Антиинфекционная защита влагалища у женщин репродуктивного возраста (мини-обзор)

Закрыть метаданные

Рекомендуем статьи по данной теме:

Микробиота свежевыделенной средней порции мочи у женщин в I триместре беременности (пилотное исследование). Проблемы репродукции. 2023;(5):73-78

Предикторы успеха экстракорпорального оплодотворения с криопереносом у пациенток с хроническим эндометритом по данным лазерного конверсионного тестирования. Проблемы репродукции. 2024;(2):62-73

Баланопостит: современные представления. Клиническая дерматология и венерология. 2023;(5):516-523

Формирование коллективного иммунитета у пожилых людей в условиях общей вакцинации от COVID-19. Профилактическая медицина. 2023;(12):41-45

Комплексное влияние полифенолов на микробиом кишечника и пусковые механизмы нейродегенерации при болезни Паркинсона. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2024;(1):38-44

Колоректальный рак и микробиота кишечника. Онкология. Журнал им. П.А. Герцена. 2024;(2):60-66

Лабораторные исследования в судебно-медицинских экспертизах по преступлениям против половой неприкосновенности и половой свободы личности. Судебно-медицинская экспертиза. 2024;(3):10-13

Изучение температурных условий роста микроорганизмов глазной поверхности в норме и при инфекционных кератитах. Вестник офтальмологии. 2024;(3):34-42

Методы оценки микробиологического разнообразия глазной поверхности. Вестник офтальмологии. 2024;(3):96-108

Некультуральные методы исследования микробиоты женского репродуктивного тракта, в том числе высокопроизводительное секвенирование 16S рРНК, позволяют наиболее полно оценить состав микробиома и выделить доминирующие микроорганизмы. Однако работы, посвященные влиянию типов микробиома влагалища на местную иммунореактивность, являются единичными. Нами проведен поиск работ в базах данных eLibrary, Google Academy, EBSCO, ResearchGate и PubMed, опубликованных в течение последних 20 лет. Выполнен анализ взаимосвязи типов влагалищного микробиома и состояния компонентов местного иммунитета. Установлено, что типы микробиома, в которых доминируют лактобактерии, способны поддерживать целостность эпителиального барьера, низкий уровень pH влагалищной слизи, препятствуют индукции воспалительного ответа. Эти свойства наиболее выражены у типа микробиома CST I, в котором доминирует Lactobacillus crispatus, в наименьшей степени — у микробиома CST III, в котором доминирует Lactobacillus iners. Тип микробиома CST IV, ассоциированный с преобладанием нелактобациллярной флоры, приводит к стимуляции синтеза антимикробных пептидов, активации макрофагов и дендритных клеток, увеличению числа натуральных клеток-киллеров, CD4+ T-лимфоцитов, Th17 лимфоцитов. Эти данные необходимо учитывать при разработке мер профилактики акушерских и гинекологических осложнений.

Ключевые слова:

микробиом

иммунитет

влагалище

Lactobacillus

Gardnerella

T-лимфоциты

эпителиоциты

нейтрофилы

макрофаги

Авторы:

Лебедева О.П.

ФГАОУ ВО «Белгородский государственный национальный исследовательский университет» Минобрнауки России;
ФГБОУ ВО «Воронежский государственный университет инженерных технологий» Минобрнауки России

ORCID: 0000-0002-7188-6780

Иванникова В.М.

ФГАОУ ВО «Белгородский государственный национальный исследовательский университет» Минобрнауки России;
ГБУЗ города Москвы «Городская клиническая больница №15 им. Н.Э. Баумана Департамента здравоохранения города Москвы»

ORCID: 0000-0002-3103-7864

Дата поступления:

19.01.2023

Дата принятия в печать:

03.04.2023

Список литературы:

van deWijgert JHHM, Jespers V. The global health impact of vaginal dysbiosis. Research in Microbiology. 2017;168(9-10):859-864. https://doi.org/10.1016/j.resmic.2017.02.003
Lebedeva O, Popov V, Syromyatnikov M, Starkova N, Maslov A, Kozarenko O, Gryaznova M. Female reproductive tract microbiome and early miscarriages. APMIS: Acta Pathologica, Microbiologica, et Immunologica Scandinavica. 2023;131(2):61-76. https://doi.org/10.1111/apm.13288
Gryaznova M, Lebedeva O, Kozarenko O, Smirnova Y, Burakova I, Syromyatnikov M, Maslov A, Popov V. Lower Genital Tract Microbiome in Early Pregnancy in the Eastern European Population. Microorganisms. 2022;10(12):2368. https://doi.org/10.3390/microorganisms10122368
Лебедева О.П., Грязнова М.В., Козаренко О.Н., Сыромятников М.Ю., Попов В.Н. Микробиом влагалища при нарушениях менструального цикла (обзор). Научные результаты биомедицинских исследований. 2021;7(4):433-450. https://doi.org/10.18413/2658-6533-2021-7-4-0-9
Радзинский В.Е., Хамошина М.Б., Оразов М.Р., Тулупова М.С., Пестрикова Т.Ю., Ярмолинская М.И., Рымашевский А.Н. Результаты многоцентрового наблюдательного исследования: терапия острого вагинита неспецифической и смешанной этиологии у пациенток репродуктивного возраста. Акушерство и гинекология. 2019;(8):150-159. https://doi.org/10.18565/aig.2019.8.150-158
McKinnon LR, Achilles SL, Bradshaw CS, Burgener A, Crucitti T, Fredricks DN, Jaspan HB, Kaul R, Kaushic C, Klatt N, Kwon DS, Marrazzo JM, Masson L, McClelland RS, Ravel J, van de Wijgert JHHM, Vodstrcil LA, Tachedjian G. The Evolving Facets of Bacterial Vaginosis: Implications for HIV Transmission. AIDS Research and Human Retroviruses. 2019;35(3):219-228. https://doi.org/10.1089/AID.2018.0304
Martin DH, Marrazzo JM. The Vaginal Microbiome: Current Understanding and Future Directions. The Journal of Infectious Diseases. 2016;214(suppl 1):36-41. https://doi.org/10.1093/infdis/jiw184
Theis KR, Florova V, Romero R, Borisov AB, Winters AD, Galaz J, Gomez-Lopez N. Sneathia: an emerging pathogen in female reproductive disease and adverse perinatal outcomes. Critical Reviews in Microbiology. 2021;47(4):517-542. https://doi.org/10.1080/1040841X.2021.1905606
So KA, Yang EJ, Kim NR, Hong SR, Lee JH, Hwang CS, Shim SH, Lee SJ, Kim TJ. Changes of vaginal microbiota during cervical carcinogenesis in women with human papillomavirus infection. PLoS One. 2020;15(9):e0238705. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0238705
Ravel J, Gajer P, Abdo Z, Schneider GM, Koenig SS, McCulle SL, Karlebach S, Gorle R, Russell J, Tacket CO, Brotman RM, Davis CC, Ault K, Peralta L, Forney LJ. Vaginal microbiome of reproductive-age women. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2011;108(suppl 1):4680-4687. https://doi.org/10.1073/pnas.1002611107
Gajer P, Brotman RM, Bai G, Sakamoto J, Schütte UM, Zhong X, Koenig SSK, Fu L, Ma ZS, Zhou X, Abdo Z, Forney LJ, Ravel J. Temporal dynamics of the human vaginal microbiota. Science Translational Medicine. 2012;4(132):132ra52-132ra52. https://doi.org/10.1126/scitranslmed.3003605
France MT, Ma B, Gajer P, Brown S, Humphrys MS, Holm JB, Waetjen LE, Brotman RM, Ravel J. VALENCIA: a nearest centroid classification method for vaginal microbial communities based on composition. Microbiome. 2020;8(1):166. https://doi.org/10.1186/s40168-020-00934-6
France M, Alizadeh M, Brown S, Ma B, Ravel J. Towards a deeper understanding of the vaginal microbiota. Nature Microbiology. 2022;7(3):367-378. https://doi.org/10.1038/s41564-022-01083-2
Rampersaud R, Planet PJ, Randis TM, Kulkarni R, Aguilar JL, Lehrer RI, Ratner AJ. Inerolysin, a cholesterol-dependent cytolysin produced by Lactobacillus iners. Journal of Bacteriology. 2011; 193(5):1034-1041. https://doi.org/10.1128/JB.00694-10
Gelber SE, Aguilar JL, Lewis KL, Ratner AJ. Functional and phylogenetic characterization of Vaginolysin, the human-specific cytolysin from Gardnerella vaginalis. Journal of Bacteriology. 2008; 190(11):3896-3903. https://doi.org/10.1128/JB.01965-07
Smayevsky J, Canigia LF, Lanza A, Bianchini H. Vaginal microflora associated with bacterial vaginosis in nonpregnant women: reliability of sialidase detection. Infectious Diseases in Obstetrics and Gynecology. 2001;9(1):17-22. https://doi.org/10.1155/S1064744901000047
Ragaliauskas T, Plečkaitytė M, Jankunec M, Labanauskas L, Baranauskiene L, Valincius G. Inerolysin and vaginolysin, the cytolysins implicated in vaginal dysbiosis, differently impair molecular integrity of phospholipid membranes. Scientific Reports. 2019;9(1): 10606. https://doi.org/10.1038/s41598-019-47043-5
Spurbeck RR, Arvidson CG. Lactobacilli at the front line of defense against vaginally acquired infections. Future Microbiology. 2011; 6(5):567-582. https://doi.org/10.2217/fmb.11.36
Nunn KL, Witkin SS, Schneider GM, Boester A, Nasioudis D, Minis E, Gliniewicz K, Forney LJ. Changes in the Vaginal Microbiome during the Pregnancy to Postpartum Transition. Reproductive Sciences. 2021;28(7):1996-2005. https://doi.org/10.1007/s43032-020-00438-6
Кира Е.Ф., Молчанов О.Л., Семенова К.Е. Биологическая роль молочной кислоты в обеспечении стабильности микроэкосистемы влагалища. Акушерство и гинекология. 2014;12:31-36.
Macklaim JM, Fernandes AD, Di Bella JM, Hammond JA, Reid G, Gloor GB. Comparative meta-RNA-seq of the vaginal microbiota and differential expression by Lactobacillus iners in health and dysbiosis. Microbiome. 2013;1(1):1-11.
Mls J, Stráník J, Kacerovský M. Lactobacillus iners-dominated vaginal microbiota in pregnancy. Ceska Gynekologie. 2019;84(6):463-467.
Manhanzva MT, Abrahams AG, Gamieldien H., Froissart R, Jaspan H, Jaumdally SZ, Barnabas SL, Dabee S, Bekker LG, Gray G, Passmore JA, Masson L. Inflammatory and antimicrobial properties differ between vaginal Lactobacillus isolates from South African women with non-optimal versus optimal microbiota. Scientific Reports. 2020;10(1):6196. https://doi.org/10.1038/s41598-020-62184-8
Witkin SS, Mendes-Soares H, Linhares IM, Jayaram A, Ledger WJ, Forney LJ. Influence of Vaginal Bacteria and d- and l-Lactic Acid Isomers on Vaginal Extracellular Matrix Metalloproteinase Inducer: Implications for Protection against Upper Genital Tract Infections. mBio. 4(4):e00460-13. https://doi.org/10.1128/mBio.00460-13
Antonio MAD, Hawes SE, Hillier SL. The Identification of Vaginal Lactobacillus Species and the Demographic and Microbiologic Characteristics of Women Colonized by These Species. The Journal of Infectious Diseases. 1999;180(6):1950-1956. https://doi.org/10.1086/315109
Stoyancheva G, Marzotto M, Dellaglio F, Torriani S. Bacteriocin production and gene sequencing analysis from vaginal Lactobacillus strains. Archives of Microbiology. 2014;196(9):645-653. https://doi.org/10.1007/s00203-014-1003-1
Nelson DB, Hanlon AL, Wu G, Liu C, Fredricks DN. First Trimester Levels of BV-Associated Bacteria and Risk of Miscarriage among Women Early in Pregnancy. Maternal and Child Health Journal. 2015;19(12):2682-2687. https://doi.org/10.1007/s10995-015-1790-2
Лебедева О.П., Рудых Н.А., Полякова И.С., Пахомов С.П., Чурносов М.И., Самборская Н.И. Антимикробные пептиды первая линия антиинфекционной защиты женских половых путей. Научные ведомости Белгородского государственного университета Серия: Медицина Фармация. 2010;12(22-93):25-30.
Lebedeva O, Ivashova O, Pakhomov S, Churnosov M. Antimicrobial peptides in forming of microbiocenosis of female reproductive tract at late pregnancy. Giornale Italiano di Ostetricia e Ginecologia. 2014;36(1):179-181.
Al-Nasiry S, Ambrosino E, Schlaepfer M, Morré SA, Wieten L, Voncken JW, Spinelli M, Mueller M, Kramer BW. The Interplay Between Reproductive Tract Microbiota and Immunological System in Human Reproduction. Frontiers in Immunology. 2020;11:378. https://doi.org/10.3389/fimmu.2020.00378
Lee EY, Lee MW, Wong GCL. Modulation of toll-like receptor signaling by antimicrobial peptides. Seminars in Cell and Developmental Biology. 2019;88:173-184. https://doi.org/10.1016/j.semcdb.2018.02.002
Doerflinger SY, Throop AL, Herbst-Kralovetz MM. Bacteria in the Vaginal Microbiome Alter the Innate Immune Response and Barrier Properties of the Human Vaginal Epithelia in a Species-Specific Manner. The Journal of Infectious Diseases. 2014;209(12):1989-1999. https://doi.org/10.1093/infdis/jiu004
Лебедева О.П. Роль рецепторов NOD1 и NOD2 в распознавании патогенов в женском репродуктивном тракте. Акушество и гинекология. 2019;(5):25-29. https://doi.org/10.18565/aig.2019.5.25-29
Лебедева О.П., Жукова И.О., Ивашова О.Н., Пахомов С.П., Чурносов М.И. Роль рецепторов RIG-I, AIM2 и IFI16, распознающих вирусную ДНК и РНК, в патогенезе самопроизвольных выкидышей и неразвивающейся беременности ранних сроков. Акушерство и гинекология. 2018;7:57-61. https://doi.org/10.18565/aig.2018.7.57-61
Liao AH, Muyayalo KP. Chapter 14 — Toll-like receptors and NOD-like receptors at the implantation site. In: Mor G, ed. Reproductive Immunology. Academic Press; 2021;277-294. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-818508-7.00001-4
Aboussahoud W, Aflatoonian R, Bruce C, Elliott S, Ward J, Newton S, Hombach-Klonisch S, Klonisch T, Fazeli A. Expression and function of Toll-like receptors in human endometrial epithelial cell lines. Journal of Reproductive Immunology. 2010;84(1):41-51. https://doi.org/10.1016/j.jri.2009.09.008
Montazeri M, Sanchez-Lopez JA, Caballero I, Lay NM, Elliott S, López-Martín S, Yáñez-Mó M, Fazeli A. Activation of Toll-like receptor 3 reduces actin polymerization and adhesion molecule expression in endometrial cells, a potential mechanism for viral-induced implantation failure. Human Reproduction. 2015;30(4):893-905. https://doi.org/10.1093/humrep/deu359
Лебедева О.П., Кирко Р. Экспрессия Толл-подобных рецепторов в женском репродуктивном тракте и ее гормональная регуляция (обзор). Научные результаты биомедицинских исследований. 2018;4(3):3-17. https://doi.org/10.18413/2313-8955-2018-4-3-0-1
Lebedeva O, Zhukova I, Yakovleva O, Pakhomov S, Sukhih N, Starceva N, Churnosov M, Bashmakov V, Popov V. Toll-like receptor 3 and death receptors in early stage miscarriages. Giornale Italiano di Ostetricia e Ginecologia. 2016;38(1):130-132.
Lebedeva OP, Pakhomov SP, Ivashova ON, Starceva N, Churnosov M, Kuznetsova Y, Kuznichenko E. Expression of TLR 1-10 and caspase-3 alfa in human endometrium at women with early miscarriages. Giornale Italiano di Ostetricia e Ginecologia. 2013;35(1):270-271.
Лебедева О.П., Калуцкий П.В., Пахомов С.П., Чурносов М.И., Карпов П.А., Самборская Н.И. Толл-подобные рецепторы женского репродуктивного тракта и их лиганды. Научные Ведомости Белгородского Государственного Университета Серия: Медицина Фармация. 2010;22(93):31-35.
Rose 2nd WA, McGowin CL, Spagnuolo RA, Eaves-Pyles TD, Popov VL, Pyles RB. Commensal Bacteria Modulate Innate Immune Responses of Vaginal Epithelial Cell Multilayer Cultures. PLoS One. 2012;7(3):e32728. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0032728
Anahtar MN, Byrne EH, Doherty KE, Doherty KE, Bowman BA, Yamamoto HS, Soumillon M, Padavattan N, Ismail N, Moodley A, Sabatini ME, Ghebremichael MS, Nusbaum C, Huttenhower C, Virgin HW, Ndung’u T, Dong KL, Walker BD, Fichorova RN, Kwon DS. Cervicovaginal bacteria are a major modulator of host inflammatory responses in the female genital tract. Immunity. 2015; 42(5):965-976.
Gosmann C, Anahtar MN, Handley SA, Farcasanu M, Abu-Ali G, Bowman BA, Padavattan N, Desai C, Droit L, Moodley A, Dong M, Chen Y, Ismail N, Ndung’u T, Ghebremichael MS, Wesemann DR, Mitchell C, Dong KL, Huttenhower C, Walker BD, Virgin HW, Kwon DS. Lactobacillus-Deficient Cervicovaginal Bacterial Communities are Associated with Increased HIV Acquisition in Young South African Women. Immunity. 2017;46(1):29-37. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2016.12.013
Amerson-Brown MH, Miller AL, Maxwell CA, White MM, Vincent KL, Bourne N, Pyles RB. Cultivated Human Vaginal Microbiome Communities Impact Zika and Herpes Simplex Virus Replication in ex vivo Vaginal Mucosal Cultures. Frontiers in Microbiology. 2019;9:3340. https://doi.org/10.3389/fmicb.2018.03340
Perner MA. Proteomics-Based Approach to Understanding Female Genital Immunity and the Relationship to the Vaginal Microbiome. University of Mannitoba; 2020.
Krishnamurthy V, Satish S, Vimalambike MG. Cannonballs in Pap Smears: Double Whammy of Bacterial Vaginosis and Associated Infections. Acta Cytologica. 2016;60(1):53-57. https://doi.org/10.1159/000444074
Kuon RJ, Togawa R, Vomstein K, Weber M, Goeggl T, Strowitzki T, Markert UR, Zimmermann S, Daniel V, Dalpke AH, Toth B. Higher prevalence of colonization with Gardnerella vaginalis and gram-negative anaerobes in patients with recurrent miscarriage and elevated peripheral natural killer cells. Journal of Reproductive Immunology. 2017;120:15-19. https://doi.org/10.1016/j.jri.2017.03.001
Breedveld AC, Schuster HJ, van Houdt R, Painter RC, Mebius RE, van der Veer C, Bruisten SM, Savelkoul PHM, van Egmond M. Enhanced IgA coating of bacteria in women with Lactobacillus crispatus-dominated vaginal microbiota. Microbiome. 2022;10(1):15. https://doi.org/10.1186/s40168-021-01198-4
Severgnini M, Morselli S, Camboni T, Ceccarani C, Salvo M, Zagonari S, Patuelli G, Pedna MF, Sambri V, Foschi C, Consolandi C, Marangoni A. Gardnerella vaginalis clades in pregnancy: New insights into the interactions with the vaginal microbiome. PLoS One. 2022;17(6):e0269590. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0269590
Atashili J, Poole C, Ndumbe PM, Adimora AA, Smith JS. Bacterial vaginosis and HIV acquisition: a meta-analysis of published studies. AIDS. 2008;22(12):1493-1501. https://doi.org/10.1097/QAD.0b013e3283021a37
Christensen-Quick A, Lafferty M, Sun L, Marchionni L, DeVico A, Garzino-Demo A. Human Th17 Cells Lack HIV-Inhibitory RNases and Are Highly Permissive to Productive HIV Infection. Journal of Virology. 2016;90(17):7833-7847. https://doi.org/10.1128/JVI.02869-15

Закрыть метаданные