Введение
Согласно статистическим данным Роспотребнадзора [1] заболеваемость сифилисом в Российской Федерации имеет тенденцию к снижению. Несмотря на это, сифилис остается социально значимым заболеванием, требующим пристального внимания со стороны как лечащих врачей, так и специалистов лабораторной службы.
Спектр методов, применяемых в лабораторной диагностике сифилиса, довольно широк [2—4]. При обследовании разных групп пациентов применяются разные комбинации этих методов и различные алгоритмы лабораторной диагностики сифилиса, которые, помимо скрининговых, обязательно включают различные подтверждающие методы исследования [5— 7]. Наиболее эффективным подтверждающим методом в настоящее время считается иммунный блоттинг (ИБ) — выявление специфических антител к отдельным антигенам возбудителя. Из основных антигенов T. pallidum диагностически значимыми считаются TpN15, TpN17, TmpA и TpN47 с молекулярной массой 15, 17, 45 и 47 кДа соответственно [5, 8—12].
В практике отечественного здравоохранения широко применяются наборы реагентов для ИБ формата Line blot (лайн-блот, линейный иммуноблот), в которых используются рекомбинантные аналоги антигенов TpN15, TpN17, TmpA и TpN47 [13, 14]. В то же время опыт серологической диагностики инфекционной патологии показывает, что наиболее эффективными являются подтверждающие исследования с использованием как рекомбинантных аналогов, так и нативных антигенов возбудителей, т.е. применительно к ИБ его обоих форматов — Line blot и Western blot.
Поскольку в настоящее время в нашей стране отсутствуют зарегистрированные тест-системы для диагностики сифилиса в формате Western blot, их разработка и внедрение в практику российского здравоохранения представляется актуальной задачей.
Цель исследования — разработка иммуноферментной тест-системы для подтверждения наличия в сыворотке, плазме крови и спинномозговой жидкости IgG к T. pallidum методом ИБ (формат Western blot).
Материал и методы
В процессе разработки использованы следующие основные материалы:
— нативный лизат T. pallidum (штамм Nichols) фирмы ЗАО «ЭКОлаб» (Россия);
— белковый маркер молекулярной массы фирмы Bio-Rad (США);
— акриламид и бис-акриламид фирмы AppliChem (Германия);
— нитроцеллюлозная мембрана с диаметром пор 0,45 мкм фирмы Sartorius (Германия);
— конъюгат козьих антител к IgG человека с щелочной фосфатазой фирмы Jakson ImmunoResearch (США);
— субстратный раствор, содержащий 5-бром-1-хлор-3-индолилфосфат и нитроголубой тетразолий фирмы Kem-En-Tec (Дания).
В работе применяли следующие методы:
1. Культивирование T. pallidum in vivo на кроликах-самцах породы шиншилла. Для этого животным интратестикулярно вводили взвесь T. pallidum из расчета 5×107 спирохет на яичко. Затем отбирали кроликов с 7—10-дневным специфическим орхитом, фиксировали их в станке и производили тотальное обескровливание перед удалением яичек. Вскрывали мошонку и отделяли семенники. Из каждого семенника извлекали трепонемы, для этого сначала каждый семенник держали над пламенем спиртовки несколько секунд, затем измельчали инфицированную ткань ножницами в кашицеобразную массу. Измельченную ткань заливали стерильным 0,9% раствором натрия хлорида и встряхивали на орбитальном шейкере. После встряхивания полученную взвесь сливали в стерильные центрифужные пробирки и центрифугировали. Надосадочную жидкость (взвесь T. pallidum) сливали в стерильный флакон. Все процедуры проводили согласно Правилам проведения лабораторных исследований в области ветеринарии [15] в соответствии с Законом Российской Федерации от 14.05.1993 №4979-1 «О ветеринарии» [16].
2. Получение нативного лизата из культуральной массы. Полученный супернатант подвергали обработке ультразвуком, центрифугировали, удаляли надосадочную жидкость и ресуспендировали осадок в фосфатно-солевом буферном растворе.
3. Электрофорез нативного лизата T. pallidum в полиакриламидном геле (ПААГ) в восстановленных условиях с целью разделения белков в соответствии с их молекулярной массой проводили по методике, предложенной U.K. Laemmli [17].
4. Электроперенос (блоттинг) разделенных белков из ПААГ на нитроцеллюлозную мембрану проводили с использованием оборудования фирмы Hoefer Scientific (США).
В качестве референсного материала при оценке чувствительности и специфичности разработанной тест-системы использовали международный стандарт ВОЗ WHO International Standard 1st IS for human syphilitic plasma IgG фирмы NIBSC (Великобритания); сероконверсионную панель Syphilis Seroconversion Panel фирмы SeraCare (США) и смешанную панель Syphilis Mixed Titer AccuSet Performance Panel Modified фирмы SeraCare (США).
В качестве клинического материала при оценке чувствительности и специфичности разработанной тест-системы использовали образцы сыворотки, плазмы крови и спинномозговой жидкости человека, полученные в диагностическом центре El Clinic (Электрогорск), в кожно-венерологическом диспансере г. Орехово-Зуево и на станции переливания крови г. Владимира. Все образцы предварительно были охарактеризованы на наличие или отсутствие IgG к T. pallidum в следующих тест-системах производства фирмы ЗАО «ЭКОлаб»: ИФА-Антипаллидум-IgG (РУ № ФСР 2008/03536 от 30.05.2018), Лайн-Блот Сифилис-IgG (РУ № РЗН 2014/1657 от 26.04.2018) и Антипаллидум-Флюороген-IgG (РУ № РЗН 2013/247 от 23.07.2018).
В качестве набора сравнения использовали набор реагентов Anti-T.pallidum WESTERNBLOT (IgG) фирмы EUROIMMUN AG (Германия).
Результаты и обсуждение
При разработке новой тест-системы использован опыт разработки аналогичных наборов, в частности тест-системы для выявления IgG к цитомегаловирусу [18]. При этом отработаны оптимальные условия получения иммуносорбента, процедуры анализа, регистрации, учета и интерпретации полученных данных.
По результатам проведенных экспериментов выбраны следующие условия получения иммуносорбента:
1) ПААГ с концентрацией акриламида 16% и бис-акриламида 4%;
2) загрузка нативного лизата T. pallidum на поверхность ПААГ из расчета 2 мкг на 1 мм2;
3) проведение электрофореза в течение 4 ч при температуре 7°С и меняющемся напряжении (250 В в начале процесса, 150 В через 1 ч от начала процесса и 100 В через 2 ч от начала процесса);
4) проведение электропереноса в течение 3 ч при температуре 15 °С и постоянном напряжении 100 В;
5) инкубирование мембран после электропереноса в течение 15 мин в трис-солевом буферном растворе с целью блокирования сайтов неспецифического связывания.
Анализ антигенного состава нативного лизата T. pallidum показал наличие в нем всех диагностически важных антигенов с молекулярными массами 47, 45, 17 и 15 кДа (см. рисунок).
Антигенный состав лизата T. pallidum.
1 — результат электрофоретического разделения белкового маркера молекулярной массы; 2 — результат исследования сыворотки, положительной по наличию IgG к T. pallidum, при инкубации с мембраной, на которую нанесены электрофоретические разделенные антигены нативного лизата T. pallidum и контрольная линия (анти-IgG).
В качестве оптимальной выбрана следующая процедура проведения анализа:
— разведение образца в буферном растворе 1:100;
— инкубация стрипов иммуносорбента с образцом в течение 30 мин при комнатной температуре на шейкере-качалке;
— 3 промывки буферным раствором по 5 мин;
— инкубация стрипов иммуносорбента с конъюгатом в течение 30 мин при комнатной температуре на шейкере-качалке;
— 3 промывки буферным раствором по 5 мин;
— инкубация с субстратным раствором в течение 10 мин в темноте при комнатной температуре на шейкере-качалке;
— остановка реакции водой очищенной.
Итогом разработки стала тест-система ИФА-Блот-Сифилис-IgG следующего состава:
1) иммуносорбент — 24 полоски (стрипа) из нитроцеллюлозной мембраны с нанесенными на них методом электропереноса белками T. pallidum (антигены р47, р45, р17, р15) и контрольной линией (козьи антитела к IgG человека);
2) конъюгат — козьи антитела к IgG человека, меченные щелочной фосфатазой;
3) окрашивающий раствор — 5-бром-4-хлор-3-индолилфосфат и нитроголубой тетразолий;
4) 10-кратный концентрат трис-солевого буфера [ТСБ(×10)];
5) фотография референс-стрипа с проявленным белковым профилем антигенов T. pallidum (р47, р45, р17, р15).
Результаты анализа интерпретировали с учетом окрашивания зон, соответствующих только специфическим антигенам, при этом учету подлежали только четко окрашенные полосы. Наличие слабо окрашенных полос, соответствующих специфическим антигенам, а также окрашенных полос, соответствующих неспецифическим антигенам, не учитывали.
Положительным результатом анализа считали наличие не менее 2 полос, соответствующих специфическим антигенам T. pallidum; наличие только одной полосы, соответствующей одному из специфических антигенов, оценивали как неопределенный результат, отсутствие окрашивания в области полос, соответствующих специфическим антигенам, — как отрицательный результат.
Чувствительность и специфичность разработанной тест-системы вначале исследовали на референсных материалах — на 9 сыворотках сероконверсионной панели Syphilis Seroconversion Panel фирмы SeraCare (5 отрицательных, 3 неопределенных и 1 положительный) и на 20 сыворотках панели Syphilis Mixed Titer AccuSetTM Performance Panel Modified фирмы SeraCare (2 отрицательных и 18 положительных).
Полученные оценки исследованных образцов полностью совпали с их паспортными характеристиками, т.е. была показана 100% диагностическая чувствительность и специфичность разработанной тест-системы. Аналитическая чувствительность тест-системы оценена с использованием международного стандарта ВОЗ WHO International Standard 1st IS for human syphilitic plasma IgG фирмы NIBSC и составила 0,001 МЕ/мл.
В заключение исследовали чувствительность и специфичность разработанной тест-системы на клиническом материале по сравнению с аналогом — набором реагентов Anti-T.pallidum WESTERNBLOT (IgG) фирмы EUROIMMUN AG. Исследовано по 10 образцов сыворотки и плазмы крови человека, а также спинномозговой жидкости, содержащих IgG к T. pallidum по результатам их предварительного обследования, и по 10 образцов сыворотки, плазмы и спинномозговой жидкости, не содержащих этих антител (всего 60 образцов). Оценки всех исследованных образцов, полученных в обеих тест-системах, полностью совпали, что подтверждает высокую чувствительность и специфичность новой тест-системы.
Кроме полного совпадения общих оценок клинических материалов, в обеих тест-системах получено практическое совпадение профилей антител, выявленных этими тест-системами в исследованных образцах, о чем свидетельствуют коэффициенты корреляции оценок наличия антител к антигенам р47, р45, р17, р15 — 0,93—1,00.
Следует отметить, что разработанная тест-система имеет преимущество перед набором-аналогом по времени проведения анализа — оно короче на 15 мин, поскольку блокировка стрипов, предусмотренная постановкой ИБ с помощью набора-аналога, при использовании ИФА-Блот-Сифилис-IgG не требуется — она уже выполнена при изготовлении иммуносорбента. Кроме того, стоимость новой тест-системы будет значительно ниже стоимости набора-аналога, поскольку ее основной компонент — нативный лизат T. pallidum — производится на базе ЗАО «ЭКОлаб». Так, в апреле 2020 г. коммерческая цена набора Anti-Treponema pallidum WESTERNBLOT (IgG) составила 12 552 руб., тогда как ориентировочная себестоимость набора ИФА-Блот-Сифилис-IgG равна 5000 руб.
Выводы
1. Разработана отечественная иммуноферментная тест-система ИФА-Блот-Сифилис-IgG, предназначенная для подтверждения наличия в сыворотке, плазме крови и спинномозговой жидкости IgG к T. pallidum методом ИБ (формат Western blot).
2. Разработанная тест-система характеризуется высокими показателями чувствительности и специфичности и имеет аналитическую чувствительность 0,001 МЕ/мл.
3. ИФА-Блот-Сифилис-IgG выгодно отличается по техническим характеристикам и стоимости от своего импортного аналога — набора реагентов Anti-T.pallidum WESTERNBLOT (IgG) фирмы EUROIMMUN AG (Германия).
4. После прохождения процедуры государственной регистрации медицинского изделия новая тест-система может быть рекомендована учреждениям здравоохранения в качестве подтверждающего теста на сифилис.
Участие авторов:
Концепция и дизайн исследования — С.Г. Марданлы
Сбор, обработка материала, написание текста — А.С. Авдонина
Редактирование — С.Г. Марданлы
Authors’ contributions:
The concept and design of the study — S.G. Mardanly
Collecting and interpreting the data — A.S. Avdonina
Drafting the manuscript — A.S. Avdonina
Revising the manuscript — S.G. Mardanly
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
The authors declare no conflict of interest.