Сайт издательства «Медиа Сфера»
содержит материалы, предназначенные исключительно для работников здравоохранения. Закрывая это сообщение, Вы подтверждаете, что являетесь дипломированным медицинским работником или студентом медицинского образовательного учреждения.

Найдёнова И.Л.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Данилов А.Б.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Симонова А.В.

ГБУЗ МО «Московский областной научно-исследовательский клинический институт им. М.Ф. Владимирского»

Пилипович А.А.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский Университет)

Филатова Е.Г.

ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский университет);
Клиника головной боли и вегетативных расстройств академика Вейна

Сравнительная оценка микробиоценоза слюны и ротоглотки у пациентов с мигренью

Авторы:

Найдёнова И.Л., Данилов А.Б., Симонова А.В., Пилипович А.А., Филатова Е.Г.

Подробнее об авторах

Прочитано: 1916 раз


Как цитировать:

Найдёнова И.Л., Данилов А.Б., Симонова А.В., Пилипович А.А., Филатова Е.Г. Сравнительная оценка микробиоценоза слюны и ротоглотки у пациентов с мигренью. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2024;124(4):55‑62.
Naidenova IL, Danilov AB, Simonova AV, Pilipovich AA, Filatova EG. A comparative assessment of microbiocenosis of saliva and oropharynx in patients with migraine. S.S. Korsakov Journal of Neurology and Psychiatry. 2024;124(4):55‑62. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/jnevro202412404155

Рекомендуем статьи по данной теме:
Окис­ли­тель­ный стресс в па­то­ге­не­зе хро­ни­чес­кой го­лов­ной бо­ли. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(10):35-40
Связь про­дук­тов пи­та­ния и ком­по­нен­тов пи­щи с час­то­той прис­ту­пов миг­ре­ни. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2024;(12):30-35
Эти­оло­ги­чес­кие осо­бен­нос­ти но­зо­ко­ми­аль­но­го си­ну­си­та. Вес­тник ото­ри­но­ла­рин­го­ло­гии. 2024;(5):35-42

Мигренозную головную боль испытывают более 1 млрд человек во всем мире [1]. Это заболевание оказывает крайне негативное влияние на качество жизни, приводит к инвалидизации людей молодого трудоспособного возраста и ведет к большим социально-экономическим и финансовым потерям [2]. Несмотря на большое распространение и социально-экономическое влияние, значение мигрени часто недооценивается, до сих пор имеются диагностические трудности, пациенты получают недостаточное и неадекватное лечение как в России, так и в других странах [3, 4]. Это свидетельствует о нехватке знаний о клинической и патогенетической картине болезни [5]. Поэтому ведутся обширные исследования по выявлению биологических и генетических маркеров, которые помогут в диагностике и лечении мигрени [6].

Одним из перспективных направлений поиска биомаркеров для мигрени на сегодняшний день считается изучение микробиома человека, в частности желудочно-кишечного тракта (ЖКТ). Известно о высокой коморбидности мигрени с инфекционно-воспалительными процессами в ЖКТ [7, 8] и носоглотке [9, 10]. Очевидно, что инфекционные заболевания изменяют микробиом полости рта, это, возможно, имеет значение в патогенезе мигрени [11]. Предполагается, что дисбиоз негативно влияет на взаимодействие по оси «кишечник—мозг» и приводит к хроническому нейровоспалению. В предыдущей работе [12] мы показали практически 100% коморбидность мигрени с хроническими заболеваниями ЖКТ и верхних дыхательных путей (ВДП) и характерные для большинства пациентов изменения микробиоты ротоглотки (снижение содержания нормальной флоры и повышение патогенной и условно-патогенной, свойственной для хронических заболеваний ВДП и ЖКТ). Выявленные изменения позволили выдвинуть гипотезу о сложных многоуровневых взаимоотношениях мигрени с заболеваниями ЖКТ и ВДП путем нарушения микробиотического состава.

Большинство работ посвящено исследованию роли кишечной микробиоты в этиологии и патогенезе мигрени [13—16]. Анализ слюны может стать полезным дополнением к микробиологическому анализу кишечника (двенадцатиперстной кишки и кала). Ежедневно мы проглатываем примерно 1 л слюны, которая содержит большое разнообразие видов микроорганизмов [17], заметно отличающихся от сообществ в кишечнике [18, 19], которые могут вносить свой отдельный вклад в развитие болезни.

Недавно китайские ученые [20] сравнили микробиоты полости рта пациентов с мигренью и здоровых субъектов с помощью секвенирования гена 16S рРНК и обнаружили значительные различия в их составе. Они предположили потенциальную связь между микробиотой полости рта и патогенезом мигрени через влияние на мозг посредством воспалительных и метаболических изменений. Слюна достаточно давно изучается на предмет наличия биомаркеров мигрени, оценивались содержание CGRP (кальцитонин-ген-связанный пептид) [21], уровни С-реактивного белка, интерлейкина-1β и -6 [22] и других нейропептидов и медиаторов воспаления [23], связанных с тригемино-ноцицептивной системой, которые могут быть использованы для изучения нейрональных механизмов мигрени [24], однако состав слюны с точки зрения микробных биомаркеров практически не изучен. В этом плане может быть полезным неинвазивное и простое исследование слюны методом масс-спектрометрии микробных маркеров (МСММ) [25, 26] которое широко применяется в России [27—29] и за рубежом [30]. Для исследования биомаркеров мигрени в слюне МСММ использован нами впервые в этой работе.

Цель исследования — выявление изменений микробиома слюны и сравнительная оценка с микробиомом ротоглотки пациентов с мигренью.

Материал и методы

В исследование включены 60 пациентов с мигренью: 9 мужчин и 51 женщина в возрасте от 21 года до 56 лет (средний — 39,2±8,6 года). Набор пациентов осуществлялся в «Клинико-диагностическом центре МЕДСИ на Красной Пресне», Москва.

Критерии включения: 18—65 лет на момент включения, мигрень с или без ауры (МКГБ-3) [31], наличие информированного согласия, способность и готовность выполнять процедуры исследования на всем его протяжении.

Критерии невключения: любые другие головные боли, органическая патология головного мозга, острые или обострения хронических заболеваний ЖКТ и/или ВДП, заболевания зубов, полости рта, травмы и операции головы и шеи в анамнезе, беременность и лактация, системные заболевания соединительной ткани, онкологические, психические или другие заболевания, которые, по мнению исследователя, могли помешать исследованию.

Длительность мигрени составила 15—25 лет. В анамнезе у всех пациентов использование комбинированной терапии нестероидными противовоспалительными препаратами и триптанами без достаточной эффективности, профилактической терапии не получали. Согласно анамнестическим данным и осмотру специалистов, у всех пациентов имелись коморбидные хронические заболевания ЖКТ и ВДП вне обострения. Все исследования пациентов проводились в межприступный период.

Клинико-неврологическое обследование включало анализ жалоб и анамнестических данных; дневник головной боли [32] с оценкой частоты, интенсивности головной боли по визуальной аналоговой шкале (ВАШ) от 0 до 10 баллов, частоты использования анальгетиков; стандартный неврологический осмотр. Оценка влияния мигрени на повседневную активность и трудоспособность (за последние 3 мес) проводилась с помощью шкалы оценки мигрени (MIDAS-Migraine Disability Assessment) [4]. Все пациенты были консультированы гастроэнтерологом и отоларингологом.

Микробиологическое обследование слюны и мазка с задней стенки ротоглотки с анализом качественного и количественного состава микробиоты (57 микроорганизмов, включая грибы и вирусы) проводилось по методу МСММ, разработанному проф. Г.А. Осиповым и соавт. [33—35]. Метод основан на определении уровней биохимических маркеров (молекул высших жирных кислот, альдегидов, спиртов), обладающих индивидуальной специфичностью для каждого микроорганизма с последующим пересчетом на количество микробных клеток на 1 г биоматериала (105 кл./г образца). Проводилось сравнение показателя пациента с нормативными значениями (повышение значения более чем в 2 раза считается значимым отклонением от нормы). Метод имеет разрешение для диагностического использования с 2010 г. (разрешение на применение новой медицинской технологии ФС №2010/038 от 24 февраля 2010 г. выдано Федеральной службой по надзору в сфере здравоохранения и социального развития).

Исследование было одобрено локальным независимым Этическим комитетом при образовательном частном учреждении дополнительного профессионального образования «Институт междисциплинарной медицины», протокол №68 от 11.01.22.

Статистическая обработка проводилась в программной среде R (2022) [36]. Для анализа корреляции между показателями использовали расчет критерия Спирмена в пакете pspearman [37]. При сравнении микробиоты слюны и ротоглотки использовали парные варианты статистических тестов. Межгрупповые различия оценивались с помощью непараметрических критериев Манна—Уитни и Уилкоксона в связи с тем, что для большинства показателей характер распределения значений в выборках существенно отличался от нормального распределения. При достижении значения показателя p<0,05 результаты тестов считались статистически значимыми, а различия между группами — достоверными. Графический анализ проводили с использованием функций пакета ggplot2 [38].

Результаты

При анализе дневников головной боли пациентов было получено, что в среднем количество дней мигрени составило 9,35±5,9 в месяц, эпизодическая мигрень (<15 дней в месяц) отмечалась у 45 человек, хроническая (≥15 дней в месяц) — у 15. Количество приемов препаратов, купирующих головную боль, было 10,73 в месяц. Средняя интенсивность боли по шкале ВАШ в общей группе пациентов составила 9,22±1,28 балла, при этом у 54 человек наблюдалась сильная боль (от 7 до 10 баллов), у 6 — умеренная (от 4 до 6 баллов). По шкале MIDAS: сильная боль (значительное снижение повседневной активности) — у 47 (78,3%) человек, сильная боль (выраженное ограничение повседневной активности) — у 8 (13,3%), умеренная/выраженная боль (незначительное снижение повседневной активности) — у 3 (5%), слабая боль (отсутствие/минимальное снижение повседневной активности) — у 2 (3,3%).

У всех больных с мигренью в слюне выявлены маркеры транзиторных, в норме отсутствующих микроорганизмов и резидентных условно-патогенных микроорганизмов (приведен процент пациентов с более чем двукратным отклонением содержания микроорганизмов от нормы):

а) повышение содержания маркеров резидентных (условно-патогенных) микроорганизмов — кокков, свойственных для хронических заболеваний носоглотки: Enterococcus spp. — у 85% пациентов, Staphylococcus aureus — у 77% и Staphylococcus epidermidis — у 27%, Streptococcus spp. у 40%;

б) появление маркеров транзиторных микроорганизмов, в норме отсутствующих, характерных для кишечной микрофлоры: анаэробных Blautia coccoides — у 85% пациентов, Fusobacterium spp./Haemophilus spp. у 62%, Peptostreptococcus anaerobius 18623 — у 55%, Bacteroides fragilis — у 48%; анаэробных пропионобактерий Propionibacterium acnes — у 40%, Propionibacterium freudenreichii — у 38%, Propionibacterium jensenii — у 30%; анаэробных клостридий — Cl. difficile — у 35%, Cl. hystolyticum/Str. Pneumonia — у 32%, Cl. perfringens — у 15%, Cl. propionicum — у 38%, Cl. ramosum — у 45%; грамотрицательных палочек — Kingella spp. у 37% и Porphyromonas spp. у 47%;

в) появление вирусных маркеров: группы герпеса — у 30% пациентов, цитомегаловируса — у 27%, вируса Эпштейна—Барр — у 8%;

д) понижение содержания грибов Aspergillus spp.

Снижения содержания нормальной флоры у большинства пациентов не отмечалось: Bifidobacterium spp. — Me=277,5 [4; 920] (среднее по группе — 328,5±258,8) при норме 225 кл.×105 и Lactobacillus spp. — Me=1040 [13; 2901] (среднее по группе 1188,92±859,16) при норме 659 кл.×105.

Проведенный нами корреляционный анализ зависмости тяжести и частоты головных болей по шкалам MIDAS, ВАШ и дневнику головной боли от состава микробиоты слюны лиц с мигренью не выявил достоверных взаимосвязей.

Сравнительный анализ микробиома (табл. 1, 2) показал значимое снижение в слюне по сравнению с ротоглоткой концентрации: кокковой флоры Enterococcus spp., Streptococcus mutans, Staphylococcus aureus, анаэробных бактерий Clostridium difficile и Clostridium perfringens; энтеробактерии Helicobacter pylori; грамотрицательных палочек Kingella spp., грибов и вируса Эпштейна—Барр. В слюне была значительно повышена в сравнении с ротоглоткой концентрация: Staphylococcus epidermidis, анаэробных Clostridium ramosum и Fusobacterium spp./Haemophilus spp. и грамотрицательных палочек Porphyromonas spp. Не обнаружено значимых различий в концентрации нормальной флоры, вирусов группы герпеса и цитомегаловирусов. Таким образом, в целом значимых изменений микробиома в слюне оказалось меньше, чем в ротоглотке.

Таблица 1. Сравнение концентраций патогенов в слюне и зеве пациентов с мигренью (n=60)

Группа

Патоген

Норма, клеток ×105

Среднее количество патогена, M±σ

Сравнение по тесту Уилкоксона—Манна—Уитни, Z (p)

слюна

мазок с задней стенки ротоглотки

Кокки, бациллы

Enterococcus spp.

0

24,38±41,24

38,32±52,15

–2,81 (0,005)

Streptococcus spp.

45

293,42±598,45

237,85±415,84

–1,31 (0,191)

Streptococcus mutans

114

182,28±193,1

337,28±320,88

–3,01 (0,003)

Staphylococcus aureus

30

179,33±195,54

288,37±241,33

–3,21 (0,001)

Staphylococcus epidermidis

0

62,8±286,09

38,22±90,04

–2,7 (0,007)

Анаэробы: нормальная флора

Bifidobacterium spp.

225

328,52±258,81

331,73±383,07

1,59 (0,113)

Lactobacillus spp.

659

1188,92±859,16

1496,28±1004,43

–1,64 (0,1)

Анаэробы

Bacteroides fragilis

10

53,37±77,43

47,97±88,54

1,27 (0,203)

Blautia coccoides

0

53,87±54,08

64,88±83,59

0,21 (0,832)

Clostridium difficile

0

19,08±59,89

22,97±30,19

–2,72 (0,007)

Cl. Hystolyticum/Str. pneumonia

50

96±162,7

94,48±215,81

–0,44 (0,658)

Clostridium perfringens

84

180,67±659,01

509,25±841,99

–3,34 (0,001)

Clostridium propionicum

94

211,83±310,04

167,7±312,72

0,1 (0,916)

Clostridium ramosum

992

2293,33±2025,15

1201,17±1179,1

4,22 (0)

Fusobacterium spp./Haemophilus spp.

18

68,17±69,52

32,88±44,96

3,64 (0)

Peptostreptococcus anaerobius 18623

378

1051,2±893,55

810,17±787,74

1,89 (0,059)

Propionibacterium acnes

44

141,42±247,8

152,67±292,33

1,28 (0,201)

Propionibacterium freudenreichii

243

548,38±473,13

441,93±300,86

0,94 (0,345)

Propionibacterium jensenii

17

40,67±65,57

68,75±173,72

1,05 (0,295)

Энтеробактерии

Helicobacter pylori

15

8,2±29,29

28,65±71,25

–3,65 (0)

Грамотрицательные палочки

Kingella spp.

0

28,22±59,04

42,73±112,14

–2,6 (0,009)

Porphyromonas spp.

0

9,8±17

2,92±6,16

3,07 (0,002)

Грибы, дрожжи

Aspergillus spp.

Слюна: 980

Ротоглотка: 110

102,85±245,72

152,47±431,64

–2,17 (0,03)

Candida spp.

520

465,52±397,4

425,27±337,26

0,52 (0,602)

Микр. грибы, кампестерол

115

2,98±12,59

92,15±206,54

–4,04 (0)

Микр. грибы, ситостерол

384

19,27±55,1

250,62±431,95

–5,07 (0)

Вирусы

Herpes spp.

0

5,53±10,27

5,12±11,66

0,43 (0,67)

Цитомегаловирус

0

5,68±11,04

6,67±17,56

–0,67 (0,502)

Эпштейна—Барр вирус

7

3,7±10,36

7,3±14,12

–2,25 (0,024)

Таблица 2. Сравнение концентраций патогенов в слюне и зеве пациентов с мигренью (пациенты с двукратным отклонением от нормы, %)

Группа

Патоген

Пациенты с двукратным отклонением от нормы (%)

Статистическая значимость, тест Фишера, p

слюна

мазок с задней стенки ротоглотки

Кокки, бациллы

Enterococcus spp.

85

87

1

Streptococcus spp.

40

53

0,2

Streptococcus mutans

25

55

0,0014

Staphylococcus aureus

77

92

0,043

Staphylococcus epidermidis

27

52

0,009

Анаэробы: нормальная флора

Bifidobacterium spp.

22

30

0,40

Lactobacillus spp.

15

5

0,125

Анаэробы

Bacteroides fragilis

48

45

0,85

Blautia coccoides

85

75

0,254

Clostridium spp. (группа C. tetani)

12

38

0,0013

Clostridium difficile

35

58

0,017

Cl. Hystolyticum/Str. Pneumonia

32

18

0,14

Clostridium perfringens

15

42

0,002

Clostridium propionicum

38

23

0,113

Clostridium ramosum

45

17

0,0014

Fusobacterium spp./Haemophilus spp.

62

35

0,006

Peptostreptococcus anaerobius 18623

55

42

0,201

Propionibacterium acnes

40

35

0,706

Propionibacterium freudenreichii

38

38

1

Propionibacterium jensenii

30

25

0,683

Actinomyces viscosus

25

32

0,544

Nocardia asteroides

23

33

0,311

Энтеробактерии

Helicobacter pylori

8

32

0,0025

Грамотрицательные палочки

Kingella spp.

37

60

0,017

Porphyromonas spp.

47

23

0,012

Грибы, дрожжи

Aspergillus spp.

0

20

0,0003

Candida spp.

7

7

1

Микр. грибы, кампестерол

0

13

0,006

Микр. грибы, ситостерол

0

13

0,006

Вирусы

Herpes spp.

30

32

1

Цитомегаловирус

27

35

0,43

Эпштейна—Барр вирус

8

13

0,56

Обсуждение

В данной работе у пациентов с мигренью проведена сравнительная оценка микробиоты слюны и мазка из ротоглотки с целью определения более информативного биотопа. Каждый из этих анализов полезен по-своему. Мазок из ротоглотки характеризует «входные ворота инфекции» и показывает наличие у пациентов с мигренью хронического очага воспаления в ВДП — фарингита и/или тонзиллита. В предыдущей работе [12] мы продемонстрировали характерные для пациентов с мигренью нарушения микробиоты ротоглотки (снижение содержания нормальной флоры, повышение уровня ряда условно-патогенной микрофлоры и появление патогенных микроорганизмов), что клинически сочеталось с наличием у всех пациентов хронических заболеваний ВДП. Слюна отражает состояние не только микробиоценоза ротоглотки и полости рта, но и внутренней среды организмы (поскольку на 50% состоит из сыворотки крови), и увеличение в ней других микробных маркеров (по сравнению с ротоглоткой) может быть связано с повышенной проницаемостью кишечника и более тяжелым течением мигрени (наличием заболеваний ЖКТ, системного воспалительного процесса).

Нарушения микробиоценоза слюны и ротоглотки при мигрени приводят в повышению уровня микробных эндотоксинов, увеличению содержания провоспалительных цитокинов, эти факторы негативно влияют на ЦНС, эндотелий сосудов и являются значимыми звеньями патогенеза при мигрени. Связь между нарушением микробиоценоза слюны и ротоглотки при мигрени показана в работе китайских ученых [19] и в нашем предыдущем исследовании микробиоты ротоглотки [12].

Для изучения слюны пациентов с мигренью мы впервые применили метод МСММ. МСММ позволяет легко проводить повторные заборы слюны, что привлекает как альтернатива более сложных диагностических процедур [39, 40], например забора анализа крови, в ряде случаев не только дополняя, но даже заменяя его [41]. Достижения в области масс-спектрометрической протеомики показывают многообещающие результаты использования слюны для изучения биомаркеров в диагностических целях [42—45]. В патофизиологии мигрени все большая роль отводится нейровоспалению и нарушению иммунной системы, в которых микробиологический состав сред организма принимает непосредственное участие [46].

У всех наших пациентов с мигренью анализ микробиома слюны показал наличие нарушений. Характерные изменения микробиоты включали повышение содержания ряда патогенных и условно-патогенных микроорганизмов, свойственных для хронических заболеваний ВДП и ЖКТ, что соответствовало информации о коморбидных заболеваниях, полученной из анамнеза и при осмотре пациентов отоларингологом и гастроэнтерологом. У большинства пациентов в слюне выявлено повышенное содержание стафилококков и стрептококков, характерных для заболеваний верхних и нижних дыхательных путей и анаэробных микроорганизмов, характерных только для кишечной микрофлоры (большинство лиц с мигренью имели высокие уровни клостридий, блаудиа и фузобактерий, пептострептококков и бактероидов). Достаточно часто встречался высокий уровень вирусных маркеров (вирусы герпеса 1-го и 2-го типов обнаружены у 30% пациентов, цитомегаловирус — у 27%). Уровень бифидо- и лактобактерий был в пределах нормы, что может свидетельствовать о сохранении резервных способностей микрофлоры, иммунитета (бифидо- и лактобактерии — антагонисты патогенной микрофлоры) у обследованных нами пациентов с мигренью.

По сравнению с микробиотой ротоглотки, в слюне отклонений от нормы было меньше, поскольку она в большой степени отражает состояние внутренней среды организма, которую организм эффективно поддерживает в нормальном состоянии. Поэтому в диагностических целях при мигрени мазок с задней стенки ротоглотки более информативен. При наличии у пациентов с мигренью клинических признаков интоксикации, системного воспалительного процесса, более тяжелого течения мигрени мы рекомендуем проводить оценку микробиоценоза методом МСММ как в слюне, так и в мазке из ротоглотки. Таким пациентам также рекомендуется консультация врача — отоларинголога и гастроэнтеролога и лечение сопутствующих заболеваний ЖКТ и ВДП.

Патогенетические механизмы, связывающие мигрень и изменения микробиома, сегодня активно изучаются, предполагается влияние индуцированных иммунных, воспалительных и сосудистых реакций с высвобождением иммунных клеток, воспалительных и вазоактивных агентов в слизистую оболочку, ведущее к гиперчувствительности церебральных структур, связанных с болевым восприятием [15]. Высокое распространение дисбиоза в ротоглотке и слюне при мигрени, а также наличие у 100% таких пациентов хронических заболеваний ЖКТ и ВДП диктует необходимость дальнейших исследований в этом направлении.

Заключение

1. С помощью метода МСММ в слюне пациентов с мигренью обнаружено нарушение микробиоценоза, характерными особенностями которого являются повышение содержания микробных маркеров:

— резидентных (условно-патогенных) микроорганизмов — кокков, свойственных для хронических заболеваний носоглотки;

— транзиторных микроорганизмов, в норме отсутствующих, характерных для кишечной микрофлоры;

— вирусов группы герпеса (1-го и 2-го типов, цитомегаловируса).

2. Сравнительная оценка микробиоты слюны и мазка с задней стенки ротоглотки показала наличие дисбиоза как в слюне, так и в ротоглотке пациентов с мигренью, однако в слюне отклонений от нормы было меньше, поэтому в диагностических целях мазок с задней стенки ротоглотки клинически более значим.

3. Применение метода МСММ расширяет лабораторно-клинические возможности при мигрени и позволяет разработать более эффективные комплексные схемы терапии и междисциплинарный подход к ведению больных с мигренью.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Ashina M. Migraine. N Engl J Med. 2020;383(19):1866-1876. https://doi.org/10.1056/NEJMra1915327
  2. Steiner TJ, Jensen R, Katsarava Z, et al. Aids to management of headache disorders in primary care (2nd edition). J Headache Pain. 2019;20(1):57.  https://doi.org/10.1186/s10194-018-0899-2
  3. Katsarava Z, Mania M, Lampl C, et al. Poor medical care for people with migraine in Europe — evidence from the Eurolight study. J Headache Pain. 2018;19(1):10.  https://doi.org/10.1186/s10194-018-0839-1
  4. Eigenbrodt AK, Ashina H, Khan S, et al. Diagnosis and management of migraine in ten steps. Nat Rev Neurol. 2021;17(8):501-514.  https://doi.org/10.1038/s41582-021-00509-5
  5. Shibata Y. Migraine Pathophysiology Revisited: Proposal of a New Molecular Theory of Migraine Pathophysiology and Headache Diagnostic Criteria. Int J Mol Sci. 2022;23(21):13002. https://doi.org/10.3390/ijms232113002
  6. Yan BM, Gibson Depoy EM, Ahmad A, et al. Biomarkers in Migraine. Neurol India [serial online]. 2021;69(suppl S1):17-24.  https://www.neurologyindia.com/text.asp?2021/69/7/17/315988
  7. van Hemert S, Breedveld AC, Rovers JMP, et al. Migraine Associated with Gastrointestinal Disorders: Review of the Literature and Clinical Implications. Front Neurol. 2014;5:241.  https://doi.org/10.3389/fneur.2014.00241
  8. Martami F, Ghorbani Z, Abolhasani M, et al. Comorbidity of gastrointestinal disorders, migraine, and tension-type headache: a cross-sectional study in Iran. Neurol Sci. 2018;39(1):63-70.  https://doi.org/10.1007/s10072-017-3141-0
  9. Mehle ME. Sinus Headache, Migraine, and the Otolaryngologist, COX1/COX2 inhibitors. Headache. 2005;133(4):489-496. Springer International Publishing AG 2017. https://doi.org/10.1007/978-3-319-50376-9_1
  10. Patel ZM, Kennedy DW, Setzen M, et al. «Sinus headache»: rhinogenic headache or migraine? An evidence-based guide to diagnosis and treatment. Int Forum Allergy Rhinol. 2013;3(3):221-230.  https://doi.org/10.1002/alr.21095
  11. Proctor DM, Relman DA. The Landscape Ecology and Microbiota of the Human Nose, Mouth, and Throat. Cell Host Microbe. 2017;21(4):421-432.  https://doi.org/10.1016/j.chom.2017.03.011
  12. Найденова И.Л., Данилов А.Б., Симонова А.В. и др. Состояние микробиома ротоглотки у пациентов с мигренью. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2023;123(2):112-119.  https://doi.org/10.17116/jnevro2023123021112
  13. Crawford J, Liu S, Tao F. Gut microbiota and migraine. Neurobiology of Pain. 2022;11:100090. https://doi.org/10.1016/j.ynpai.2022.100090
  14. Risbud A, Abouzari M, Djalilian HR. «Migraine and the Gut Microbiome,» in Gut—Brain Connection, Myth or Reality? Role of The Microbiome in Health and Disease: World Scientific. 2022;325-337. 
  15. Hindiyeh N, Aurora SK. What the Gut Can Teach Us About Migraine. Curr Pain Headache Rep. 2015;19(7):33.  https://doi.org/10.1007/s11916-015-0501-4
  16. Cámara-Lemarroy CR, Rodriguez-Gutierrez R, Monreal-Robles R, Marfil-Rivera A. Gastrointestinal disorders associated with migraine: A comprehensive review. World J Gastroenterol. 2016;22(36):8149-8160. https://doi.org/10.3748/wjg.v22.i36.8149
  17. Ritari J, Salojärvi J, Lahti L, de Vos WM. Improved taxonomic assignment of human intestinal 16S rRNA sequences by a dedicated reference database. BMC Genomics. 2015;16:1056. https://doi.org/10.1186/s12864-015-2265-y
  18. Costello EK, Lauber CL, Hamady M, et al. Bacterial community variation in human body habitats across space and time. Science. 2009;326(5960):1694-1697. ttps://doi.org/10.1126/science.1177486
  19. Tan S, Liang CR, Yeoh KG, et al. Gastrointestinal fluids proteomics. Proteomics Clin Appl. 2007;1(8):820-833.  https://doi.org/10.1002/prca.200700169
  20. Jiang W, Wang T, Liu C, et al. A 16S rRNA gene sequencing based study of oral microbiota in migraine patients in China. Bioengineered. 2021;12(1):2523-2533. https://doi.org/10.1080/21655979.2021.1933840
  21. Alpuente A, Gallardo VJ, Asskour L, et al. Salivary CGRP can monitor the different migraine phases: CGRP (in) dependent attacks. Cephalalgia. 2022;42(3):186-196.  https://doi.org/10.1177/03331024211040467
  22. Bougea A, Spantideas N, Galanis P, et al. Salivary inflammatory markers in tension type headache and migraine: the SalHead cohort study. Neurol Sci. 2020;41(4):877-884.  https://doi.org/10.1007/s10072-019-04151-4
  23. Fischer HP, Eich W, Russell IJ. A possible role for saliva as a diagnostic fluid in patients with chronic pain. Semin Arthritis Rheum. 1998;27(6):348-359.  https://doi.org/10.1016/S0049-0172(98)80014-0
  24. Bellamy JL, Cady RK, Durham PL. Salivary levels of CGRP and VIP in rhinosinusitis and migraine patients. Headache. 2006;46(1):24-33.  https://doi.org/10.1111/j.1526-4610.2006.00294.x
  25. Осипов ГА. Определение состава и численности микроорганизмов кишечной стенки методом хроматографии-масс-спектрометрии клеточных жирных кислот. Вестник РАМН. 1999;16(7):25-31. 
  26. Осипов Г.А., Парфенов А.И., Верховцева Н.В. и др. Клиническое значение исследования микроорганизмов слизистой оболочки кишечника культурально-биохимическим и хромато-масс-спектрометрическим методами. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2003;4:59-67. 
  27. Осипов Г.А. Способ определения родового (видового) состава ассоциации микроорганизмов. Патент России №2086642. C12N 1/00, 1/20, C12Q 1/4. Приоритет от 24 декабря 1993 года. https://patents.google.com/patent/RU2086642C1/ru?oq=2086642
  28. Осипов Г.А., Шабанова Е.А., Недорезова Т.П. и др. Способ диагностики клостридиальной анаэробной газовой инфекции. Патент Российской Федерации №2021608, кл. G01N 33/50. Внесен в государственный реестр 15.10.94. Бюл. №19.  https://patents.google.com/patent/RU2021608C1/ru?oq=2021608
  29. Осипов Г.А., Белобородова Н.В. Патент на изобретение №2146368. Способ выявления возбудителя инфекционного процесса в стерильных биологических средах макроорганизма. Патент зарегистрирован в Государственном реестре изобретений Российской Федерации 10.03.2000. https://patents.google.com/patent/RU2146368C1/ru?oq=2146368
  30. Ribeiro A, Prata M, Vaz C, et al. Determination of methadone and EDDP in oral fluid using the dried saliva spots sampling approach and gas chromatography-tandem mass spectrometry. Anal Bioanal Chem. 2019;411(10):2177-2187. https://doi.org/10.1007/s00216-019-01654-z
  31. Headache Classification Committee of the International Headache Society (IHS) The International Classification of Headache Disorders, 3rd edition. Cephalalgia. Sage Publications. 2018;38(1):1-211.  https://doi.org/10.1177/0333102417738202
  32. Oikonomidi T, Vikelis M, Artemiadis A, et al. Reliability and Validity of the Greek Migraine Disability Assessment (MIDAS) Questionnaire. Pharmacoecon Open. 2018;2(1):77-85.  https://doi.org/10.1007/s41669-017-0034-3
  33. Осипов Г.А., Новикова В.П., Бойко Н.Б. и др. Методика масс-спектрометрии микробных маркеров как способ оценки пристеночной кишечной микробиоты при заболеваниях органов пищеварения. Учебно-методическое пособие. СПб. 2013;12-22. 
  34. Осипов Г.А., Родионов Г.Г. Применение метода масс-спектрометрии микробных маркеров в клинической практике. Поликлиника. Спецвыпуск: Лаборатория ЛПУ. 2013;2:68-73. 
  35. Осипов Г.А., Зыбина Н.Н., Родионов Г.Г. Опыт применения масс-спектрометрии микробных маркеров в лабораторной диагностике. Медицинский алфавит. 2013;1(3):64-67. 
  36. R Core Team. R: A language and environment for statistical computing. R Foundation for Statistical Computing, Vienna, Austria. 2022. https://www.R-project.org/
  37. Wiel van de MA, Di Bucchianico A. Fast computation of the exact null distribution of Spearman’s rho and Page’s L statistic for samples with and without ties. Eindhoven: Technische Universiteit Eindhoven. 1998;13. (Memorandum COSOR).
  38. Wickham H. ggplot2: Elegant Graphics for Data Analysis. Springer-Verlag New York. 2016.
  39. Giusti L, Baldini C, Bazzichi L, et al. Proteome analysis of whole saliva: a new tool for rheumatic diseases — the example of Sjögren’s syndrome. Proteomics. 2007;7(10):1634-1643. https://doi.org/10.1002/pmic.200600783
  40. Peluso G, De Santis M, Inzitari R, et al. Proteomic study of salivary peptides and proteins in patients with Sjögren’s syndrome before and after pilocarpine treatment. Arthritis Rheum. 2007;56(7):2216-2222. https://doi.org/10.1002/art.22738
  41. Брещенко Е.Е., Быков И.М. Биохимия полости рта, ротовой и десневой жидкостей: учебно-методическое пособие. Краснодар. 2018;63. 
  42. Al-Tarawneh SK, Border MB, Dibble CF, Bencharit S. Defining salivary biomarkers using mass spectrometry-based proteomics: a systematic review. OMICS. 2011;15(6):353-361.  https://doi.org/10.1089/omi.2010.0134
  43. Caporossi L, Santoro A, Papaleo B. Saliva as an analytical matrix: state of the art and application for biomonitoring. Biomarkers. 2010;15(6):475-487.  https://doi.org/10.3109/1354750X.2010.481364
  44. Hu S, Loo JA, Wong DT. Human saliva proteome analysis and disease biomarker discovery. Expert Rev Proteomics. 2007;4(4):531-538.  https://doi.org/10.1586/14789450.4.4.531
  45. Lee JM, Garon E, Wong DT. Salivary diagnostics. Orthod Craniofac Res. 2009;12(3):206-211.  https://doi.org/10.1111/j.1601-6343.2009.01454.x
  46. Biscetti L, De Vanna G, Cresta E, et al. Headache and immunological/autoimmune disorders: a comprehensive review of available epidemiological evidence with insights on potential underlying mechanisms. J Neuroinflammation. 2021;18(1):259.  https://doi.org/10.1186/s12974-021-02229-5

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.