Мельников М.В.

ФГБУ «Федеральный центр мозга и нейротехнологий» Федерального медико-биологического агентства России;
ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России;
ФГБУ ГНЦ «Институт иммунологии» Федерального медико-биологического агентства России

Свиридова А.А.

ФГБУ «Федеральный центр мозга и нейротехнологий» ФМБА России

Солодова Т.В.

ФГБУ «Федеральный центр мозга и нейротехнологий» Федерального медико-биологического агентства России;
ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

Лопатина А.В.

ФГБУ «Федеральный центр мозга и нейротехнологий» Федерального медико-биологического агентства России

Пащенков М.В.

ФГБУ ГНЦ «Институт иммунологии» ФМБА России

Бойко А.Н.

ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России;
ФГБУ «Федеральный центр мозга и нейротехнологий» Федерального медико-биологического агентства России

Блокада D1-дофаминовых рецепторов подавляет функции Th17-клеток при рассеянном склерозе

Авторы:

Мельников М.В., Свиридова А.А., Солодова Т.В., Лопатина А.В., Пащенков М.В., Бойко А.Н.

Подробнее об авторах

Прочитано: 3156 раз


Как цитировать:

Мельников М.В., Свиридова А.А., Солодова Т.В., Лопатина А.В., Пащенков М.В., Бойко А.Н. Блокада D1-дофаминовых рецепторов подавляет функции Th17-клеток при рассеянном склерозе. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. Спецвыпуски. 2021;121(7‑2):82‑89.
Melnikov MV, Sviridova AA, Solodova TV, Lopatina AV, Pashenkov MV, Boyko AN. Blockade of D1-like dopaminergic receptors suppresses Th17-cell function in multiple sclerosis. S.S. Korsakov Journal of Neurology and Psychiatry. 2021;121(7‑2):82‑89. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/jnevro202112107282

Рекомендуем статьи по данной теме:
Ког­ни­тив­ные на­ру­ше­ния у па­ци­ен­тов с рас­се­ян­ным скле­ро­зом. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2025;(4-2):67-73
Мо­ле­ку­ляр­ные ме­ха­низ­мы раз­ви­тия ос­тро­го рас­се­ян­но­го эн­це­фа­ло­ми­ели­та. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2025;(7-2):7-11
Роль мо­но­ци­тов в им­му­но­па­то­ге­не­зе рас­се­ян­но­го скле­ро­за. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. Спец­вы­пус­ки. 2025;(7-2):23-27
Гор­мо­наль­ные ме­то­ды кон­тра­цеп­ции и рас­се­ян­ный скле­роз. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(1):24-30
Эпи­де­ми­оло­гия рас­се­ян­но­го скле­ро­за в Но­во­си­бир­ске. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(1):119-127
Кли­ни­чес­кий слу­чай X-сцеп­лен­ной ад­ре­но­лей­ко­дис­тро­фии. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(4):102-107
Воз­мож­нос­ти ис­кусствен­но­го ин­тел­лек­та при рас­се­ян­ном скле­ро­зе. Жур­нал нев­ро­ло­гии и пси­хи­ат­рии им. С.С. Кор­са­ко­ва. 2025;(5):14-21

Исследование нейроиммунных взаимодействий является перспективным направлением в изучении патогенеза рассеянного склероза (РС) [1]. Дофамин является прямым медиатором этого взаимодействия и участвует в иммунорегуляции при РС путем модуляции функций клеток как врожденного, так и адаптивного иммунного ответа [1, 2]. Наибольшее внимание привлекает влияние дофамина на Th17-иммунный ответ, который имеет важное патогенетическое значение при РС [3]. Недавние исследования показали потенциальную возможность модулировать индуцируемый дендритными клетками Th17-иммунный ответ путем воздействия на D1-рецепторы дофамина при экспериментальном аутоиммунном энцефаломиелите у животных [4—6]. В то же время влияние антагонистов D1-рецепторов дофамина на продукцию Th17-цитокинов непосредственно T-клетками больных РС мало изучено. Цель настоящего исследования — изучить влияние блокады D1-рецепторов дофамина на продукцию интерлейкина-17 (ИЛ-17) и интерферона-γ (ИФН-γ) мононуклеарными клетками периферической крови (МНКПК), а также CD4+ T-клетками больных РС и здоровых доноров in vitro.

Материал и методы

Проведено комплексное клиническое и иммунологическое обследование 41 больного (26 женщин и 15 мужчин) в возрасте от 23 до 47 лет с диагнозом «ремиттирующий РС» по критериям МакДональда в модификации 2017 г. [7]. Длительность заболевания на момент включения в исследование составляла от 1 года до 10 лет. Все больные получали терапию препаратом глатирамера ацетат >9 мес. Все пациенты находились в стадии клинической ремиссии (>6 мес). Всем пациентам проводился стандартный неврологический осмотр с оценкой уровня инвалидизации по шкале Expanded Disability Status Scale (EDSS) [8]. На момент забора крови все исследуемые больные >6 мес не получали лечение глюкокортикостероидной терапией или терапией антидепрессантами (16 пациентам, находящимся в стадии обострения, глюкокортикостероидная терапия была проведена после забора крови). Контрольную группу составили 25 условно здоровых доноров (16 женщин и 9 мужчин). Группы были сопоставимы по полу и возрасту. Клинико-демографические характеристики больных РС и группы здоровых доноров представлены в табл. 1.

Таблица 1. Клинико-демографические характеристики больных РС и здоровых доноров. Представлено значение медианы, в скобках — 25-й и 75-й процентили

Показатель

Больные РС, обострение (n=16)

Больные РС, ремиссия (n=25)

Здоровые доноры (n=25)

Возраст, годы

32 (27; 42)

30 (25; 45)

29 (25; 31)

Мужчины/женщины (% женщин)

6/10 (38)

10/15 (40)

9/16 (36)

Длительность РС, годы

6 (3; 8)

5 (3; 7)

EDSS, баллы

3 (2,5; 3,5)

2 (1; 3)

Примечание. * — на момент включения в исследование.

Все больные подписали информированное согласие на участие в данном исследовании. Проведение исследования было одобрено этическим комитетом Российского национального исследовательского медицинского университета им. Н.И. Пирогова (протокол №192).

Для определения функциональной активности Th17-клеток из венозной крови (взятой в утренние часы в пластиковую пробирку с гепарином) выделяли МНКПК путем центрифугирования на градиенте плотности фиколл-урографина («ПанЭко», Россия), трижды отмывали фосфатно-солевым буфером (ФСБ, Ph=7,3) и ресуспендировали в культуральной среде RPMI 1640 («ПанЭко») с добавлением 2 mM L-глутамина («ПанЭко») и 2% донорской AB сыворотки («PAA», Австрия). Затем из части образцов МНКПК методом иммуномагнитной сепарации (негативная селекция, «Miltenyi Biotec», Германия) выделяли CD4+ T-клетки. Согласно данным многоцветной проточной цитометрии, чистота выделения CD4+ T-клеток составляла >95%.

Затем образцы МНКПК и CD4+ T-клеток в количестве 8·104 в 200 мкл на лунку вносили в 96-луночный круглодонный планшет («SPL», Республика Корея) и стимулировали микрочастицами, покрытыми анти-CD3/анти-CD28-антителами («Life Technologies», Норвегия). Для оценки влияния дофамина, а также блокады D1-рецепторов дофамина на функции Th17-клеток образцы МНКПК и CD4+ T-клеток стимулировали в присутствии дофамина («Sigma», США), антагониста D1-рецепторов дофамина (SCH23390, «Sigma», США) или совместно (предварительное инкубирование в присутствии SCH23390 с последующим внесением дофамина) в конечной концентрации 105 М, после чего образцы клеток стимулировались анти-CD3/анти-CD28-микрочастицами [1]. Затем образцы инкубировали 72 ч в CO2-инкубаторе, после чего отбирали супернатант и замораживали при –70 °C.

Уровни спонтанной и индуцированной продукции ИЛ-17 и ИФН-γ в супернатантах клеточной культуры определяли методом иммуноферментного анализа (ИФА). Для измерения концентрации цитокинов использовали наборы фирмы «Invitrogen» (США). Уровни аналитов выражали в пг/мл или процентах по отношению к стимулированной продукции цитокинов в отсутствие дофамина или антагониста D1-рецепторов дофамина.

Статистическую обработку результатов проводили с использованием программы Prizm 6. Для оценки различий двух групп использовались непараметрический U-критерий Манна—Уитни или знаковый ранговый критерий Уилкоксона. Для множественных сравнений использовали односторонний дисперсионный анализ с последующей поправкой по критерию Бонферрони. Статистически значимыми различия считались при p<0,05.

Результаты

По данным ИФА, анти-CD3/CD28-стимулированная продукция ИЛ-17 и ИФН-γ МНКПК больных РС в стадии обострения была достоверно выше, чем у больных РС в стадии клинической ремиссии или в контрольной группе (табл. 2). При этом стимулированная продукция цитокинов МНКПК больных РС в стадии ремиссии и здоровых доноров была сопоставима (см. табл. 2). Стимулированная продукция ИЛ-17 и ИФН-γ CD4+ T-клетками больных РС в стадии ремиссии и здоровых доноров также была сопоставима (табл. 3). Дофамин в конечной концентрации 105 М оказывал достоверный ингибирующий эффект на продукцию цитокинов как МНКПК, так и CD4+ T-клетками во всех группах (рис. 1), не оказывая при этом влияния на пролиферативный ответ согласно данным реакции бластной трансформации лимфоцитов (РБТЛ) (данные не представлены). Предварительная блокада D1-дофаминовых рецепторов специфическим антагонистом SCH23390 не влияла на ингибирующий эффект дофамина на продукцию цитокинов как МНКПК, так и CD4+ T-клетками больных РС и здоровых доноров (рис. 2). Блокада D1-дофаминовых рецепторов (без последующего внесения дофамина) подавляла продукцию ИЛ-17 и ИФН-γ МНКПК и CD4+ T-клетками в обеих группах (рис. 3), не оказывая влияния на клеточную пролиферацию согласно результатам РБТЛ (данные не представлены).

Таблица 2. Продукция ИЛ-17 и ИФН-γ мононуклеарными клетками периферической крови больных РС и здоровых доноров. Представлено значение медианы, в скобках — 25-й и 75-й процентили

Цитокин

Стимуляция

Больные РС, обострение (n=16)

Больные РС, ремиссия (n=25)

Здоровые доноры (n=25)

ИЛ-17, пг/мл

Без стимуляции

7 (5; 8)

4 (2; 7)

3 (0; 6)

CD3/CD28

425 (398; 483)*

260 (202; 400)

259 (174; 360)

ИФН-γ, пг/мл

Без стимуляции

14 (11; 21)

12 (10; 23)

11 (8; 18)

CD3/CD28

3033 (2338; 3412)*

2190 (1448; 3030)

2300 (1798; 2700)

Примечание. * — достоверное отличие от больных РС в стадии ремиссии и группы здоровых доноров с p<0,05 (Манн—Уитни U-тест).

Таблица 3. Продукция ИЛ-17 и ИФН-γ CD4+ T-клетками больных РС и здоровых доноров. Представлено значение медианы, в скобках — 25-й и 75-й процентили*

Цитокин

Стимуляция

Больные РС, ремиссия (n=20)

Здоровые доноры (n=15)

ИЛ-17, пг/мл

Без стимуляции

7 (3; 12)

3 (0; 9)

CD3/CD28

700 (379; 1150)

694 (251; 881)

ИФН-γ, пг/мл

Без стимуляции

9 (3; 24)

5 (0; 20)

CD3/CD28

5770 (2624; 7205)

4781 (1295; 6083)

Примечание. * — не выявлено достоверного отличия между группами (Манн—Уитни U-тест).

Рис. 1. Влияние дофамина на продукцию ИЛ-17 и ИФН-γ МНКПК (а и б) и CD4+ T-клетками (в и г) больных РС и здоровых доноров in vitro.

МНКПК или CD4+ клетки (в количестве 8·104 в 200 мкл на лунку), полученные от больных РС и группы здоровых доноров, были активированы микрочастицами, покрытыми анти-CD3/анти-CD28 антителами, в присутствии/отсутствие дофамина в конечной концентрации 105 М. После 72-часовой инкубации в CO2-инкубаторе в супернатантах клеточной культуры определяли уровни стимулированной продукции ИЛ-17 и ИФН-γ методом ИФА. Значения представлены в виде медианы, 25-го и 75-процентиля (в процентах по отношению к анти-CD3/анти-CD28-стимулированной продукции цитокинов в отсутствие дофамина).

Рис. 2. Влияние антагониста D1-рецепторов дофамина (SCH23390) на продукцию ИЛ-17 (а и б) и ИФН-γ (в и г) МНКПК больных РС и здоровых доноров in vitro.

МНКПК (в количестве 8·104 в 200 мкл на лунку), полученные от больных РС и группы здоровых доноров, были активированы микрочастицами, покрытыми анти-CD3/анти-CD28 антителами в присутствии/отсутствие дофамина/SCH23390 в конечной концентрации 105 М. После 72-часовой инкубации в CO2-инкубаторе в супернатантах клеточной культуры определяли уровни стимулированной продукции ИЛ-17 и ИФН-γ методом ИФА. Значения представлены в виде медианы, 25-го и 75-процентиля (в процентах по отношению к анти-CD3/анти-CD28-стимулированной продукции цитокинов в отсутствие дофамина или SCH23390).

Рис. 3. Влияние антагониста D1-рецепторов дофамина (SCH23390) на продукцию ИЛ-17 (а и б) и ИФН-γ (в и г) CD4+ T-клетками больных РС и здоровых доноров in vitro.

CD4+ T-клетки (в количестве 8·104 в 200 мкл на лунку), полученные от больных РС и группы здоровых доноров, были активированы микрочастицами, покрытыми анти-CD3/анти-CD28 антителами в присутствии/отсутствие дофамина/SCH23390 в конечной концентрации 105 М. После 72-часовой инкубации в CO2-инкубаторе в супернатантах клеточной культуры определяли уровни стимулированной продукции ИЛ-17 и ИФН-γ методом ИФА. Значения представлены в виде медианы, 25-го и 75-процентиля (в процентах по отношению к анти-CD3/анти-CD28-стимулированной продукции цитокинов в отсутствие дофамина или SCH23390).

Обсуждение

Лечение больных РС остается одной из наиболее актуальных проблем современной неврологии [9]. Учитывая критическое патогенетическое значение T-хелперов 17-го типа в патогенезе РС, модуляция их функций является важной задачей патогенетической терапии. Практически все препараты, изменяющие течение РС (ПИТРС), прямо или опосредованно влияют на функции Th17-клеток [10]. В то же время важно отметить, что модуляция функций Th17-клеток в центральной нервной системе (ЦНС) ограничена, что связано с неспособностью многих ПИТРС проникать через гематоэнцефалический барьер [11].

Существование механизмов, позволяющих модулировать иммунный ответ в ЦНС, обсуждается длительное время. Исследования последних лет указывают на потенциальную способность подавлять нейровоспаление путем воздействия на рецепторы биогенных аминов. Немаловажным является участие биогенных аминов в регуляции оси «мозг—кишечная микробиота», которая также вовлечена в патогенез аутоиммунных заболеваний ЦНС [12, 13]. В связи с этим обсуждается перепрофилирование норадренергических, дофаминергических и серотонинергических препаратов с целью их применения в качестве патогенетической терапии РС [14—16].

Среди нейротрансмиттеров, участвующих в регуляции нейроиммунного взаимодействия, дофамин является наиболее изученным. Модулирующий эффект дофамина на функции Th17-клеток при РС на культуре МНКПК уже исследовался [3]. Результаты настоящего исследования в целом согласуются с ранее полученными данными. Важно, что дофамин способен подавлять продукцию провоспалительных цитокинов МНКПК больных РС, находящихся как в стадии клинической ремиссии, так и в стадии обострения (рис. 1). Кроме того, было установлено ингибирующее влияние дофамина на продукцию ИЛ-17 и ИФН-γ выделенными CD4+ T-клетками больных РС в стадии клинической ремиссии и здоровых доноров, что также подтверждает противовоспалительный эффект дофамина при РС (см. рис. 1).

Следует отметить, что используемая в исследовании концентрация дофамина in vitro (105 М) является относительно высокой и не соответствует уровню дофамина в периферической крови. Однако в некоторых отделах ЦНС уровень дофамина может достигать 103 М [17]. Кроме того, установленный в настоящем исследовании ингибирующий эффект дофамина на продукцию цитокинов как МНКПК, так и CD4+ T-клетками не сопровождался угнетением клеточной пролиферации. Рецепторы, опосредующие влияние дофамина на Th17-клетки, нуждаются в уточнении. В настоящее время выделяют пять типов рецепторов дофамина (D1—D5-рецепторы), которые подразделяются на две группы: D1-подобные и D2-подобные рецепторы. К D1-подобным рецепторам относятся D1- и D5-рецепторы. Они сопряжены с G-белками семейства Gαs, которые активируют аденилатциклазу и приводят к увеличению уровня внутриклеточного циклического аденозинмонофосфата (цАМФ). Напротив, D2-подобные рецепторы, включающие в себя D2-, D3- и D4-рецепторы, сопряжены с G-белками семейства Gαi и ингибируют аденилатциклазу, снижая уровень цАМФ [18]. Согласно данным литературы, T-хелперы способны экспрессировать все пять типов рецепторов дофамина [1].

В проведенном исследовании не было обнаружено влияния специфического антагониста D1-подобных рецепторов (SCH23390) на ингибирующий эффект дофамина на продукцию ИЛ-17 и ИФН-γ стимулированными МНКПК (рис. 2) или CD4+ T-клетками (см. рис. 3) в группе как больных РС, так и здоровых доноров, что позволяет предположить участие D2-рецепторов дофамина в опосредовании ингибирующего эффекта дофамина. На это также указывает и прямой ингибирующий эффект блокирования D1-рецепторов дофамина на продукцию ИЛ-17 и ИФН-γ МНКПК (см. рис. 2) и CD4+ T-клетками (см. рис. 3). Полученные данные об ингибирующем эффекте антагониста D1-рецепторов дофамина на продукцию провоспалительных цитокинов T-клетками согласуются с результатами других исследований. Так, в работе K. Nakano и соавт. [4] блокада D1-рецепторов дофамина специфическим антагонистом SCH23390 подавляла индуцированный дендритными клетками Th17-иммунный ответ. Схожие результаты были получены при использовании других антагонистов D1-рецепторов дофамина (SKF83566, LE300). Напротив, блокада D2-рецепторов дофамина на дендритных клетках здоровых доноров усиливала индуцированную дендритными клетками продукцию ИЛ-17 CD4+ T-клетками. В экспериментах in vivo введение грызунам SCH23390 предупреждало развитие экспериментального аутоиммунного энцефаломиелита. T-лимфоциты, выделенные из селезенки таких мышей, продуцировали меньшее количество ИЛ-17, чем клетки мышей контрольной группы [4]. В последующих исследованиях было показано, что у грызунов с выключенным D5-рецептром дофамина (относится к D1-подобным рецепторам дофамина) экспериментальный аутоиммунный энцефаломиелит развивается позже и протекает в более мягкой форме по сравнению с контрольной группой [5, 6].

Обнаружение ингибирующего эффекта блокады D1-рецепторов дофамина на способность дендритными клетками индуцировать Th17-иммунный ответ является важным фактом, так как дендритные клетки могут локализоваться в ЦНС, а также мигрировать в глубокие шейные лимфатические узлы и презентировать антигены миелина [19]. В то же время о прямом ингибирующем эффекте блокады D1-рецепторов дофамина на функции Th17-клеток, установленном в настоящем исследовании, ранее не сообщалось.

Молекулярные механизмы, объясняющие эффект активации/блокады рецепторов дофамина на функции Th17-клеток, до конца не ясны. В исследовании Y. Huang и соавт. [20] было установлено, что агонист D2-рецепторов дофамина подавляет экспрессию фактора транскрипции Th17-клеток (ROR-γt), а также мРНК ИЛ-17 в конканаволин A-стимулированных лимфоцитах. При этом также было обнаружено снижение уровня экспрессии мРНК цАМФ, что подтверждает предположение о роли D2-рецепторов дофамина в модуляции функций Th17-клеток. Эти данные согласуются с результатами проведенного ранее исследования, в котором было обнаружено положительное влияние агониста D2-подобных рецепторов дофамина бромокриптина на течение экспериментального аутоиммунного энцефаломиелита [21]. В то же время в клиническом исследовании бромокриптина при РС не было получено данных о его терапевтической эффективности [22]. Возможно предположить, что лечение дофаминергическими препаратами может быть более эффективно в качестве дополнительной терапии к ПИТРС первой линии (ИФН-β или глатирамера ацетат) [15]. В нескольких исследованиях было показано, что продукция катехоламинов стимулированными МНКПК снижена у больных РС, тогда как терапия ИФН-β в течение 6 мес нормализует эндогенную выработку катехоламинов [23, 24]. Вероятно, дальнейшие клинические исследования позволят уточнить значение дофаминергической терапии при РС.

Исследование выполнено за счет гранта Российского научного фонда (проект №19-75-00075)

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Levite M, Marino F, Cosentino M. Dopamine, T cells and multiple sclerosis (MS). J Neural Transm (Vienna). 2017;124(5):525-542.  https://doi.org/10.1007/s00702-016-1640-4
  2. Kawano M, Takagi R, Saika K, et al. Dopamine regulates cytokine secretion during innate and adaptive immune responses. Int Immunol. 2018;30(12):591-606.  https://doi.org/10.1093/intimm/dxy057
  3. Melnikov M, Rogovskii V, Boyko A, Pashenkov M. Dopaminergic Therapeutics in Multiple Sclerosis: Focus on Th17-Cell Functions. J Neuroimmune Pharmacol. 2020;15(1):37-47.  https://doi.org/10.1007/s11481-019-09852-3
  4. Nakano K, Higashi T, Hashimoto K, et al. Antagonizing dopamine D1-like receptor inhibits Th17 cell differentiation: preventive and therapeutic effects on experimental autoimmune encephalomyelitis. Biochem Biophys Res Commun. 2008;373(2):286-291.  https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2008.06.012
  5. Prado C, Contreras F, González H, et al. Stimulation of dopamine receptor D5 expressed on DCs potentiates Th17-mediated immunity. J Immunol. 2012;188(7):3062-3070. https://doi.org/10.4049/jimmunol.1103096
  6. Prado C, Gaiazzi M, González H, et al. Dopaminergic Stimulation of Myeloid Antigen-Presenting Cells Attenuates Signal Transducer and Activator of Transcription 3-Activation Favouring the Development of Experimental Autoimmune Encephalomyelitis. Front Immunol. 2018;9:571.  https://doi.org/10.3389/fimmu.2018.00571
  7. Thompson AJ, Banwell BL, Barkhof F, et al. Diagnosis of multiple sclerosis: 2017 revisions of the McDonald criteria. Lancet Neurol. 2018;17(2):162-173.  https://doi.org/10.1016/S1474-4422(17)30470-2
  8. Kurtzke, J.F. Rating neurologyc impairment in multiple sclerosis: an expanded disability status scale (EDSS). Neurology. 1983;33:1444-1452 
  9. Boyko A, Melnikov M. Prevalence and Incidence of Multiple Sclerosis in Russian Federation: 30 Years of Studies. Brain Sci. 2020;10(5):305.  https://doi.org/10.3390/brainsci10050305
  10. Moser T, Akgün K, Proschmann U, et al. The role of TH17 cells in multiple sclerosis: Therapeutic implications. Autoimmun Rev. 2020;19(10):102647. https://doi.org/10.1016/j.autrev.2020.102647
  11. Yu YJ, Watts RJ. Developing therapeutic antibodies for neurodegenerative disease. Neurotherapeutics. 2013;10(3):459-472.  https://doi.org/10.1007/s13311-013-0187-4
  12. Кожиева М.Х., Мельников М.В., Роговский В.С. и др. Кишечная микробиота человека и рассеянный склероз. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2017;117(10-2):11-19.  https://doi.org/10.17116/jnevro201711710211-19
  13. Boziki MK, Kesidou E, Theotokis P, et al. Microbiome in Multiple Sclerosis; Where Are We, What We Know and Do Not Know. Brain Sci. 2020;10(4):234.  https://doi.org/10.3390/brainsci10040234
  14. Cosentino M, Marino F. Adrenergic and dopaminergic modulation of immunity in multiple sclerosis: teaching old drugs new tricks? J Neuroimmune Pharmacol. 2013;8(1):163-179.  https://doi.org/10.1007/s11481-012-9410-z
  15. Marino F, Cosentino M. Multiple sclerosis: Repurposing dopaminergic drugs for MS — the evidence mounts. Nat Rev Neurol. 2016;12(4):191-192.  https://doi.org/10.1038/nrneurol.2016.33
  16. Melnikov M, Sviridova A, Rogovskii V, et al. Serotoninergic system targeting in multiple sclerosis: the prospective for pathogenetic therapy. Mult Scler Relat Disord. 2021;51:102888. https://doi.org/10.1016/j.msard.2021.102888
  17. Matt SM, Gaskill PJ. Where Is Dopamine and how do Immune Cells See it?: Dopamine-Mediated Immune Cell Function in Health and Disease. J Neuroimmune Pharmacol. 2020;15(1):114-164.  https://doi.org/10.1007/s11481-019-09851-4
  18. Vallone D, Picetti R, Borrelli E. Structure and function of dopamine receptors. Neurosci Biobehav Rev. 2000;24(1):125-132.  https://doi.org/10.1016/s0149-7634(99)00063-9
  19. Мельников М.В., Пащенков М.В., Бойко А.Н. Дендритные клетки при рассеянном склерозе. Журнал неврологии и психиатрии им. С. С. Корсакова. 2017;117(2):22-30.  https://doi.org/10.17116/jnevro20171172222-30
  20. Huang Y, Chen CC, Wang TT, et al. Dopamine receptors modulate T lymphocytes via inhibition of cAMP-CREB signaling pathway. Neuro Endocrinol Lett. 2016;37(7):491-500. 
  21. Dijkstra CD, van der Voort ER, De Groot CJ, et al. Therapeutic effect of the D2-dopamine agonist bromocriptine on acute and relapsing experimental allergic encephalomyelitis. Psychoneuroendocrinology. 1994;19(2):135-142.  https://doi.org/10.1016/0306-4530(94)90003-5
  22. Bissay V, De Klippel N, Herroelen L, et al. Bromocriptine therapy in multiple sclerosis: an open label pilot study. Clin Neuropharmacol. 1994;17(5):473-476.  https://doi.org/10.1097/00002826-199410000-00011
  23. Cosentino M, Zaffaroni M, Ferrari M, et al. Interferon-gamma and interferon-beta affect endogenous catecholamines in human peripheral blood mononuclear cells: implications for multiple sclerosis. J Neuroimmunol. 2005;162(1-2):112-121.  https://doi.org/10.1016/j.jneuroim.2005.01.019
  24. Zaffaroni M, Marino F, Bombelli R, et al. Therapy with interferon-beta modulates endogenous catecholamines in lymphocytes of patients with multiple sclerosis. Exp Neurol. 2008;214(2):315-321.  https://doi.org/10.1016/j.expneurol.2008.08.015

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.