Сорокина Е.В.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова»;
Академия постдипломного образования ФГБУ «Федеральный научно-клинический центр специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий Федерального медико-биологического агентства»

Владимирова Е.В.

ФГБУ «Академия постдипломного образования «Федеральный научно-клинический центр специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий Федерального медико-биологического агентства»

Ахматова Н.К.

ФГБНУ «Научно-исследовательский институт вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова»;
Медицинский институт Пензенского государственного университета

Маркова Ю.А.

Академия постдипломного образования ФГБОУ «Федеральный научно-клинический центр специализированных видов медицинской помощи и медицинских технологий» ФМБА России

Митрофанова Н.Н.

Медицинский институт Пензенского государственного университета

Головинов А.И.

Филиал №8 ФГБУ «Главный военный клинический госпиталь им. Н.Н. Бурденко» Минобороны России

Липоидный некробиоз. Поиск возможностей управления иммунным ответом

Авторы:

Сорокина Е.В., Владимирова Е.В., Ахматова Н.К., Маркова Ю.А., Митрофанова Н.Н., Головинов А.И.

Подробнее об авторах

Прочитано: 10772 раза


Как цитировать:

Сорокина Е.В., Владимирова Е.В., Ахматова Н.К., Маркова Ю.А., Митрофанова Н.Н., Головинов А.И. Липоидный некробиоз. Поиск возможностей управления иммунным ответом. Клиническая дерматология и венерология. 2022;21(1):23‑28.
Sorokina EV, Vladimirova EV, Akhmatova NK, Markova YuA, Mitrofanova NN, Golovinov AI. Necrobiosis lipoidica. Finding ways to manage the immune response. Russian Journal of Clinical Dermatology and Venereology. 2022;21(1):23‑28. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/klinderma20222101123

Липоидный некробиоз — ЛН (синонимы: necrobiosis lipoidica, кожный дислипоидоз, некробиоз липоидный диабетический, болезнь Оппенгейма—Урбаха) — редкое хроническое воспалительное гранулематозное заболевание кожи, связанное с дегенерацией кожной соединительной ткани, часто ассоциированное с нарушением толерантности к глюкозе и сахарным диабетом.

Первое название дерматоза «атрофический диабетический дерматит» предложено в 1929 г. M. Oppenheim и переименовано в «липоидный диабетический некробиоз» E. Urbach в 1932 г. Первые пациенты с ЛН без ассоциации с сахарным диабетом описаны в 1935 г. Goldsmith.

Термин «липоид» происходит от депозитов липоида, наблюдаемых в виде зерен или скоплений в свежезамороженных срезах из очагов [1].

ЛН наряду с кольцевидной гранулемой и саркоидозом относится к воспалительным неинфекционным хроническим гранулематозным дерматозам, характеризуемым типичной клинической картиной и гистологическими признаками [2, 3]. Дерматоскопия при гранулематозных дерматозах часто демонстрирует бесструктурные желтоватые или оранжево-желтые (цвета яблочного желе) области, соответствующие дермальным гранулемам. Выявляются сосудистые структуры (сетчатые или радиально расходящиеся). Гистологические признаки включают локальные поверхностные и/или глубокие интенсивные дермальные инфильтраты (включающие лимфоциты) [4].

Считается, что более чем у 50% пациентов с ЛН есть сопутствующий диабет. Вероятно, микроангиопатия играет важную роль в патогенезе этих двух заболеваний.

Однако ЛН развивается менее чем у 3% всех пациентов с диабетом. Частота ассоциации ЛН с сердечно-сосудистыми факторами риска, такими как артериальная гипертензия и ожирение, в последние годы имеет тенденцию к повышению — до 58% пациентов, с заболеваниями щитовидной железы — до 24% [5]. Отмечены случаи ассоциации ЛН с гаммопатией [6].

Патофизиология заболевания остается неуточненной. Провоцирующим фактором нередко является травматизация, что объясняет излюбленную локализацию очагов в области голеней.

Обнаружение иммунных комплексов на стенках сосудов указывает на иммуннокомплексный васкулит, который наряду с микроангиопатией у больных сахарным диабетом, вероятно, является причиной дегенерации коллагена при ЛН. Иммунологически опосредованная сосудистая патология предложена в качестве основной причины измененного коллагена при ЛН, и эта гипотеза поддерживается наличием иммунных комплексов в стенках сосудов в очагах поражения. В культуре фибробластов из очагов ЛН отмечается снижение синтеза коллагена по сравнению со здоровой кожей.

Известно, что в патогенезе гранулематозных дерматозов, в том числе ЛН, важную роль играют Th1-иммунный ответ, медиированный IFNγ, TNF-α, IL-1, -2, -6 и Th17-иммунный ответ, медиированный IL-17 [2].

Встречаются сообщения о выявлении в очагах ЛН инфильтратов, состоящих из Th17-лимфоцитов [7]. Th17-лимфоциты продуцируют IL-17A и IL-17F — мощный индуктор тканевого воспаления, привлекающий и активирующий гранулоциты и макрофаги, а также IL-22, которые служат эффекторами при аутоиммунном воспалении. У человека дифференцировка Th17 находится под контролем IL-1β, -6 и -23.

Работы [8, 9] указывают на возможную роль TNF-α и IL-17 в патогенезе ЛН. И эти данные согласуются с эффективностью ингибиторов TNF-α в терапии язвенных форм ЛН [10, 11].

Однако учащаются случаи развития гранулематозных воспалительных неинфекционных дерматозов (ЛН, кольцевидная гранулема) в результате проведения биологической терапии (ингибиторы TNF-α, антицитокиновые моноклональные антитела) [12].

Появляются сообщения о развитии гранулематозных дерматозов на фоне применения ингибиторов контрольных точек (checkpoint-ингибиторов (Immune checkpoint inhibitors — ICIs) — (CTLA-4 (cytotoxic T lymphocyte associated protein 4), PD-1 (programmed cell death protein 1), PD-L1 (programmed death ligand 1)) для терапии метастатической меланомы и рака легких [13, 14]. Сигнальные пути цитотоксического T-лимфоцит-ассоциированного протеина-4 (CTLA-4) и рецептора-1 программмированной клеточной гибели (PD-1)/PD лиганд-1 (PD-L1) являются иммунными контрольными точками индуцированной опухолью иммуносупрессии. Эти препараты активируют цитотоксические T-клетки для атаки на опухолевые клетки. За счет дисбаланса иммунной системы эти препараты могут индуцировать аутореактивность, что выражается в развитии нежелательных побочных эффектов. Предполагается, что ICIs блокируют ингибирующий сигнал клеток Th1 CD4+ и впоследствии вызывают активацию и пролиферацию T-клеток, что приводит к агрегации и активации макрофагов и образованию гранулемы.

Частота встречаемости ЛН выше у женщин, чем у мужчин, и у взрослых, чем у детей [15]. Заболевание обычно наблюдается в возрасте 30–40 лет [4].

Клиническая картина ЛН представлена разноцветными (красными, желтыми, коричневыми) бляшками с четкими границами с локализацией преимущественно на передней и латеральной поверхностях голеней, стоп, в области верхних конечностей, туловища, лица, волосистой части головы, крайне редко кожный процесс приобретает генерализованный характер. Начальные проявления представляют собой узелковые или пятнистые высыпания с незначительной инфильтрацией в основании, размером с чечевицу и более, округлых, овальных или полициклических очертаний с относительно четкими границами. Пятнистые и папулезные элементы в результате эволюции и периферического роста сливаются, образуя возвышающиеся над поверхностью кожи бляшки различных очертаний диаметром от 2 см, с четкими границами красновато-бурого или красновато-цианотичного оттенка. Свежие очаги могут быть представлены восковидными бляшками желтого и оранжевого цвета с четкими границами с лоснящейся поверхностью округлой формы или фигурных очертаний, в центральной зоне бляшки эпидермис атрофирован, заметны телеангиэктазии. С эволюцией очагов отмечаются их дальнейший рост и слияние, в центре формируется изъязвление, в процессе заживления которого формируются вдавленные рубцы. В результате репаративных изменений в области очагов поверхность бляшек сглаживается, желтый цвет меняется на бурый. Субъективные ощущения в виде болезненности беспокоят, как правило, при изъязвлении бляшек. Размер очагов постепенно увеличивается в течение нескольких месяцев и лет. Спонтанная ремиссия отмечается спустя 8–12 лет у 17% больных [16].

Дифференциальный диагноз ЛН проводят, прежде всего, с саркоидозом и кольцевидной гранулемой, которая нередко сопутствует ЛН.

Патогистологическая картина демонстрирует в дерме, особенно в глубоких участках, очаги дезорганизации, беспорядочного расположения и дегенерации коллагеновых пучков без четких границ, некробиоз соединительной ткани. Участки некроза и дегенерации коллагена окружены воспалительным инфильтратом из мононуклеаров, гранулемоподобными скоплениями эпителиоидных клеток и гигантских многоядерных клеток инородных тел. Эпидермис часто атрофичен, могут быть участки изъязвления. Желтый цвет бляшкам придают ксантомные клетки, нагруженные липидами. В мелких сосудах средней и нижней дермы отмечаются явления продуктивного васкулита, иногда тромбоваскулита. Отложение полисахаридов в стенках сосудов (положительная ШИК-реакция). Иммунофлюоресцентное исследование выявляет C3-компонент комплемента, фибриноген, депозиты IgM и IgA вокруг кровеносных сосудов дермы.

Терапия ЛН имеет несколько направлений. Препаратами первой линии терапии являются топические кортикостероиды, которые применяются на ранних стадиях, также эффективны глюкокортикоиды в виде интрадермальных введений (триамцинолона ацетонид) в очаги и системной терапии [16]. Показала эффективность комбинированная терапия метилпреднизолоном с внутривенным введением иммуноглобулина [17]. По данным многочисленных исследований, кортикостероиды можно рассматривать как эффективное терапевтическое средство для лечения ЛН, тем не менее их использование у больных сахарным диабетом остается рискованным с учетом потенциального эффекта глюкокортикоидов в виде дестабилизации контроля сахарного диабета.

Другое направление терапии включает снижение фибринолиза, агрегации тромбоцитов и синтеза тромбоксана A2 с целью уменьшения микроангиопатии и сосудистого тромбоза в очагах. Рекомендуемые дозы пентоксифиллина составляют по 400 мг 3 раза в день от 6 мес [18]. Пентоксифиллин улучшает кровообращение, уменьшая вязкость крови и повышая мобильность эритроцитов, потенциально увеличивая оксигенацию тканей [19]. Пентоксифиллин обладает также противовоспалительными свойствами, в том числе снижает хемотаксис нейтрофилов и угнетает их функцию, а также ингибирует TNF-α [20]. Назначение комбинации ацетилсалициловой кислоты и дипиридамола показало хорошую эффективность в отдельных исследованиях, однако некоторыми авторами отмечен нежелательный эффект низких доз ацетилсалициловой кислоты в виде снижения кровотока в центральных зонах очагов по результатам лазерной доплерографии.

Niacinamide в дозе 500 мг 3 раза в день с успехом применялся в терапии ЛН, ингибируя релизинг лимфокинов и вызывая снижение миграции макрофагов.

Системное назначение циклоспорина показало хороший эффект в случаях тяжелого течения ЛН, сопровождавшегося развитием язвенных поражений. Другие виды терапии ЛН включают топический гранулоцитарно-макрофагальный колониестимулирующий фактор (GM-CSF), препараты коллагена, PUVA [21], UVA1-фототерапию [22], микофенолата мофетил (500 мг 2 раза в день) [23], талидомид [24], ингибитор TNF-α (этанерцепт), анти-IL‐12/IL‐23-антитела (устекинумаб) [25, 26]. Применение ингибиторов TNF-α (этанерцепт/инфликсимаб) показало хорошую эффективность при как системном, так и внутриочаговом введении, однако схемы назначения этих препаратов при ЛН пока не разработаны [26, 27]. С другой стороны, появляются сообщения о развитии ЛН на фоне терапии ингибиторами TNF-α [28], хотя, как было указано выше, известны данные о роли TNF-α в развитии ЛН.

Определенный эффект оказывало применение топического такролимуса [29–31]. Сеансы гипербарической оксигенации приводили к очищению язвенных дефектов. В отсутствие эффективности терапевтических мероприятий при наличии язвенных дефектов показана трансплантация кожи.

Таким образом, к настоящему времени точно охарактеризованными являются клиническая картина и патоморфология кожи при липоидном некробиозе, в то время как этиопатогенез нуждается в уточнении, а поиск терапевтических тактик продолжается, поскольку данные литературы о клинической эффективности различных методов терапии противоречивы или свидетельствуют о недостаточном количестве наблюдений.

Возвращаясь к ассоциации ЛН с аутоиммунными расстройствами (например, инсулинзависимый сахарный диабет) и высоким уровнем активности естественных аутоантител [32], следует отметить полученный в недавних исследованиях терапевтический эффект в результате нейтрализации провоспалительных цитокинов (например, применения ингибиторов TNF-α) [25, 31]. Взаимосвязь IL-17 с аутоиммунными заболеваниями и идиопатическими гранулематозными расстройствами, такими как саркоидоз и синдром Черджа—Стросс (Churg—Strauss syndrome), уже не вызывает сомнений и нашла подтверждение в ряде исследований [33, 34]. Аутоиммунитет обычно возникает, когда нарушаются барьеры центральной или периферической толерантности, что позволяет активировать аутореактивные T-клетки. Иммунологическая толерантность к аутоантигену имеет важное значение для предотвращения аутоиммунных реакций и аутоиммунных заболеваний. В периферических органах толерантность усиливается различными механизмами, включая популяцию Tregs, которые активно подавляют функцию аутореактивных T-клеток. Foxp3, член транскрипционного фактора семейства forkhead, необходим и достаточен для их развития и функционирования. Tregs в настоящее время изучают на предмет их роли в патогенезе заболеваний человека, включая гранулематозные расстройства.

Удаление аутореактивных клонов при экспансии T- и B-клеток, а также индукция анергии периферических лимфоцитов, реактивных к собственным тканям, рассматриваются как главный механизм формирования периферической толерантности. Вместе с тем исключение сопутствующих нарушений в организме также достигается путем иммунной супрессии клеток с помощью популяции регуляторных T-лимфоцитов (TREGs).

При незначительном воспалении как Foxp3+ натуральные Tregs, так и Foxp3-IL-10-Tregs ингибируют пролиферацию CD4+T-клеток через IL-10-независимые, контактно-клеточные механизмы. Аналогичные механизмы могут контролировать иммунный ответ к собственным антигенам и аутоиммунную патологию, связанную с низким уровнем воспаления. В случае возникновения сильного воспаления с активацией АПК, эффекторных молекул, таких как IL-10 и TGF-β, секретированных Tregs, необходим контроль CD4+T-клеточного ответа.

Роль толерогенных Tregs и ДК состоит в следующем: 1) предотвращение гиперергического воспаления и массивной деструкции тканей; 2) завершение иммунного ответа по мере снижения чужеродных атигенов; 3) предотвращение аутоиммунного ответа; 4) при многих инфекциях — предотвращение полной элиминации возбудителя для поддержания T-клеток памяти.

Натуральные Tregs сдерживают развитие воспалительной иммунной патологии и аутоиммунных заболеваний через их способность управлять численностью T-клеток in vivo и манипуляции цитокинами. Специфические механизмы, используемые N-Tregs для их супрессирующей функции, могут запустить контактно-клеточные механизмы с еще неидентифицированной молекулярной структурой, экспрессию CTLA4, цитокинов, включая IL-10 и TGF-β или, как было установлено позднее, indoleamine 2,3-dioxygenase (IDO). Некоторые механизмы, посредством которых N-Tregs могут ингибировать аутореактивные иммунные механизмы или воспалительные реакции, направлены на ограничение иммунного ответа на патогены с целью предотвращения развития иммунной патологии.

Дифференцировка Th17 находится под контролем IL-1β, -6 и-23 [7–9]. В ряде исследований в очагах ЛН обнаружены Th17-клетки [7, 8, 35]. Вероятно, поэтому применение ингибиторов IL-12/IL-23 дает эффект при ЛН. Анти-TNF-агенты, в частности, эффективны при лечении гранулематозной болезни и успешно используются в качестве монотерапии при лечении язвенной формы липоидного некробиоза [13, 29, 37]. Мишенью применения ингибиторов IL-12/IL-23 при ЛН является нацеливание на Th1-путь для ограничения образования гранулемы [18]. Возможный терапевтический эффект ингибиторов IL-12 связан, вероятно, с его способностью нацеливаться на Th1-путь посредством ингибирования IL-12. Th1-клетки, которым требуется IL-12, взаимодействуют с макрофагами посредством CD40-CD40L-пути, что приводит к секреции IFNγ. IFNγ связывается с рецепторами макрофагов, активируя их и способствуя синтезу TNF, что приводит к образованию гранулемы. Обнаружение в очагах липоидного некробиоза Th17-клеток, вероятно, объясняет эффективность ингибиторов IL-23 (Th17-клетками) [36].

С одной стороны, существует гипотеза, что IFNγ-продуцирующие Th1-лимфоциты принимают участие в активации макрофагов и последующем воспалении и деструкции ткани на примере кольцевидной гранулемы среди гранулематозных дерматозов [37]. С другой стороны, существуют сообщения, в которых исследователи делают акцент на превалирование в очагах ЛН Th17-лимфоцитов (и синтезируемых ими IL-17 и IL-22) и макрофагов CD163+ на фоне отсутствия регуляторных T-клеток (Tregs).

Таким образом, исследования в направлении поиска иммунологических мишеней для терапии ЛН продолжаются. При установлении диагноза ЛН важно учитывать ассоциированные с дерматозом системные заболевания. Патогенез ЛН во многом до конца не изучен, тем не менее понимание иммуногенеза заболевания расширено на основе наблюдений за липоидным некробиозом у пациентов, проходящих иммуномодулирующую терапию, и лиц с альтерацией иммунного ответа. Это привело к новым терапевтическим подходам, некоторые из которых (например, ингибиторы провоспалительных цитокинов) дали благоприятные результаты. Однако с учетом того, что имеющиеся данные неубедительны и что ни один из применяемых агентов не был одобрен по данному показанию, каждый вариант лечения должен быть подвергнут критическому пересмотру в каждом случае. Для патогенетического обоснования применяемой терапии необходимы дальнейшее проведение рандомизированных исследований и систематизация полученных данных.

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Литература / References:

  1. Tronnier M, Mitteldorf C. Histologic features of granulomatous skin diseases. Part 1: Non‐infectious granulomatous disorders. J Dtsch Dermatol Ges. 2015;13:211-216.  https://doi.org/10.1111/ddg.12610
  2. Imadojemu S, Rosenbach M. Advances in Inflammatory Granulomatous Skin Diseases. Dermatol Clin. 2019;37(1):49-64.  https://doi.org/10.1016/j.det.2018.08.001
  3. Harb JN, George EV, Walker A, Schoch JJ. Concomitant granuloma annulare and necrobiosis lipoidica: do they have a related pathogenesis? Clin Exp Dermatol. 2019;44(6):674-676.  https://doi.org/10.1111/ced.13844
  4. Schmitt A, Volz A. Non-infectious granulomatous dermatoses. J Dtsch Dermatol Ges. 2019;17(5):518-533.  https://doi.org/10.1111/ddg.13848
  5. Hashemi DA, Brown-Joel ZO, Tkachenko E, Nelson CA, Noe MH, Imadojemu S, Vleugels RA, Mostaghimi A, Wanat KA, Rosenbach M. Clinical Features and Comorbidities of Patients With Necrobiosis Lipoidica With or Without Diabetes. JAMA Dermatol. 2019;155(4):455-459.  https://doi.org/10.1001/jamadermatol.2018.5635
  6. Marghoob N, Schmitz S, Marghoob AA, Miller MK, Dacosta N, Siegel DM. Necrobiosis lipoidica in a patient with monoclonal gammopathy of underdetermined significance. Australas J Dermatol. 2019;60(4):346-348.  https://doi.org/10.1111/ajd.13082
  7. Kato M, Oiso N, Itoh T, Sato M, Matsuo K, Nakayama T, Satou T, Kawada A. Necrobiosis lipoidica with infiltration of Th17 cells into vascular lesions. J Dermatol. 2014;41(5):459-461.  https://doi.org/10.1111/1346-8138.12477
  8. Nakamura-Wakatsuki T, Yamamoto T, Palmoplantar pustulosis associated with necrobiosis lipoidica: a possible role of tumor necrosis factor-α and interleukin-17. J Dermatol. 2014;41(5):461-462.  https://doi.org/10.1111/1346-8138.12452
  9. Wakusawa C, Fujimura T, Kambayashi Y, Furudate S, Hashimoto A, Aiba S. Pigmented necrobiosis lipoidica accompanied by insulin-dependent diabetes mellitus induces CD163+ proinflammatory macrophages and interleukin-17-producing cells. Acta Derm Venereol. 2013;93(4):475-476.  https://doi.org/10.2340/00015555-1502
  10. Sand FL, Thomsen SF. Off-label use of TNF-alpha inhibitors in a dermatological university department: retrospective evaluation of 118 patients. Dermatol Ther. 2015;28(3):158-165.  https://doi.org/10.1111/dth.12222
  11. Hu SW, Bevona C, Winterfield L, Qureshi AA, Li VW. Treatment of refractory ulcerative necrobiosis lipoidica diabeticorum with infliximab: report of a case. Arch Dermatol. 2009;145(4):437-439.  https://doi.org/10.1001/archdermatol.2009.6
  12. Garcovich S, De Simone C, Genovese G, Berti E, Cugno M, Marzano AV Paradoxical Skin Reactions to Biologics in Patients With Rheumatologic Disorders. Front Pharmacol. 2019;10:282. eCollection 2019. https://doi.org/10.3389/fphar.2019.00282
  13. Cornejo CM, Haun P, English J 3rd, Rosenbach M. Immune checkpoint inhibitors and the development of granulomatous reactions. J Am Acad Dermatol. 2018. pii: S0190-9622(18)32355-7.  https://doi.org/10.1016/j.jaad.2018.07.051
  14. Wu J, Kwong BY, Martires KJ, Rieger KE, Chung WH, Iyer GV, Lacouture ME. Granuloma annulare associated with immune checkpoint inhibitors. J Eur Acad Dermatol Venereol. 2018;32(4):124-126.  https://doi.org/10.1111/jdv.14617
  15. Özkur E, Hasçiçek SÖ, Altunay İK. Atypical presentation of necrobiosis lipoidica in a pediatric patient. Pediatr Dermatol. 2019;36(1):31-33.  https://doi.org/10.1111/pde.13716
  16. Peckruhn M, Tittelbach J, Elsner P. Update: treatment of necrobiosis lipoidica. J Dtsch Dermatol Ges. 2017;15:151-157.  https://doi.org/10.1111/ddg.13186
  17. Batchelor JM, Todd PM. Treatment of ulcerated necrobiosis lipoidica with intravenous immunoglobulin and methylprednisolone. J Drugs Dermatol. 2012;11:256-259. 
  18. Basaria S, Braga-Basaria M. Necrobiosis lipoidica diabeticorum: response to pentoxiphylline. J Endocrinol Invest. 2003;26:1037-1040.
  19. Chopra I, Roberts M. Tetracycline antibiotics: Mode of action, applications, molecular biology, and epidemiology of bacterial resistance. Microbiol Mol Biol Rev. 2001;65(2):232-260. 
  20. Alavi A, Sibbald RG, Phillips TJ, Miller OF, Margolis DJ, Marston W, Woo K, Romanelli M. What’s new: Management of venous leg ulcers: Treating venous leg ulcers. J Am Acad of Dermatol. 2016;74:643-664. 
  21. Narbutt J, Torzecka JD, Sysa-Jedrzejowska A, Zalewska A. Long-term results of topical PUVA in necrobiosis lipoidica. Clin Exp Dermatol. 2006; 31(1):65-67.  https://doi.org/10.1111/j.1365-2230.2005.01962.x
  22. Beattie PE, Dawe RS, Ibbotson SH, Ferguson J. UVA1 phototherapy for treatment of necrobiosis lipoidica. Clin Exp Dermatol. 2006;31(2):235-238.  https://doi.org/10.1111/j.1365-2230.2005.02059.x
  23. Reinhard G, Lohmann F, Uerlich M, Bauer R, Bieber T. Successful treatment of ulcerated necrobiosis lipoidica with mycophenolate mofetil. Acta Derm Venereol. 2000;80(4):312-313.  https://doi.org/10.1080/000155500750012315
  24. Kukreia T, Petersen J. Thalidomide for the treatment of refractory necrobiosis lipoidica. Arch Dermatol. 2006;142:20-22.  https://doi.org/10.1001/archderm.142.1.20
  25. Suárez-Amor O1, Pérez-Bustillo A, Ruiz-González I, Rodríguez-Prieto MA. Necrobiosis lipoidica therapy with biologicals: an ulcerated case responding to etanercept and a review of the literature. Dermatology. 2010; 221(2):117-121.  https://doi.org/10.1159/000314694
  26. Fertitta L, Vignon-Pennamen MD, Frazier A, Guibal F, Caumes E, Bagot M, Bouaziz JD, Frumholtz L. Necrobiosis lipoidica with bone involvement successfully treated with infliximab. Rheumatology (Oxford). 2019;58(9):1702-1703. https://doi.org/10.1093/rheumatology/kez055
  27. Hassoun LA, Sivamani RK, Sharon VR et al. Ustekinumab to target granulomatous dermatitis in recalcitrant ulcerative necrobiosis lipoidica: Case report and proposed mechanism. Dermatol Online J. 2017;23(7):13030/qt3k32k916.
  28. Chung CG, Rosengrant A1, Helm KF, Shupp DL. Necrobiosis lipoidica occurring in a patient with rheumatoid arthritis on concurrent tumor necrosis factor-α inhibitor therapy. Int J Dermatol. 2015;54(11):1294-1296. https://doi.org/10.1111/ijd.12309
  29. Ginocchio L, Draghi L, Darvishian F et al. Refractory ulcerated necrobiosis lipoidica: Closure of a difficult wound with topical tacrolimus. Adv Skin Wound Care. 2017;30:469-472.  https://doi.org/10.1097/01.ASW.0000521867.98577.a5
  30. Barth D, Harth W, Treudler R, Simon JC. Topical tacrolimus in necrobiosis lipoidica. Hautarzt. 2011;62:459-462. 
  31. Patsatsi A, Kyriakou A, Sotiriadis D. Necrobiosis lipoidica: early diagnosis and treatment with tacrolimus. Case Rep Dermatol. 2011;3:89-93. 
  32. Rashtak S, Pittelkow MR. Skin involvement in systemic autoimmune diseases. Curr Dir Autoimmun. 2008;10:344-358. 
  33. Ten Berge B, Paats MS, Bergen IM, van den Blink B, Hoogsteden HC, Lambrecht BN, et al. Increased IL-17A expression in granulomas and in circulating memory T cells in sarcoidosis. Rheumatology. 2012;51:37-46. 
  34. Saito H, Tsurikisawa N, Tsuburai T, Oshikata C, Akiyama K. The proportion of regulatory T cells in the peripheral blood reflects the relapse or remission status of patients with Churg-Strauss syndrome. Int Arch Allergy Immunol. 2011;155(1):46-52. 
  35. Alunno A, Carubbi F, Cafaro G, et al. Targeting the IL-23/IL-17 axis for the treatment of psoriasis and psoriatic arthritis. Expert Opin Biol Ther. 2015; 15:1727-1737.
  36. Pourang A, Sivamani RK. Treatment-resistant ulcerative necrobiosis lipoidica in a diabetic patient responsive to ustekinumab. Dermatol Online J. 2019; 25(8):13030/qt2q05z4rw.
  37. Piette EW, Rosenbach M. Granuloma annulare: Pathogenesis, disease associations and triggers, and therapeutic options. J Am Acad Dermatol. 2016; 75:467-479.  https://doi.org/10.1016/j.jaad.2015.03.055

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.