Smad3 signaling protects against renal tubulointerstitial fibrosis induced by unilateral ureteral obstruction. The Journal of Clinical Investigation. 2003;112(10):1486-1494. https://doi.org/10.1172%2FJCI19270
  38. Mawer EB, Taylor CM, Backhouse J, Lumb JA, Stanbury SW. Failure of formation of 1,25-dihydroxycholecalciferol in chronic renal insufficiency. The Lancet. 1973;1:626-628.  https://doi.org/10.1016/S0140-6736(73)92197-1
  39. Satomura K, Seino Y, Yamaoka K, Tanaka Y, Ishida M, Yabuuchi H, Tanaka Y, DeLuca HF. Renal 25-hydroxyvitamin D3-1-hydroxylase in patients with renal disease. Kidney International. 1988;34:712-716.  https://doi.org/10.1038/ki.1988.237
  40. Helvig CF, Cuerrier D, Hosfield CM, Ireland B, Kharebov AZ, Kim JW, Ramjit NJ, Ryder K, Tabash SP, Herzenberg AM, Epps TM, Petkovich M. Dysregulation of renal vitamin D metabolism in the uremic rat. Kidney International. 2010;78(5):463-472.  https://doi.org/10.1038/ki.2010.168
  41. Akiyoshi-Shibata M, Sakaki T, Ohyama Y, Noshiro M, Okuda K, Yabusaki Y. Further oxidation ofhydroxycalcidiol by calcidiol 24-hydroxylase. A study with the mature enzyme expressed in Escherichia coli. European Journal of Biochemistry. 1994;224:335-343.  https://doi.org/10.1111/j.1432-1033.1994.00335.x
  42. Beckman MJ, Tadikonda P, Werner E, Prahl J, Yamada S, DeLuka HF. Human 25-hydroxyvitamin D3-24-hydroxylase, a multicatalytic enzyme. Biochemistry. 1996;35:8465-8472. https://doi.org/10.1021/bi960658i
  43. St-Arnaud R, Arabian A, Travers R, Barletta F, Raval-Pandya M, Chapin K, Depovere J, Mathieu C, Christakos S, Demay MB, Glorieux FH. Deficient mineralization of intramembranous bone in vitamin D-24-hydroxylase-ablated miceis due to elevated 1,25-dihydroxyvitamin D and not to the absence of 24,25-dihydroxyvitamin D. Endocrinology. 2000;141:2658-2666. https://doi.org/10.1210/endo.141.7.7579
  44. Masuda S, Byford V, Arabian A, Sakai Y, Demay MB, St-Arnaud R, Jones G. Altered pharmacokinetics of1alpha,25-dihydroxyvitamin D3 and 25-hydroxyvitamin D3 in the blood and tissues of the 25-hydroxyvitamin D-24-hydroxylase (Cyp24a1) null mouse. Endocrinology. 2005;146:825-834.  https://www.researchgate.net/deref/http%3A%2F%2Fdx.doi.org%2F10.1210%2Fen.2004-1116
  45. Christensen EI, Birn H, Storm T, Weyer K, Nielsen R. Endocytic receptors in the renal proximal tubule. Physiology (Bethesda). 2012;27(4):223-236.  https://doi.org/10.1152/physiol.00022.2012

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.