В настоящее время достигнут существенный прогресс в изучении факторов возникновения рассеянного склероза (РС). В современном понимании РС — это хроническое заболевание ЦНС с аутоиммунно-воспалительными и нейродегенеративными механизмами развития [1]. Активное изучение патогенеза РС способствовало разработке и внедрению уже более 20 лекарственных препаратов таргетного лечения РС, доказанно влияющих на течение заболевания [2]. Подавляющее большинство этих лекарственных средств действует системно, модулируя или подавляя определенные компоненты иммунитета, что обусловливает достаточно широкий спектр нежелательных явлений [3]. Участие врожденного иммунитета в патогенезе запуска и поддержания аутоиммунно-воспалительных и нейродегенеративных процессов в мозге в настоящее время является предметом активного изучения [4—6], но до сих пор нет широко используемых методов диагностики, позволяющих объективизировать активность патологического процесса непосредственно в мозге. МРТ широко применяется в диагностике и контроле эффективности лечения РС, но не позволяет полностью оценить выраженность локального и диффузного нейровоспаления в ткани мозга. Наиболее информативным является патологическое накопление парамагнитного контрастного препарата на T1-взвешенных изображениях в «новых» очагах демиелинизации или вокруг них, что указывает на повышение проницаемости гематоэнцефалического барьера (ГЭБ). Следует отметить, что само патологическое накопление контрастного препарата не отражает активность локальных иммунных реакций, выраженность демиелинизации и ремиелинизации [7]. Наиболее широко используемый лабораторный маркер РС — выявление повышенного синтеза IgG в цереброспинальной жидкости (ЦСЖ) с образованием олигоклональных полос — имеет высокую чувствительность в плане диагностики РС (>85%), но низкую специфичность (не более 60%), и также практически не отображает активность патологического процесса при РС [8, 9]. Другой широко внедряемый маркер — качественное и количественное определение содержания легких цепей нейрофиламентов — также является неспецифичным, так как указывает на тяжесть (объем) поражения, а не на активность процесса [10, 11]. Вышесказанное не позволяет в полной мере утверждать, что использование этих маркеров возможно для прогноза течения патологического процесса непосредственно в ткани мозга.
Позитронно-эмиссионная компьютерная томография (ПЭТ-КТ) и однофотонная эмиссионная компьютерная томография (ОФЭКТ) сейчас все шире внедряются в практическую неврологию как объективные методы визуализации основных компонентов патологического процесса при РС. В данном обзоре представлены традиционные подходы и новые данные по использованию ПЭТ-КТ и ОФЭКТ с различными изотопами и радиофармацевтическими препаратами (РФП) для оценки тяжести и прогноза течения патологического процесса в ткани мозга пациентов с РС. Эти подходы позволяют оценивать иммуномодулирующую и противовоспалительную активность in situ препаратов, изменяющих течение РС (ПИТРС), в частности таблетированной формы Кладрибина.
Традиционные методы ПЭТ-КТ для оценки демиелинизации и ремиелинизации
Возможности ПЭТ-КТ-визуализации для оценки выраженности демиелинизации и ремиелинизации изучаются уже более 10 лет как на экспериментальных моделях демиелинизирующих заболеваний (экспериментальный аутоиммунный энцефалит, ЭАЭ), так и в реальной клинической практике у пациентов с РС. Первым радионуклидным трейсером для этих целей был 1,4-бис(п-аминостирил)-2-метоксибензол, меченный 11C, получивший название Case Imaging Compound (CIC). CIC-маркер продемонстрировал высокую информативность в моделях демиелинизации, однако не оправдал надежды в клинических исследованиях [12, 13]. У другого экспериментального маркера — 11C-N-methyl-4,4′-diaminostilbene (MeDAS) — уровень накопления на моделях ЭАЭ снижался в зонах воспалительной демиелинизации и прогрессирующе увеличивался во время последующей спонтанной ремиелинизации, что согласовывалось с результатами гистологического и клинического обследования [14, 15]. Этот маркер имел высокое сродство к белому веществу мозга, но наличие слабой контрастности на изображениях между серым и белым веществом и короткий период полураспада 11C ограничили дальнейшие разработки при РС.
В качестве потенциальных маркеров демиелинизации при РС рассматривались специфические радионуклидные трейсеры, отражающие отложение амилоида при нейродегенеративных заболеваниях [16, 17]. Было высказано предположение, что бета-листовая структура, которая присутствует как в амилоидном пептиде, так и в основном белке миелина, является общей мишенью для амилоидных ПЭТ-маркеров [18]. При острых поражениях белого вещества головного мозга наблюдается гипофиксация маркеров амилоида по сравнению с интактным белым веществом, что отражает обширную потерю миелина в очагах поражения. Показано снижение активности накопления РФП, связывающихся с амилоидом, в гипоинтенсивных очагах на T1-взвешенных изображениях МРТ (T1-ВИ) — так называемых черных дырах, имеющих повышенный сигнал на T2-ВИ [19]. На сегодняшний день наиболее часто используемыми ПЭТ-трейсерами оценки накопления амилоида для изучения активности процесса демиелинизации являются производные тиофлавин-T2-(4’-метиламинофенил)-6-гидроксибензотиазола, меченные 11C, в первую очередь Питтсбургская субстанция (Pittsburgh compound B, PiB) [20]. Показано снижение накопления PiB при РС не только в самих очагах поражения, но и в ткани вокруг них, в кажущемся нормальном белом веществе мозга (КНБВ) — поглощение радиометки прогрессивно уменьшается при нарастании демиелинизации. Выявлена связь когнитивных нарушений, особенно выраженных расстройств при прогрессирующем течении и неблагоприятном прогнозе РС, с очаговой гипофиксацией PiB в коре головного мозга [21]. Значимым ограничением, обусловленным коротким (20 мин) периодом полураспада 11C, является невозможность транспортировки РФП и необходимость наличия собственного циклотрона для его синтеза.
Разработка и широкое внедрение фторированных 18F амилоидных ПЭТ-КТ-трейсеров с более длительным (до 110 мин) периодом полураспада, также активно используемых, например при болезни Альцгеймера, расширяет клиническое использование ПЭТ-КТ с маркерами амилоида для визуализации демиелинизации и ремиелинизации. В последние 5 лет интенсивно проводятся работы по визуализации активности амилоида у пациентов с РС с 18F-флуметамолом, 18F-флорбетапиром и 18F-флорбетабеном [22, 23]. При сравнении двух радионуклидных трейсеров: 18F-флутеметамола и 11C-PiB, показаны лучшая дифференцировка очагов с КНБВ и большая диагностическая точность 18F-флутеметамола, в том числе независимо от возраста пациентов с РС. Учитывая более длительный период полураспада РФП, коммерческую доступность и высокий диагностический потенциал, 18F-флутеметамол представляется наиболее перспективным РФП для ПЭТ-КТ-диагностики РС [24, 25].
ПЭТ-КТ с 18F-флорбетабеном показала высокую информативность в оценке гиперинтенсивных очагов на T2-ВИ и FLAIR при МРТ-исследовании не только в белом веществе, но и в коре головного мозга и мозжечке, особенно при прогрессирующих формах РС [22]. При обострении РС показана прямая корреляционная связь между содержанием β-амилоида 1–42 (Aβ) в ЦСЖ, объемом мозга и интенсивностью накопления 18F-флорбетабена [23]. Такая связь гипофиксации 18F-флорбетабена при ПЭТ-КТ и уровнем Aβ в ЦСЖ делает возможными диагностику активности воспалительной демиелинизации и оценку вероятности прогрессирования патологического процесса. Также опубликовано много исследований о роли ПЭТ-КТ с 18F-флорбетапиром для изучения выраженности демиелинизации и ремиелинизации при РС [26, 27]. В исследованиях с применением данного маркера амилоида показано, что признаки демиелинизации при РС имеются не только в очагах, выявляемых на МРТ, но и в КНБВ. Примечательно, что уже на ранних стадиях заболевания демиелинизация может визуализироваться в сером веществе коры головного мозга и мозжечке, что подтверждается наличием характерных для РС мелких очагов в коре мозга по результатам исследований, проведенных на высокопольных МРТ [28].
При сопоставлении данных МРТ и ПЭТ-КТ описана также область, локализующаяся между очагами и КНБВ (окружающая зона отека или «полутени»), в которой содержание 18F-флорбетапира ниже, чем в КНБВ, что позволяет предположить, что в этой зоне нейровоспаления имеет место различная степень демиелинизации [24]. Динамические наблюдения показали возможность ремиелинизации при РС, так как после устранения воспаления интенсивность накопления 18F-флорбетапира в очагах повышается по сравнению с исходным уровнем [24]. Комбинация высокопольной МРТ и ПЭТ-КТ с 18F-флорбетапиром позволила установить постепенное снижение накопления радиометки по ходу белого вещества мозга от КНБВ к центру очага на T2-ВИ МРТ, а также связь накопления 18F-флорбетапира с уровнем фракционной анизотропии и показателями средней, осевой и радиальной диффузии в пределах T2-ВИ очага (коэффициенты корреляции K=–0,15, p<0,001, K=–0,12, p<0,001 и K=–0,16, p<0,001 соответственно) [27].
Относительно недавно предложен метод оценки выраженности демиелинизации и нейродегенерации по данным ПЭТ-КТ с 1-11C-ацетатом. У пациентов с РС показано повышение скорости вымывания 1-11C-ацетата из белого вещества головного мозга, что позволяет оценить выраженность диффузных нейродегенеративных изменений, так как отражает скорость метаболизма астроцитов в трактах нейронных волокон, а также снижение фракционной анизотропии [29].
ПЭТ-КТ в оценке нейровоспаления и состояния врожденного иммунитета in situ
В качестве маркеров активации врожденного иммунитета и нейровоспаления при РС было исследовано несколько радионуклидных трейсеров. В частности, было предложено использовать маркеры связывания циклооксигеназы-2, но они не показали своей информативности при РС [30]. Также предлагалось оценивать состояние микроглии по данным мониторинга изменений в метаболизме глюкозы [31]. 18F-фтордезоксиглюкоза (18F-ФДГ) отражает потребление глюкозы различными структурами мозга и может позволить классифицировать очаги поражения в белом веществе мозга как острые (гиперметаболические) или хронические (гипометаболические) в зависимости от степени накопления РФП [32]. Высокий уровень физиологического поглощения глюкозы в головном мозге представляет серьезное ограничение и приводит к низкому соотношению «очаг-фон», препятствующему использованию ПЭТ-КТ с 18F-ФДГ в качестве маркера активности процесса при РС в клинической практике.
В настоящее время наиболее перспективными с точки зрения патогенетических механизмов являются маркеры на основе белковых молекул, связанных с активацией микроглии, в частности митохондриального транслокаторного белка TSPO. TSPO наиболее высокоэкспрессируется в митохондриях и является маркером воспаления, отображая активацию микроглии и макрофагов при РС [33, 34]. TSPO — 11C-PBR28 позволяет выявлять очаги воспаления в мозжечке, которые не визуализируются при рутинной МРТ и могут быть выявлены только при индукции магнитного поля в 7 Тл [35]. Эти очаги чаще выявляются при вторичном прогрессировании РС (ВПРС), чем на ранних стадиях ремиттирующего течения РС. Авторами показано, что распространенность и активность накопления 11C-PBR28 при ПЭТ-КТ у пациентов с РС напрямую коррелируют со степенью инвалидизации (оценивалась по шкале EDSS, связь статистически значима, p=0,02) [35].
У пациентов с ремиттирующим РС или ВПРС выявлен повышенный захват TSPO как в определяемых с помощью МРТ очагах поражения белого вещества, так и в КНБВ. Это позволило предположить, что ПЭТ-КТ с маркерами TSPO может позволить оценить патофизиологические процессы при очаговых и диффузных изменениях белого и серого вещества, не различимых на МРТ [36]. Действительно, исследования по выявлению повышенной экспрессии TSPO подтвердили, что молекулярные изменения, обнаруженные при ПЭТ-КТ с маркерами TSPO, предшествуют структурным изменениям, обнаруженным с помощью МРТ [37]. В дополнение к более высокому сигналу в очагах, выявляемых по МРТ, в КНБВ при РС также отмечается повышенное накопление радионуклидных трейсеров TSPO по сравнению с результатами обследования контрольной группы соответствующего возраста [38]. Уровень накопления прямо связан с последующим прогрессированием атрофии мозга и скоростью инвалидизации [39, 40].
Двухлетнее динамическое наблюдение за 37 пациентами с РС с комбинированным использованием МРТ и ПЭТ-КТ с 18F-DPA-714 (пиразолпиримидин, маркер TSPO в микроглии) показало, что с более тяжелым течением РС прямо связаны такие параметры, как общее увеличение количества очагов повышенного накопления 18F-DPA-714 (ОР=1,13; p=0,009), интенсивность накопления 18F-DPA-714 в зоне КНБВ и в области T1-ВИ гипоинтенсивных очагов («черные дыры») (ОР=1,16; p=0,009) [36]. Скорость инвалидизации, измеряемая большим изменением шкалы EDSS за 2 года наблюдения, была достоверно связана с каждым из следующих параметров: процент аккумуляции 18F-DPA-714 и количество вокселов в КГБВ (ОР=1,16; p=0,009), процент аккумуляции 18F-DPA-714 и количество вокселов в очагах на T1-ВИ («черные дыры») (ОР=1,06; p= 0,036) и суммарное количество 18F-DPA-714-активных очагов (ОР=1,13; p=0,009). Ни один из параметров МРТ или ПЭТ-КТ не был достоверно связан с уровнем EDSS при начале исследования [36]. Ключевым выводом этого исследования было то, что большое количество очагов белого вещества, классифицированных как активные на основании результатов ПЭТ-КТ с 18F-DPA-714 (37,1% от всех очагов на T2-ВИ), не визуализировалось при МРТ с контрастированием (Gd+ очаги на T1-ВИ), т.е. как активные очаги по данным МРТ (только 0,2% очагов на T2-ВИ). Эти результаты свидетельствуют о том, что у больных с РС применение ПЭТ-КТ с 18F-DPA-714 позволяет выявлять подострые и хронические активные поражения, независимо от формы клинической эволюции.
Также представляется перспективным ПЭТ-маркер TSPO 11C‐PK11195 (PKPET), показавший прямую связь избыточной аккумуляции в КНБВ с прогрессированием РС (ОР=4,26; p=0,048) [41]. У 15 пациентов с прогрессирующим РС проводилась динамическая ПЭТ-КТ с 11CPK11195, группу контроля составили 16 здоровых добровольцев. По результатам наблюдения в течение 12 мес выявлено, что у пациентов с РС показатели накопления 11C‐PK11195 достоверно увеличились: в КНБВ (p=0,01), коре головного мозга (p=0,04), таламусе (p=0,04) и скорлупе (p=0,02). Такие изменения трактовались как продолженная активация микроглии, т.е. клеток врожденного иммунитета, в сером веществе головного мозга [42]. Таким образом, применение ПЭТ-КТ с маркерами TSPO в настоящее время является наиболее чувствительным методом визуализации для выявления нейровоспаления и активации локального иммунитета, даже по сравнению с «золотым стандартом» — МРТ.
ПЭТ-КТ и ОФЭКТ в оценке мозгового кровотока как предиктора активности аутоиммунного воспаления
Патологический процесс при РС традиционно связывали с нарушением кровоснабжения. Гистологические и патолого-анатомические исследования показали, что бляшки при РС возникают на определенных сегментах крупных эпивентрикулярных вен, данные высокопольных МРТ-исследований подтвердили тесную связь между основными церебральными венами и воспалительными бляшками [43]. В результате острого воспаления, отека и локального сдавления ткани развивается нарушение кровообращения; ему могут способствовать воспалительные изменения в стенке сосуда с активацией свертывающей системы крови или прямое повреждение эндотелия [44].
Для оценки перфузии головного мозга применяется ОФЭКТ с РФП 99mTc-ECD или 99mTc-HMPAO. РФП распределяется пропорционально мозговому кровотоку и стабильно фиксируется в ткани серого вещества головного мозга. Методом ОФЭКТ было показано значительное снижение перфузии у пациентов с РС как в очагах демиелинизации, выявляемых на МРТ, так и в структурах головного мозга вокруг очагов [45]. По данным ПЭТ-КТ подтверждено, что мозговой кровоток снижается в областях повреждения белого вещества у больных РС, показано достоверное различие при сравнении с группой контроля (–10,9%, p=0,005) [46]. Также была выявлена прямая корреляционная связь между снижением регионального мозгового кровотока и прогрессированием инвалидизации, особенно у пациентов с нарушениями когнитивных функций при РС [47].
Оценка объема хориоидальных сплетений как предиктора активности нейровоспаления
Показано, что при РС характерно увеличение объема хориоидальных сплетений (ХС) уже на ранних стадиях демиелинизирующего процесса при радиологически изолированном синдроме [48, 49]. В исследовании с участием 37 больных РС и 19 здоровых проведено комбинированное обследование — МРТ с напряженностью магнитного поля 3 Тл и ПЭТ-КТ с 18F-DPA-714. Объемы ХС сегментировались на трехмерных T1-ВИ. Было показано увеличение объема ХС у больных РС: на 35% больше (0,00159±0,00045 мл), чем у пациентов в группе контроля (0,00118±0,00038 мл; p=0,004). Также показано, что увеличение объема ХС было более значимым у пациентов с активными поражениями при МРТ (при наличии Gd+ очагов на T1-ВИ 0,00182±0,00049 мл против 0,00149±0,0004 мл у пациентов без выраженных очагов (p<0,001)) и коррелировало с объемом очагов в белом веществе мозга (r=0,39; 95% ДИ 0,20—0,55; p<0,001), а также с уровнем связывания 18F-DPA-714 в таламусе (r=0,44; 95% ДИ 0,22—0,72; p=0,04). Увеличение объема ХС было прямо также связано со среднегодовой частотой обострений (r=0,37; 95% ДИ 0,1—0,55; p=0,005). Авторы сделали вывод, что объем ХС увеличивается, а сами сплетения ассоциированы с воспалением, особенно при обострении заболевания [48]. В другом исследовании (97 пациентов с РС, группа контроля — 44 здоровых) гибридное ПЭТ-КТ/МРТ-исследование выявило увеличение объема сосудистого сплетения и достоверно более высокое накопление 18F-ФДГ при РС по сравнению с группой контроля. Авторами было предложено считать изменения объема ХС в качестве ключевых признаков активного нейровоспаления [49]. В одном из исследований авторы оценивали объем ХС методом МРТ у 180 пациентов с РС, 98 — с заболеваниями спектра оптиконейромиелита (ЗСОНМ), 47 — с мигренью и 94 здоровых лиц группы контроля (участвовали 4 центра в Швейцарии, Германии и Японии). Показано, что объем ХС при РС достоверно больше (медиана (Me) 1690 мкл, межквартильный диапазон (IQR) 648 мкл), чем при ЗСОНМ (Me 1403 мкл, IQR 510 мкл), у здоровых людей (Me 1533 мкл, IQR 570 мкл). В то же время не было показано достоверных различий объемов ХС у больных ЗСОНМ, пациентов с мигренью (Me 1404 мкл, IQR 524 мкл; p<0,001) и в группе контроля, даже с поправкой на возраст, пол и общий внутричерепной объем. В отличие от ЗСОНМ, увеличение объема сосудистого сплетения при РС прямо коррелировало с количеством очагов на T2-ВИ в линейной модели, скорректированной с учетом возраста, пола, общего внутричерепного объема, продолжительности заболевания, количества обострений за год до МРТ, типа течения заболевания, показателя тяжести состояния (по шкале EDSS), вида принимаемого ПИТРС (β=4,4; 95% ДИ 0,78–8,1; p=0,018) [50].
Действие иммуномодулирующих препаратов в ткани мозга и возможность объективизации эффекта с помощью ПЭТ-КТ и ОФЭКТ
Одной из наиболее актуальных задач патогенетического лечения РС считается направленное воздействие на активность аутоиммунного воспаления непосредственно в ткани мозга. Известно, что в острую фазу воспаления при РС происходит повреждение ГЭБ [51, 52]. Очаговая дисфункция ГЭБ визуализируется при помощи МРТ с контрастированием гадолиний-содержащими контрастными препаратами на T1-ВИ и возникает уже на ранних стадиях образования новых очагов при РС [53, 54], что может даже предшествовать инфильтрации иммунных клеток ЦНС и повреждению миелина [55, 56]. Но даже при повреждении ГЭБ проникновение через него макромолекул зачастую остается невозможным и ограничено для средне- и низкомолекулярных соединений (возможно проникновение в вещество головного мозга не более 2% от концентрации препаратов в крови) [56, 57]. Только совсем небольшие молекулы, с молекулярной массой <0,5 кДа и высокой липофильностью, могут проникать через ГЭБ путем пассивной или трансклеточной диффузии [57]. Для трансфера более крупных или нелипофильных молекул используются рецепторные транспортные системы, функция которых при РС также часто нарушена [58, 59]. Вышеперечисленное обусловливает ряд требований к лекарственному препарату для терапии РС для обеспечения его способности проникать через ГЭБ.
Среди ПИТРС есть ряд низкомолекулярных соединений, способных проникать через ГЭБ и оказывать не только системное, но и локальное воздействие в ткани мозга. К ним относятся: диметилфумарат, который быстро гидролизуется в монометилфумарат, способный в небольших количествах проникать через ГЭБ [60]; финголимод и сипонимод — липофильные молекулы, до 10% их концентрации в крови проникает в ткани мозга [61, 62]; Кладрибин, как показано в ряде исследований, имеет наибольшую проницаемость через ГЭБ и до 25% концентрации препарата в крови проникает в ткань мозга [6, 63—66]. Именно прямое центральное действие Кладрибина в ткани мозга, помимо его воздействия на активированные аутоагрессивные T- и B-клетки на периферии, привлекает сейчас большое внимание. В ряде экспериментальных работ показано существенное воздействие Кладрибина на активацию микроглии, т.е. на состояние врожденного тканевого иммунитета, а также прямой нейропротективный эффект, что крайне важно для оценки патогенетического влияния препарата при РС [67, 68]. Кладрибин показал высокую клиническую эффективность и безопасность в клинических исследованиях при РС [69], действуя в рамках нового подхода к лечению этого заболевания — терапии иммунореконституции (ТИР). При применении ТИР нет необходимости использования длительных (пожизненных) курсов применения ПИТРС, а для длительного эффекта достаточно двух курсов лечения в течение 2 лет, вероятнее всего, из-за перестройки иммунорегуляции непосредственно в ткани мозга [70, 71]. Пока не проводилось достаточного объема клинических исследований по оценке патогенетических механизмов Кладрибина в ткани мозга, при этом, несомненно, новые подходы к нейровизуализации с использованием современных технологий ПЭТ-КТ и ОФЭКТ представляются наиболее интересными для изучения механизмов действия и особенностей клинического использования ТИР.
Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Список литературы:
- Гусев Е.И., Бойко А.Н. Рассеянный склероз. Научно-практическое руководство. Т. 1. РООИ «Здоровье человека», 2020;608 с. ISBN978-5-6044140-2-6.
- Cross A, Riley C. Treatment of Multiple Sclerosis. Continuum (Minneap Minn). 2022;28(4):1025-1051. https://doi.org/10.1212/CON.0000000000001170
- Freeman L, Longbrake EE, Coyle PK, et al. High-Efficacy Therapies for Treatment-Naïve Individuals with Relapsing-Remitting Multiple Sclerosis. CNS Drugs. 2022;36(12):1285-1299. https://doi.org/10.1007/s40263-022-00965-7
- Ford RK, Juillard P, Hawke S, et al. Cladribine Reduces Trans-Endothelial Migration of Memory T Cells across an In Vitro Blood-Brain Barrier. J Clin Med. 2022;11(20):6006. https://doi.org/10.3390/jcm11206006
- Correale J, Halfon MJ, Jack D, et al. Acting centrally or peripherally: A renewed interest in the central nervous system penetration of disease-modifying drugs in multiple sclerosis. Mult Scler Relat Disord. 2021;56:103264. https://doi.org/10.1016/j.msard.2021.103264
- Hermann R, Karlsson MO, Novakovic AM, et al. The clinical pharmacology of cladribine tablets for the treatment of relapsing multiple sclerosis. Clin. Pharmacokinet. 2019;58(3):283-297. https://doi.org/10.1007/s40262-018-0695-9
- Filippi M, Preziosa P, Rocca MA. MRI in multiple sclerosis: what is changing? Curr Opin Neurol. 2018;31(4):386-395. https://doi.org/10.1097/WCO.0000000000000572
- Pryce G, Baker D. Oligoclonal bands in multiple sclerosis; Functional significance and therapeutic implications. Does the specificity matter? Mult Scler Relat Disord. 2018;25:131-137. https://doi.org/10.1016/j.msard.2018.07.030
- Carta S, Ferraro D, Ferrari S, et al. Oligoclonal bands: clinical utility and interpretation cues. Crit Rev Clin Lab Sci. 2022;59(6):391-404. https://doi.org/10.1080/10408363.2022.2039591
- Varhaug KN, Torkildsen Ø, Myhr KM, Vedeler CA. Neurofilament Light Chain as a Biomarker in Multiple Sclerosis. Front Neurol. 2019;10:338. https://doi.org/10.3389/fneur.2019.00338
- Niiranen M, Kontkanen A, Jääskeläinen O, et al. Serum GFAP and NfL levels in benign relapsing-remitting multiple sclerosis. Mult Scler Relat Disord. 2021;56:103280. https://doi.org/10.1016/j.msard.2021.103280
- Stankoff B, Wang Y, Bottlaender M, et al. Imaging of CNS myelin by positron-emission tomography. Proc Natl Acad Sci USA. 2006;103:9304-9309. https://doi.org/10.1073/pnas.0600769103
- De Paula FD, Copray S, Sijbesma JW, et al. PET imaging of focal demyelination and remyelination in a rat model of multiple sclerosis: comparison of [11C] MeDAS, [11C] CIC and [11C] PIB. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2014;41:995-1003. https://doi.org/10.1007/s00259-013-2682-6
- Wu C, Zhu J, Baeslack J, et al. Longitudinal positron emission tomography imaging for monitoring myelin repair in the spinal cord. Ann Neurol. 2013;74:688-698. https://doi.org/10.1002/ana.23965
- De Paula FD, Copray S, Buchpiguel C, et al. PET imaging in multiple sclerosis. J NeuroImmune Pharmacol. 2014;9:468-482. https://doi.org/10.1007/s11481-014-9544-2
- Chandra A. Role of amyloid from a multiple sclerosis perspective: a literature review. Neuroimmunomodulation. 2015;22:343-346. https://doi.org/10.1159/000375309
- Morbelli S, Bauckneht M, Capitanio S, et al. A new frontier for amyloid PET imaging: multiple sclerosis. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2019;46:276-279. https://doi.org/10.1007/s00259-018-4232-8
- De Paula FD, Vlaming ML, Copray SC, et al. PET imaging of disease progression and treatment effects in the experimental autoimmune encephalomyelitis rat model. J Nucl Med. 2014;55:1330-1335. https://doi.org/10.2967/jnumed.114.137216
- Stankoff B, Freeman L, Aigrot MS, et al. Imaging central nervous system myelin by positron emission tomography in multiple sclerosis using [methyl-11C]-2-(4′-methylaminophenyl)- 6-hydroxybenzothiazole. Ann Neurol. 2011;69:673-680. https://doi.org/10.1002/ana.22320
- Bodini B, Veronese M, García-Lorenzo D, et al. Dynamic imaging of individual Remyelination profiles in multiple sclerosis. Ann Neurol. 2016;79:726-738. https://doi.org/10.1002/ana.24620
- Zeydan B, Lowe VJ, Schwarz CG, et al. Pittsburgh compound-B PET white matter imaging and cognitive function in late multiple sclerosis. Mult Scler. 2018;24:739-749. https://doi.org/10.1177/1352458517707346
- Matías-Guiu JA, Cabrera-Martín MN, Pytel V, et al. Amyloid Positron Emission Tomography in Multiple Sclerosis: Between Amyloid Deposition and Myelin Damage. Ann Neurol. 2020;87(6):988. https://doi.org/10.1002/ana.25759
- Pietroboni AM, Carandini T, Colombi A, et al. Amyloid PET as a marker of normal-appearing white matter early damage in multiple sclerosis: correlation with CSF β-amyloid levels and brain volumes. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2019;46:280-287. https://doi.org/10.1007/s00259-018-4182-1
- Zhang M, Ni Y, Zhou Q, et al. 18F-florbetapir PET/MRI for quantitatively monitoring myelin loss and recovery in patients with multiple sclerosis: A longitudinal study. EClinicalMedicine. 2021;37:100982. https://doi.org/10.1016/j.eclinm.2021.100982
- Zeydan B, Schwarz CG, Przybelski SA, et al. Comparison of 11C-Pittsburgh Compound B and 18F-Flutemetamol White Matter Binding in PET. J Nucl Med. 2022;63(8):1239-1244. https://doi.org/10.2967/jnumed.121.263281
- Carotenuto A, Giordano B, Dervenoulas G, et al. [18F] Florbetapir PET/MR imaging to assess demyelination in multiple sclerosis. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2020;47(2):366-378. https://doi.org/10.1007/s00259-019-04533-y
- Auvity S, Tonietto M, Caillé F, et al. Repurposing radiotracers for myelin imaging: a study comparing 18F-florbetaben, 18F-florbetapir, 18F-flutemetamol,11C-MeDAS, and 11C-PiB. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 2020 Feb;47(2):490-501. https://doi.org/10.1007/s00259-019-04516-z
- Park CC, Thongkham DW, Sadigh G, et al. Detection of Cortical and Deep Gray Matter Lesions in Multiple Sclerosis Using DIR and FLAIR at 3T. J Neuroimaging. 2021;31(2):408-414. https://doi.org/10.1111/jon.12822
- Kato H, Okuno T, Isohashi K, et al. Astrocyte metabolism in multiple sclerosis investigated by 1-C-11 acetate PET. J Cereb Blood Flow Metab. 2021;41(2):369-379. https://doi.org/10.1177/0271678X20911469
- Cortes-Salva MY, Shrestha S, Singh P, et al. 2-(4-Methylsulfonylphenyl) pyrimidines as prospective Radioligands for imaging Cyclooxygenase-2 with PET-synthesis, triage, and radiolabeling. Molecules. 2018;23(11):2850. https://doi.org/10.3390/molecules23112850
- Kiferle L, Politis M, Muraro PA, Piccini P. Positron emission tomography imaging in multiple sclerosis-current status and future applications. Eur J Neurol. 2011;18:226-231. https://doi.org/10.1111/j.1468-1331.2010.03154.x
- Buck D, Förschler A, Lapa C, et al. 18F-FDG PET detects inflammatory infiltrates in spinal cord experimental autoimmune encephalomyelitis lesions. J Nucl Med. 2012;53:1269-1276. https://doi.org/10.2967/jnumed.111.102608
- Guilarte TR. TSPO in diverse CNS pathologies and psychiatric disease: a critical review and a way forward. Pharmacol Ther. 2019;194:44-58. https://doi.org/10.1016/j.pharmthera.2018.09.003
- Guilarte TR, Rodichkin AN, McGlothan JL, et al. Imaging neuroinflammation with TSPO: A new perspective on the cellular sources and subcellular localization. Pharmacol Ther. 2022;234:108048. https://doi.org/10.1016/j.pharmthera.2021.108048
- Barletta VT, Herranz E, Treaba CA, et al. Evidence of diffuse cerebellar neuroinflammation in multiple sclerosis by 11C-PBR28 MR-PET. Mult Scler. 2020;26(6):668-678. https://doi.org/10.1177/1352458519843048
- Bodini B, Poirion E, Tonietto M, et al. Individual mapping of innate immune cell activation is a candidate marker of patient-specific trajectories of disability worsening in multiple sclerosis. J Nucl Med. 2020;61:1043-1049. https://doi.org/10.2967/jnumed.119.231340
- Kreisl WC, Kim MJ, Coughlin JM, et al. PET imaging of neuroinflammation in neurological disorders. Lancet Neurology. 2020;19:940-950. https://doi.org/10.1016/S1474-4422(20)30346-X
- Rissanen E, Tuisku J, Rokka J, et al. In vivo detection of diffuse inflammation in secondary progressive multiple sclerosis using PET imaging and the radioligand 11C-PK11195. J Nucl Med. 2014;55:939-944. https://doi.org/10.2967/jnumed.113.131698
- Datta D, Colasanti A, Rabiner EA, et al. Neuroinflammation and its relationship to changes in brain volume and white matter lesions in multiple sclerosis. Brain. 2017;140:2927-2938. https://doi.org/10.1093/brain/awx228
- Datta D, Colasanti A, Kalk N, et al. 11C-PBR28 and 18F-PBR111 detect white matter inflammatory heterogeneity in multiple sclerosis. J Nucl Med. 2017;58:1477-1482. https://doi.org/10.2967/jnumed.116.187161
- Sucksdorff M, Matilainen M, Tuisku J, et al. Brain TSPO-PET predicts later disease progression independent of relapses in multiple sclerosis. Brain. 2020;143(11):3318-3330. https://doi.org/10.1093/brain/awaa275
- Kang Y, Pandya S, Zinger N, et al. Longitudinal change in TSPO PET imaging in progressive multiple sclerosis. Ann Clin Transl Neurol. 2021;8(8):1755-1759. https://doi.org/10.1002/acn3.51431
- Inglese M, Park S, Rashid W, et al. Deep Gray Matter Perfusion in Multiple Sclerosis. Dynamic Susceptibility Contrast Perfusion Magnetic Resonance Imaging at 3 T. Arch Neurol. 2007;64(2):62-68. https://doi.org/10.1001/archneur.64.2.196
- Mancini M, Morra VB, Di Donato O, et al. Multiple sclerosis: cerebral circulation time. Radiology. 2012;262(3):947-955. https://doi.org/10.1148/radiol.11111239
- Гусев Е.И., Бойко А.Н., Кольяк Е.В. и др. Вклад сосудистых нарушений в клинические проявления рассеянного склероза у больных старше 45 лет и возможности коррекции. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2008;108(5):25-31.
- Meng H, Zheng S, Yuan S, et al. Hybrid 18F-florbetapir PET/MRI for assessing myelin recovery in GFAP-A patients. Transl Neurosci. 2022;13(1):120-124. https://doi.org/10.1515/tnsci-2022-0223
- Hojjat SP, Cantrell CG, Vitorino R, et al. Regional reduction in cortical blood flow among cognitively impaired adults with relapsing-remitting multiple sclerosis patients. Mult Scler. 2016;22(11):1421-1428. https://doi.org/10.1177/1352458515622696
- Ricigliano VAG, Morena E, Colombi A, et al. Choroid Plexus Enlargement in Inflammatory Multiple Sclerosis: 3.0-T MRI and Translocator Protein PET Evaluation. Radiology. 2021;301(1):166-177. https://doi.org/10.1148/radiol.2021204426
- Ricigliano VAG, Louapre C, Poirion E, et al. Imaging Characteristics of Choroid Plexuses in Presymptomatic Multiple Sclerosis: A Retrospective Study. Neurol Neuroimmunol Neuroinflamm. 2022;9(6):e200026. https://doi.org/10.1212/NXI.0000000000200026
- Müller J, Sinnecker T, Wendebourg MJ, et al. Choroid Plexus Volume in Multiple Sclerosis vs Neuromyelitis Optica Spectrum Disorder: A Retrospective, Cross-sectional Analysis. Neurol Neuroimmunol Neuroinflamm. 2022;9(3):e1147. https://doi.org/10.1212/NXI.0000000000001147
- Grigoriadis N, van Pesch V; ParadigMS Group. A basic overview of multiple sclerosis immunopathology. Eur J Neurol. 2015;22 Suppl 2:3-13. https://doi.org/10.1111/ene.12798
- Ortiz GG, Pacheco-Moisés FP, Macías-Islas MA, et al. Role of the Blood-Brain Barrier in Multiple Sclerosis. Arch. Med. Res. 2014;45:687-697. https://doi.org/10.1016/j.arcmed.2014.11.013
- Balasa R, Barcutean L, Mosora O, Manu D. Reviewing the Significance of Blood-Brain Barrier Disruption in Multiple Sclerosis Pathology and Treatment. Int J Mol Sci. 2021;22(16):8370. https://doi.org/10.3390/ijms22168370
- Nishihara H, Perriot S, Gastfriend BD, et al. Intrinsic blood-brain barrier dysfunction contributes to multiple sclerosis pathogenesis. Brain. 2022;145(12):4334-4348. https://doi.org/10.1093/brain/awac019
- Shimitzu F, Nishihara H, Kanda T. Blood-brain barrier dysfunction in immunomediated neurological diseases. Immunol. Med. 2018;41:120-128. https://doi.org/10.1080/25785826.2018.1531190
- Pardridge WM. The blood-brain barrier: bottleneck in brain drug development. NeuroRx. 2005;2(1):3-14. https://doi.org/10.1602/neurorx.2.1.3
- Ghersi-Egea JF, Strazielle N, Catala M, et al. Molecular anatomy and functions of the choroidal blood-cerebrospinal fluid barrier in health and disease. Acta Neuropathol. 2018;135(3):337-361. https://doi.org/10.1007/s00401-018-1807-1
- Dominguéz A, Álvarez A, Hilario E, et al. Central nervous system diseases and the role of the blood-brain barrier in their treatment. Neurosci. Disc. 2013;1:3-9. https://doi.org/10.7243/2052-6946-1-3
- Mikitsh JL, Chacko AM. Pathways for small molecule delivery to the central nervous system across the blood-brain barrier. Perspect Medicin Chem. 2014;6:11-24. https://doi.org/10.4137/PMC.S13384
- Mills EA, Ogrodnik MA, Plave A, Mao-Draayer Y. Emerging Understanding of the Mechanism of Action for Dimethyl Fumarate in the Treatment of Multiple Sclerosis. Front Neurol. 2018;9:5-9. https://doi.org/10.3389/fneur.2018.00005
- Hunter SF, Bowen JD, Reder AT. The Direct Effects of Fingolimod in the Central Nervous System: Implications for Relapsing Multiple Sclerosis. CNS Drugs. 2016;30(2):135-147. https://doi.org/10.1007/s40263-015-0297-0
- Basavarajappa D, Gupta V, Chitranshi N, et al. Siponimod exerts neuroprotective effects on the retina and higher visual pathway through neuronal S1PR1 in experimental glaucoma. Neural Regen Res. 2023;18(4):840-848. https://doi.org/10.4103/1673-5374.344952
- Liliemark J. The clinical pharmacokinetics of cladribine. Clin Pharmacokinet. 1997;32(2):120-131. https://doi.org/10.2165/00003088-199732020-00003
- Leist TP, Weissert R. Cladribine: mode of action and implications for treatment of multiple sclerosis. Clin Neuropharmacol. 2011;34(1):28-35. https://doi.org/10.1097/WNF.0b013e318204cd90
- Giovannoni G, Mathews J. Cladribine Tablets for Relapsing-Remitting Multiple Sclerosis: A Clinician’s Review. Neurol Ther. 2022;11(2):571-595. https://doi.org/10.1007/s40120-022-00339-7
- Petracca M, Ruggieri S, Barbuti E, et al. Predictors of Cladribine Effectiveness and Safety in Multiple Sclerosis: A Real-World, Multicenter, 2-Year Follow-Up Study. Neurol Ther. 2022;11(3):1193-1208. https://doi.org/10.1007/s40120-022-00364-6
- Schroeter CB, Rolfes L, Gothan KSS, et al. Cladribine treatment improves cortical network functionality in a mouse model of autoimmune encephalomyelitis. J Neuroinflammation. 2022;19(1):270. https://doi.org/10.1186/s12974-022-02588-7
- Aybar F, Julia Perez M, Silvina Marcora M, et al. 2-Chlorodeoxyadenosine (Cladribine) preferentially inhibits the biological activity of microglial cells. Int Immunopharmacol. 2022;105:108571. https://doi.org/10.1016/j.intimp.2022.108571
- Giovannoni G, Soelberg Sorensen P, Cook S, et al. Safety and efficacy of cladribine tablets in patients with relapsing-remitting multiple sclerosis: Results from the randomized extension trial of the CLARITY study. Mult. Scler. 2018;24:1594-1604. https://doi.org/10.1177/1352458517727603
- Wiendl H. Cladribine — An old newcomer for pulsed immune reconstitution in MS. Nat. Rev. Neurol. 2017;13:573-574. https://doi.org/10.1038/nrneurol.2017.119
- Jacobs B, Ammoscato F, Giovannoni G, et al. Cladribine: Mechanisms and mysteries in multiple sclerosis. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 2018;89:1266-1271. https://doi.org/10.1136/jnnp-2017-317411