Введение
Постепенная потеря костной массы повышает риск развития патологических переломов костей, то есть переломов при физиологической нагрузке на них. Клинически выделяют две стадии снижения минеральной плотности костной ткани (МПК) — остеопения и остеопороз [1, 2]. Остеопороз может быть сенильным (у пожилых людей), крайне редко ювенильным (у детей и подростков) и постменопаузальным (у женщин в постменопаузе) [3]. Однако в настоящее время все большую распространенность приобретает мнение, что сенильный остеопороз является следствием постменопаузального, тогда как у пожилых мужчин заболевание носит идиопатический характер.
Ранняя диагностика остеопороза зачастую бывает затруднена, так как до развития низкоэнергетического перелома, то есть перелома, произошедшего при минимальной травме, он не имеет клинических проявлений. Поэтому первоначально оценивается индивидуальная 10-летняя вероятность низкоэнергетического перелома с использованием алгоритма FRAX (Fracture Risk Assessment Tool). Данный алгоритм оценивает риск патологических (остеопоротических) переломов на основании эпидемиологических данных по переломам в регионе проживания, возраста, индекса массы тела (ИМТ), пола, предшествующих переломов, семейного анамнеза, курения, приема глюкокортикостероидов (ГКС), наличия ревматоидного артрита или вторичного остеопороза, потребления алкоголя и ранее измеренной МПК [3].
Инструментальная диагностика остеопороза и оценка динамики показателей МПК при ведении пациентов проводится с использованием лучевых методов. Стандартом является двухэнергетическая рентгенографическая абсорбциометрия (ДРА) [3, 4]. Этот метод позволяет оценить МПК в наиболее подверженных остеопоротическим переломам местах — шейке бедра и позвонках поясничного отдела. Кроме того, можно использовать одноэнергетическую рентгенографическую абсорбциометрию, компьютерную томографию и магнитно-резонансную микроскопию. Кроме последнего, все методы связаны с воздействием на пациента мощного рентгеновского облучения, что существенно ограничивает частоту их использования при ведении пациентов с остеопорозом и тем более при ранней диагностике снижения МПК. В качестве скринингового метода возможно применение количественной ультразвуковой сонометрии (КУС). Однако ее низкая проникающая способность не позволяет оценить МПК там, где это более всего необходимо, поэтому КУС не может заменить ДРА при ведении пациентов с остеопорозом или при плановом обследовании пациентов из групп риска [4].
Помимо лучевых методов при оценке метаболизма костной ткани используются исследования концентраций маркеров костного ремоделирования в сыворотке крови или моче. Их делят на две группы: маркеры костеобразования и маркеры костной резорбции. К первой группе относятся костный изофермент щелочной фосфатазы (остаза), остеокальцин и P1NP (N-концевой проколлаген 1-го типа). Пиридинолин и дезоксипиридинолин, а также C- и N-концевые телопептиды коллагена 1-го типа представляют собой маркеры костной резорбции [3].
Существенное влияние на метаболизм костной ткани оказывают гормоны — паратиреоидный гормон [5], кальцитонин [6], эстрогены [7] и ГКС [8]. Пара «кальцитонин/паратгормон» регулирует абсорбцию кальция в кишечнике, его реабсорбцию в почках, а также активность остеобластов и остеокластов, тем самым влияя на поступление кальция в костную ткань [5, 6]. Снижение продукции эстрогенов сопровождается повышенным выведением кальция, что является одной из причин развития постменопаузального остеопороза [9—11]. Кроме того, эстрогены способны воздействовать непосредственно на костную ткань: они стимулируют пролиферацию остеобластов и тормозят дифференцировку остеокластов [12, 13]. ГКС, наоборот, усиливают резорбцию костной ткани, повышая активность остеокластов [8, 14]. ГКС также снижают абсорбцию кальция в кишечнике и усиливают экскрецию кальция с мочой [15]. Кроме того, при высоком уровне ГКС усиливается продукция цитокинов, принимающих участие в воспалении и костной резорбции [12, 15]. На функцию гормональных систем, в свою очередь, значительное влияние оказывают факторы образа жизни, например физическая активность. Продуманное питание необходимо, чтобы адекватное количество важных для костного метаболизма пищевых веществ поступало в организм.
Гиподинамия
Одним из основных факторов риска снижения МПК является гиподинамия [16, 17]. В результате ее широкой распространенности остеопороз сегодня часто встречается не только у пожилых людей и женщин в постменопаузе, но и среди молодых людей.
Регулярные физические нагрузки стимулируют костеобразование и являются неотъемлемой частью рекомендаций по профилактике остеопороза [18]. Помимо самого факта упражнений уровень МПК зависит от их вида. Так, у подростков и взрослых, занимающихся бегом, ездой на велосипеде и плаванием, часто наблюдалась более низкая МПК по сравнению со спортсменами, занимающимися силовыми видами спорта [19]. Согласно систематическому обзору 2012 г., наиболее полезными для увеличения костной массы также являлись силовые упражнения [20]. В более позднем обзоре, в котором освещалось влияние ежедневных прыжковых упражнений, йоги, ходьбы, силовых упражнений, приседаний и вибрационных нагрузок, отмечено, что силовые нагрузки оказывали наибольшее положительное влияние на МПК [21].
В ряде исследований проиллюстрирована эффективность широкого перечня видов физической активности среди женщин с постменопаузальным остеопорозом: водных упражнений с прыжками [22], тайцзицюаня [23, 24] и пилатеса [25]. Метаанализ 2020 г. показал, что плавание способно повысить МПК у женщин в постменопаузе, однако только если продолжительность занятий составляет 3—6 ч каждый день [26]. При исследовании вибрационного воздействия на МПК в систематическом обзоре 2018 г. в большинстве анализируемых статей обнаружено указание на увеличение МПК у женщин в постменопаузе. Правда, в 6 исследованиях не подтверждена его эффективность. При этом главным образом вибрационная нагрузка у женщин в постменопаузе оказывала влияние на МПК шейки бедра и нижних конечностей, не воздействуя на поясничный отдел позвоночника, тогда как у детей и подростков вибрационная активность отражалась на костной массе всего скелета, включая верхние конечности [27]. Еще в одном метаанализе, представленном в том же году, получены прямо противоположные результаты. Вибрационная нагрузка признана эффективным способом повышения МПК позвоночника у женщин в постменопаузе, но не шейки бедра, что особенно ярко выражалось при анализе исследований, в которых участвовали женщины до 65 лет в постменопаузе [28].
Несмотря на многочисленные исследования, вид нагрузок, их интенсивность, продолжительность и частота для наиболее эффективной профилактики остеопороза еще должны быть уточнены.
Согласно G.J. Kazakia и соавт., костная деградация, развившаяся в результате отсутствия нагрузок, сохраняется и при возвращении к активному образу жизни [29]. Кроме того, занятия спортом, совмещенные с ограничением питания, могут оказать даже негативное влияние на костную ткань [30].
Качественные характеристики кости, такие как микроархитектура, степень минерализации, целостность коллагена, также подвергаются изменениям при изменении режима физических нагрузок. Так, показано, что жесткость костной ткани, отражающая плотность ткани и состояние костных трабекул (количество, ориентацию, наличие микроповреждений), у детей школьного возраста и младше при умеренных или энергичных занятиях спортом была выше на 1% или 2% соответственно при увеличении продолжительности ежедневных нагрузок на 10 мин в день [31]. В шведском исследовании более высокие МПК и количество трабекул в костной ткани наблюдались у профессиональных футболистов по сравнению с молодыми мужчинами без высоких физических нагрузок [32].
Точный механизм влияния физических нагрузок на костный метаболизм до конца неясен, однако существует ряд гипотез [33]. Основными механическими силами, действующими на кость, являются сокращения прилегающих мышц и сила тяжести тела. Механическое воздействие на кости и суставные ткани является стимулом для формирования и повышения активности остеобластов [9, 34]. В кости механические стимулы воспринимают остеоциты, составляющие до 90% костных клеток [34]. Активированные остеоциты производят сигнальные молекулы, стимулирующие дифференцировку остеобластов [35]. Физическая активность регулирует метаболизм эстрогенов и ГКС [33]. При физических нагрузках снижается выработка воспалительных цитокинов IL-6 и TNF-α, что предотвращает резорбцию кости [36]. В исследовании 2015 г. показано, что механический стресс стимулирует экспрессию микроРНК, которые участвуют в регуляции дифференцировки остеобластов [37]. Кроме того, данные in vitro и in vivo показали, что механическая нагрузка снижает уровень экспрессии гена, кодирующего микроРНК-103а, и активность самой микроРНК-103а, что способствует увеличению транскрипции белка Runx2 — главного фактора транскрипции остеогенеза [38]. Таким образом, препараты на основе микроРНК могут быть рассмотрены в качестве терапевтических средств для профилактики и лечения остеопороза [39].
Гиподинамия является одной из причин ожирения, широко распространенного заболевания в наше время. Влияние ожирения на здоровье костей неоднозначно. С одной стороны, увеличивающаяся масса тела при ожирении способствует большей осевой нагрузке, что приводит к активному костеобразованию благодаря повышенному механическому тонусу, который способствует формированию и активации остеобластов [33]. С другой стороны, ожирение является состоянием хронического воспаления, что обусловливает повышенную продукцию провоспалительных цитокинов. При ожирении увеличивается синтез ГКС, которые стимулируют резорбцию костной ткани, повышая активность остеокластов [40]. И все же, несмотря на двоякое влияние ожирения, в польском исследовании у женщин в постменопаузе с повышенным ИМТ наблюдалась более высокая МПК по сравнению с женщинами с нормальной массой тела [41]. Это также подтверждалось в работе английских авторов, в которой оценивали МПК как женщин, так и мужчин в возрасте от 25 до 75 лет [42]. В другом исследовании отмечено, что низкий ИМТ характеризуется значительно более высоким риском перелома шейки бедра [43]. В недавнем исследовании в Южной Корее выявлено, что у мужчин при достижении ИМТ 25 кг/м2 риск остеопороза переставал уменьшаться по мере увеличения ИМТ, а выходил на плато. У женщин наблюдалась непрекращающаяся линейная зависимость [44]. В метаанализе H. Johansson и соавт. низкий ИМТ у женщин был связан с большим риском переломов всех участков скелета, подверженных остеопоротическим переломам. Однако при перерасчете на МПК картина стала обратной — уже высокий ИМТ был фактором риска. Вероятно, это можно объяснить тем, что человек с большим ИМТ при падении имеет большую кинетическую энергию и, соответственно, большую силу воздействия на скелет [45].
Нутриенты
Органические вещества кости представлены в основном белком коллагеном. Он имеет фибриллярную структуру и образует гибкий каркас кости. Пищевые белки играют важную роль в синтезе коллагена, так как он, как и любой белок, синтезируется из аминокислот, попавших в организм с пищей. Особенно много в коллагене аминокислот глицина и пролина. Помимо структурной функции пищевые аминокислоты триптофан, глутамин и лейцин [46] проявляют сигнальные эффекты: они способны регулировать активность протеасом остеокластов [47]. Кроме того, аминокислоты могут регулировать баланс соматотропина и инсулиноподобного фактора роста 1-го типа, что влияет на метаболизм костной ткани [47]. Инсулиноподобный фактор роста 1-го типа увеличивает уровень остеокальцина и способствует повышению активности остеобластов [48].
Наиболее широко представленный элемент в костной ткани — это кальций. Он образует кристаллы гидроксиапатита, которые составляют основу кости [49]. Снижение уровня кальция в крови ингибирует секрецию кальцитонина [50]. Одновременно с этим увеличивается выработка паратгормона [51]. Всасывание кальция в кишечнике происходит по двум механизмам: ненасыщаемой параклеточной абсорбции путем пассивной диффузии и активной трансцеллюлярной абсорбции. В исследовании 2018 г. аэробные упражнения в сочетании с потреблением 250 мл молока в день способствовали большему увеличению МПК по сравнению с показателями участников групп, которые либо тренировались, либо пили молоко, и с показателями участников контрольной группы [52].
Примерно в равных с кальцием количествах в состав гидроксиапатита входит фосфор. Около 85% фосфора в организме содержится в костях [53]. Баланс фосфатов в крови поддерживается за счет их абсорбции в кишечнике, почечной экскреции, а также накопления и высвобождения из костей и мягких тканей [54]. Недостаток фосфора приводит к нарушению минерализации скелета. В целом метаболизм фосфора очень схож с метаболизмом кальция и регулируется теми же агентами.
Кость — обширный резервуар химических оснований, находящихся в форме щелочных солей кальция. При повышении кислотности щелочные и щелочноземельные элементы (в первую очередь кальций) вымываются из кости для нейтрализации среды. В щелочной среде увеличивается активность остеобластов, тогда как кислая среда, наоборот, усиливает функции остеокластов [55—57]. Таким образом, при понижении pH крови каркас кости может разрушаться [58, 59]. Калий крайне необходим для поддержания кислотно-щелочного равновесия крови, так как является одним из главных щелочных элементов в организме. Его дефицит — существенный фактор риска развития остеопороза [51, 60—62].
Появление активных форм кислорода — это естественный процесс, который происходит даже при нормальном метаболизме. Однако эти субстанции повышают общую кислотность крови и могут усиливать костную резорбцию [63], инициировать апоптоз остеобластов и остеоцитов, а также повышать остеокластогенез [64]. Остеобласты могут продуцировать естественные антиоксиданты, поэтому их гибель усиливает кислотность среды [64, 65].
Другие макро- и микроэлементы также участвуют в метаболизме костной ткани. Магний входит в состав гидроксиапатита, выполняя структурную функцию [66—68]. Низкое потребление магния отрицательно влияет на синтез неорганического каркаса кости, что повышает риск переломов. В метаанализе 2016 г. высокое потребление магния положительно коррелировало с МПК шейки бедра, однако не с МПК поясничного отдела позвоночника [69]. При дефиците цинка наблюдается угнетение активности щелочной фосфатазы, так как этот элемент является ее кофактором [70, 71]. Помимо этого, комплексные соли цинка входят в состав гидроксиапатита [72]. Цинк также снижает активность остеокластов [70]. У пациентов с остеопорозом уровень цинка в крови часто ниже, чем у здоровых людей, что отмечено в метаанализе китайскими авторами [73]. Влияние на метаболизм костей оказывает и фтор. Он снижает растворимость апатита, уменьшая тем самым резорбцию кости [74—76]. Это особенно важно в ротовой полости, где pH внешней среды, контактирующей с эмалью зубов, варьирует в очень широком диапазоне. Фтор из водного раствора в ротовой полости замещает гидроксильную группу в кристаллической решетке гидроксиапатита. Фторапатит существенно менее растворим в кислой среде, что снижает резорбцию эмали [76, 77]. Медь является кофактором лизилоксидазы — фермента, который обеспечивает образование лизиновых поперечных связей в коллагене и эластине. Одновременно медь подавляет костную резорбцию благодаря ее действию в качестве кофактора супероксиддисмутазы, которая способствует обезвреживанию активных форм кислорода [70, 71, 78, 79]. Она также способствует дифференцировке мезенхимальных стволовых клеток в остеобласты, что повышает интенсивность остеосинтеза [79, 80]. В метаанализе 2014 г. низкий уровень меди в крови являлся одним из факторов риска развития остеопороза [73]. В свою очередь, марганец необходим для синтеза мукополисахаридов, он также является кофактором ферментов гликозилтрансферазы и ксилозилтрансферазы, которые способствуют гликозилированию коллагена [71]. Кремний же усиливает синтез коллагена, так как увеличивает активность фермента пролилгидроксилазы, который осуществляет встраивание пролила в полипептидную цепь коллагена [81—83]. Кроме того, он стимулирует дифференцировку остеобластов.
Витамин D (в форме кальцитриола) регулирует метаболизм кальция, усиливает активное всасывание кальция за счет увеличения экспрессии транзиторного рецепторного потенциала ваниллоидного подсемейства шестого кальциевого канала и кальций-связывающего белка кальбиндина-D9k [84]. Помимо этого, кальцитриол сам по себе усиливает минерализацию кости. Он способен стимулировать дифференцировку остеобластов, а также ингибирует остеокластогенез. Витамин D стимулирует выработку кальций-связывающих белков в остеобластах — остеокальцина и остеопонтина [85]. На эндогенную секрецию этого витамина влияют концентрации кальция и фосфора в пище [86]. В испанском исследовании потребление добавок кальция и витамина D в размере 600 мг и 400 МЕ соответственно способствовало увеличению МПК у 31 женщины в постменопаузе [87]. В метаанализе 2016 г. среди людей, употреблявших добавки кальция и витамина D, общий риск переломов был ниже на 15%, а переломов шейки бедра — на 30% [88]. Согласно метаанализу 2020 г., комбинированные добавки кальция и витамина D способствуют увеличению МПК и снижению частоты остеопоротических переломов. Однако такой эффект наблюдался только при дозах витамина D не менее 400 МЕ в день. Употребление молочных продуктов, обогащенных кальцием и витамином D, вызывало схожие эффекты [89].
Однако чрезмерный прием витамина D также несет в себе немалые угрозы. Согласно обзору 2020 г., ежедневные дозы кальциферола выше 4000 МЕ способствуют снижению МПК, а при месячном потреблении свыше 60—100 тыс. МЕ значительно возрастает риск переломов и даже падений [90]. L.A. Burt и соавт. исследовали 311 человек с исходными уровнями витамина D в крови от 30 до 125 нг/мл. Пациенты получали по 400, 4000 или 10 000 МЕ витамина D ежедневно в течение 3 лет. Дозы витамина D в 4000 МЕ или 10 000 МЕ в день приводили к статистически значимому снижению МПК лучевой кости от ее исходных показателей. Прием 400 МЕ/сут, напротив, способствовал наращиванию костной массы. Схожие результаты получены при анализе динамики МПК большеберцовой кости: прием 10 000 МЕ витамина D в день в течение 3 лет приводил к ее снижению [91]. МПК иных костей в работе не оценена, хотя методом исследования выбрана компьютерная томография.
Снижение уровня витамина В12 приводит к накоплению гомоцистеина, высокие концентрации которого повышают риск переломов, возможно за счет ослабления коллагеновых связей [92—95]. Недостаток витамина В6 и фолатов также является причиной повышенного уровня гомоцистеина [94, 95]. Гипергомоцистеинемия также снижает кровоток, поскольку приводит к эндотелиальной дисфункции, что лишает кости питательных веществ, необходимых для восстановления [96]. Гомоцистеин ингибирует лизилоксидазу, что препятствует созреванию коллагена [97]. Кроме того, витамин В12 активирует рост таурин-STAT5-инсулиноподобного фактора роста 1-го типа, который способен контролировать пролиферацию, активность остеобластов и костную массу [98]. В метаанализе шести исследований показано, что высокий уровень гомоцистеина является фактором риска остеопороза у женщин в постменопаузе [99].
Витамин С является модулятором синтеза коллагена, а также кофактором пролил- и лизилгидроксилаз, которые осуществляют посттрансляционные модификации коллагена [100, 101]. Кроме того, дефицит витамина С может приводить к нарушению экспрессии генов, участвующих в созревании и регулировании активности остеобластов, дифференцировке хондроцитов [102, 103]. В то же время в исследовании D. Le Nihouannen и соавт. (2010) выявлено, что одновременное воздействие воспалительных цитокинов и витамина С значительно увеличивало количество и активность остеокластов [104]. Повышенное потребление витамина С положительно связано с МПК в шейке бедра и поясничном отделе позвоночника, согласно метаанализу 2018 г. [105].
Каротиноиды и ретинол оказывают различное влияние на метаболизм костей. Каротиноиды снижают костную резорбцию, так как ингибируют образование остеокластов и остеокластоподобных клеток [106, 107]. β-каротин способен подавлять сигнальный путь NF-κB, приводя к замедлению резорбции [106, 108, 109]. Исследование M. Yamaguchi и S. Uchiyama (2004) иллюстрирует ингибирующее воздействие β-криптоксантина на резорбцию кости. Этот каротиноид повышает содержание кальция в костях, сниженное под действием паратиреоидного гормона [109]. Он также способен усиливать транскрипционную активность в остеобластах и их пролиферацию, что повышает минерализацию кости [110, 111]. С другой стороны, T. Lind и соавт. (2011) показали, что потребление ретинола способствует пролиферации остеокластов [112]. Приведены данные о стимуляции высвобождения лизосомальных ферментов ретинолом [113].
Витамин К участвует в карбоксилировании остеокальцина в остеобластах [114]. Некарбоксилированный остеокальцин не может связываться с гидроксиапатитом и, следовательно, выполнять структурную функцию [115, 116]. Кроме того, он усиливает всасывание кальция в кишечнике [117, 118]. Витамин К2 ингибирует резорбцию костной ткани за счет подавления простагландина Е2 и последующего подавления активности остеокластов [119, 120]. В свою очередь, витамин К1 способен ингибировать остеокластогенез в костном мозге [121, 122]. В метаанализе 2019 г. пероральный прием витамина К способствовал увеличению МПК, но при исключении испытаний с высоким риском систематической ошибки различия в МПК переставали быть статистически значимыми [123].
Повышенное содержание жирных кислот, в том числе полиненасыщенных, в рационе питания влияет на биодоступность кальция, цинка и магния [124], так как эти кислоты способны образовывать нерастворимые мыла с металлами, что делает их недоступными [125, 126]. Однако длинноцепочечные ω-3 полиненасыщенные жирные кислоты — эйкозапентаеновая (ЭПК) и докозагексаеновая (ДГК) — стимулируют всасывание кальция в кишечнике [126—128]. Они также являются предшественниками эйкозаноидов, оказывающих противовоспалительный эффект [129, 130]. Это приводит к ингибированию продукции воспалительных цитокинов IL-1, TNF-α и липополисахарида, повышающих активность остеокластов [131]. Кроме того, ЭПК и ДГК способствуют дифференцировке мезенхимальных стволовых клеток в остеобласты и тем самым повышению скорости образования кости [132]. Эти кислоты способны эндогенно синтезироваться из альфа-линоленовой кислоты (АЛК), однако скорость такого превращения крайне мала [132, 133]. Данные о нормальном содержании представленных веществ в крови [86, 134—140] и рекомендуемые уровни потребление нутриентов [134, 141] представлены в таблице [86, 134—141].
Нормальное содержание в крови нутриентов, влияющих на метаболизм костной ткани, и рекомендуемые уровни потребления этих нутриентов [86, 134—141]
Группа нутриентов | Наименование | Нормальное содержание в крови | Источник | ФП или АУП + ВДУП (если установлен)* | Источник |
Нутриенты | Белок | 65—85 г/л | [86] | 75—114 г/сут для мужчин, 60—90 г/сут для женщин | [134] |
Кальций | 2,12—2,2 ммоль/л | [86] | 1000—2500 мг/сут, 1200—2500 мг/сут для лиц старше 65 лет | [134, 140] | |
Фосфор | 1,45—1,78 ммоль/л | [86] | 700—1600 мг/сут | [134, 140] | |
Калий | 3,5—5,0 ммоль/л | [86] | 3500 мг/сут | [134] | |
Магний | 0,67—0,89 ммоль/л | [86] | 420—800 мг/сут | [134, 140] | |
Цинк | 10,7—22,9 мкмоль/л | [86] | 12—25 мг/сут | [134, 140] | |
Медь | 70—140 мг/дл у мужчин; 80—115 мг/дл у женщин | [86] | 1—3 мг/сут | [134, 140] | |
Марганец | 73—255 нмоль/л | [86] | 2—5 мг/сут | [134, 140] | |
Кремний | 152±9 мкг/л | [86] | 30—50 мг/сут | [134, 140] | |
Витамин В12 | 180—900 нг/мл | [86] | 3—9 мкг/сут | [134, 140] | |
Витамин С | 50—75 мкмоль/л | [135] | 100—900 мг/сут | [134, 140] | |
Витамин А (ретинол) | 1,05—2,07 мкмоль/л | [136] | 900—3000 мкг/сут для мужчин, 800—3000 мкг/сут для женщин | [134, 140] | |
β-каротин | 50—300 пг/дл | [137] | 5—10 мг/сут | [134, 140] | |
Витамин D | 30—100 нг/мл — адекватный уровень 20—30 нг/мл — недостаточность 20> — дефицит | [139] | 15 мкг/сут, 20 мкг/сут для лиц старше 65 лет** | [134] | |
Витамин К | 1,3—1,88 нг/мл | [137] | 120—360 мкг/сут | [134, 140] | |
ω-3 ПНЖК | 20—200 нмоль/мл для АЛК; 8—130 нмоль/мл для ЭПК; 13—75 нмоль/мл для ДГК*** | [138] | 1—3 г/сут | [134] | |
Кислотность | 7,36—7,44 в артериальной крови; 7,26—7,36 в венозной крови | [86] | — | — |
Примечание. * — ФП — физиологическая потребность; АУП — адекватный уровень потребления; ВДУП — верхний допустимый уровень потребления; ** — согласно рекомендациям ЕврАзЭС [140], ВДУП витамина D соответствует ФП в нем 15 мкг/сут, установленной «Нормами физиологических потребностей в энергии и пищевых веществах для различных групп населения Российской Федерации», пересмотренными в 2021 г. [134]. «Нормы» последнего издания не регламентируют ВДУП витамина D. Более подробно ознакомиться с позициями различных ассоциаций относительно ФП и ВДУП витамина D можно в [141]; *** — ω-3 ПНЖК — омега-3 полиненасыщенные жирные кислоты; ЭПК — эйкозапентаеновая кислота; ДГК — докозагексаеновая кислота; АЛК — альфа-линоленовая кислота.
Вредные привычки и другие особенности образа жизни
Помимо диеты и физической активности существуют и другие факторы образа жизни, вносящие свой вклад в риск развития остеопении и остеопороза. Одним из наиболее важных является курение. В метаанализе 2016 г., включающем 14 проспективных когортных исследований, установлено, что у курящих людей перелом шейки бедра встречается в 1,47 раза чаще по сравнению с некурящими [142], особенно сильно МПК снижается у курящих людей с ИМТ <25 кг/м2 [143]. При сравнении курящих и некурящих женщин в исследовании итальянских авторов за 2 года МПК бедренной кости существенно снизилась у курящих, а вероятность остеопоротических переломов позвоночника у них увеличилась на 74% [144]. У некурящих женщин не обнаружены изменения в МПК. В целом во многих исследованиях у курящих людей отмечена более низкая МПК [145—148]. Курение нарушает продукцию паратиреоидного гормона и витамина D [149], более того, подавляет действие эстрогенов [144]. Все это приводит к снижению абсорбции кальция и ускорению его потери, нарушению дифференцировки остеобластов и снижению их активности. Кроме того, S. Ehnert и соавт. показали, что курение способствует повышению продукции провоспалительных цитокинов IL-1β, IL-6 и TNF-α [150].
Механизм влияния алкоголя на МПК слабо изучен. Показано, что алкоголь токсично действует на остеобласты [151] и при хроническом употреблении повышает уровень IL-10 [152]. В южнокорейском исследовании потребление алкоголя было положительно связано с МПК мужчин и женщин [153]. Аналогичная ситуация наблюдалась в исследовании Y. Cho и соавт. [154]. В другом исследовании при умеренном употреблении алкоголя выявлено повышение МПК у женщин в постменопаузе по сравнению с непьющими и сильно пьющими испытуемыми. У участников последних двух групп риск остеопороза был приблизительно в 1,7 раза выше [155]. В метаанализе 2021 г., включающем 38 проспективных когортных исследований, не выявлено повышения риска остеопоротических переломов или развития остеопороза при потреблении алкоголя, хотя оно значительно увеличивает общую частоту переломов из-за повышенной травматизации [156].
Еще одним фактором риска развития остеопороза является недосыпание, в частности бессонница [157]. Недостаток сна вызывает в организме стресс, что провоцирует выработку кортизола, который усиливает резорбцию кости [8]. Кроме того, недостаток сна ассоциируется с повышенным уровнем IL-6 и С-реактивного белка, которые увеличивают активность остеокластов [158].
Заключение
Остеопороз — это заболевание, характеризующееся снижением минеральной плотности костной ткани, при котором существенно возрастает риск переломов костей. Причиной остеопороза может быть гиподинамия в связи с сидячим образом жизни, которого придерживается значительная часть населения. Недостаточная физическая нагрузка может явиться и причиной ожирения, которое оказывает двойственный эффект на костную массу.
Повышает риск развития остеопороза и неадекватное питание, в частности дефицит необходимых для нормального метаболизма костной ткани микронутриентов — кальция, фосфора, магния, калия, цинка, меди, марганца, кремния, витаминов D, K, C, B6, B9, B12, каротиноидов и ω-3 полиненасыщенных жирных кислот. Огромное значение имеет и поступление в организм белка, особенно аминокислот глутамина, лейцина и триптофана. В то же время необходимо помнить о токсическом влиянии на костную ткань избыточного количества витаминов D и A.
Важнейшим элементом профилактики остеопороза является информирование населения, в том числе медицинских работников, об основных факторах риска развития данной патологии. Если о пагубном влиянии курения широко известно и борьба с ним ведется на государственном уровне, то важность здорового сна и регулярной физической активности занимает гораздо меньше пространства в общественном дискурсе.
Составление адекватного рациона — это, пожалуй, более трудная задача не только для человека без медицинского образования, но даже для врача, не специализирующегося в диетологии. В рационе не только должны присутствовать все необходимые микронутриенты в оптимальных количествах, но при этом не должно быть избыточной калорийности. Кроме того, важно помнить о межнутриентных взаимодействиях и присутствии в пище ингибиторов абсорбции многих пищевых веществ. В связи с этим представляется необходимым наблюдение пациента с остеопорозом и даже остеопенией не только эндокринологом, но и диетологом.
Принимая во внимание довольно медленный метаболизм костной ткани, элементы профилактики остеопороза следует соблюдать уже с детства. Сниженная в молодом возрасте минеральная плотность костной ткани с трудом поддается восстановлению с годами.
Что касается скрининга, то следует придерживаться рекомендаций, подготовленных Российской ассоциацией эндокринологов. С развитием и стандартизацией лабораторных методов исследования костного метаболизма и они могут быть введены в практику скрининга. Людям с недостаточной массой тела и выраженной гиподинамией, особенно при наличии еще и большого стажа курения, вероятно, целесообразно проводить двухэнергетическую рентгенографическую абсорбциометрию или как минимум количественную ультразвуковую сонометрию уже в возрасте 35—40 лет независимо от пола для выработки дальнейшей стратегии наблюдения и профилактики развития остеопороза.
Благодарности. Автор выражает глубокую признательность Елизавете Ильиничне Сидоровой за критическую оценку рукописи и рекомендации по ее доработке. Также автор благодарен анонимному рецензенту за ценные замечания.
Источники финансирования. Научно-исследовательская работа по подготовке рукописи проведена за счет средств субсидии на выполнение государственного задания в рамках Программы поисковых научных исследований государственных академий наук на 2022—2024 гг. (тема №0410-2020-0005).
Автор заявляет об отсутствии конфликта интересов.
Профилактическая медицина The Russian Journal of Preventive Medicine
2022, Т. 25, №6, с. 108-116 2022, vol. 25, no 6, pp. 108-116
https://doi.org/10.17116/profmed202225061108 https://doi.org/10.17116/profmed202225061108
Список литературы:
- Lane JM, Russell L, Khan SN. Osteoporosis. Clinical Orthopaedics and Related Research. 2000;(372):139-150. https://doi.org/10.1097/00003086-200003000-00016
- Karaguzel G, Holick MF. Diagnosis and treatment of osteopenia. Reviews in Endocrine and Metabolic Disorders. 2010;11(4):237-251. https://doi.org/10.1007/s11154-010-9154-0
- Мельниченко Г.А., Белая Ж.Е., Рожинская Л.Я., Торопцова Н.В., Алексеева Л.И., Бирюкова Е.В., Гребенникова Т.А., Дзеранова Л.К., Древаль А.В., Загородний Н.В., Ильин А.В., Крюкова И.В., Лесняк О.М., Мамедова Е.О., Никитинская О.А., Пигарова Е.А., Родионова С.С., Скрипникова И.А., Тарбаева Н.В., Фарба Л.Я., Цориев Т.Т., Чернова Т.О., Юренева С.В., Якушевская О.В., Дедов И.И. Федеральные клинические рекомендации по диагностике, лечению и профилактике остеопороза. Проблемы эндокринологии. 2017;63(6):392-426. https://doi.org/10.14341/probl2017636392-426
- Genant HK, Engelke K, Fuerst T, Glüer CC, Grampp S, Harris ST, Jergas M, Lang T, Lu Y, Majumdar S, Mathur A, Takada M. Noninvasive assessment of bone mineral and structure: state of the art. Journal of Bone and Mineral Research. 1996;11(6):707-730. https://doi.org/10.1002/jbmr.5650110602
- Leder BZ. Parathyroid Hormone and Parathyroid Hormone-Related Protein Analogs in Osteoporosis Therapy. Current Osteoporosis Reports. 2017; 15(2):110-119. https://doi.org/10.1007/s11914-017-0353-4
- Naot D, Musson DS, Cornish J. The Activity of Peptides of the Calcitonin Family in Bone. Physiological Reviews. 2019;99(1):781-805. https://doi.org/10.1152/physrev.00066.2017
- Wang C-W, McCauley LK. Osteoporosis and Periodontitis. Current Osteoporosis Reports. 2016;14(6):284-291. https://doi.org/10.1007/s11914-016-0330-3
- Weinstein RS, Jilka RL, Parfitt AM, Manolagas SC. Inhibition of osteoblastogenesis and promotion of apoptosis of osteoblasts and osteocytes by glucocorticoids. Potential mechanisms of their deleterious effects on bone. The Journal of Clinical Investigation. 1998;102(2):274-282. https://doi.org/10.1172/JCI2799
- Lloyd SA, Lang CH, Zhang Y, Paul EM, Laufenberg LJ, Lewis GS, Donahue HJ. Interdependence of Muscle Atrophy and Bone Loss Induced by Mechanical Unloading: MUSCLE ATROPHY AND BONE LOSS DURING UNLOADING. Journal of Bone and Mineral Research. 2014;29(5):1118-1130. https://doi.org/10.1002/jbmr.2113
- Bentz AT, Schneider CM, Westerlind KC. The relationship between physical activity and 2-hydroxyestrone, 16α-hydroxyestrone, and the 2/16 ratio in premenopausal women (United States). Cancer Causes Control. 2005; 16(4):455-461. https://doi.org/10.1007/s10552-004-6256-6
- Sato K, Iemitsu M, Matsutani K, Kurihara T, Hamaoka T, Fujita S. Resistance training restores muscle sex steroid hormone steroidogenesis in older men. FASEB Journal. 2014;28(4):1891-1897. https://doi.org/10.1096/fj.13-245480
- Шалина М.А., Ярмолинская М.И., Абашова Е.И. Влияние гормональной терапии на костную ткань: мифы и реальность. Журнал акушерства и женских болезней. 2018;67(3):83-94. https://doi.org/10.17816/JOWD67383-94
- Srivastava S, Toraldo G, Weitzmann MN, Cenci S, Ross FP, Pacifici R. Estrogen Decreases Osteoclast Formation by Down-regulating Receptor Activator of NF-κB Ligand (RANKL)-induced JNK Activation. Journal of Biological Chemistry. 2001;276(12):8836-8840. https://doi.org/10.1074/jbc.M010764200
- Каратеев Д.Е., Лучихина Е.Л. Глюкокортикостероидный остеопороз: современные подходы к терапии. Эффективная фармакотерапия. Ревматология. Травматология. Ортопедия. 2018;33(3-4):16-25.
- McIlwain HH. Glucocorticoid-induced osteoporosis: pathogenesis, diagnosis, and management. Preventive Medicine. 2003;36(2):243-249. https://doi.org/10.1016/s0091-7435(02)00019-1
- Aguado E, Pascaretti-Grizon F, Goyenvalle E, Audran M, Chappard D. Bone Mass and Bone Quality Are Altered by Hypoactivity in the Chicken. PLoS ONE. 2015;10(1):e0116763. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0116763
- Aguado E, Mabilleau G, Goyenvalle E, Chappard D. Hypodynamia Alters Bone Quality and Trabecular Microarchitecture. Calcified Tissue International. 2017;100(4):332-340. https://doi.org/10.1007/s00223-017-0235-x
- Sinaki M, Pfeifer M, Preisinger E, Itoi E, Rizzoli R, Boonen S, Geusens P, Minne HW. The role of exercise in the treatment of osteoporosis. Current Osteoporosis Reports. 2010;8(3):138-144. https://doi.org/10.1007/s11914-010-0019-y
- Scofield KL, Hecht S. Bone Health in Endurance Athletes: Runners, Cyclists, and Swimmers. Current Sports Medicine Reports. 2012;11(6):328-334. https://doi.org/10.1249/JSR.0b013e3182779193
- Gómez-Cabello A, Ara I, González-Agüero A, Casajús JA, Vicente-Rodríguez G. Effects of training on bone mass in older adults: a systematic review. Sports Medicine. 2012;42(4):301-325. https://doi.org/10.2165/11597670-000000000-00000
- Segev D, Hellerstein D, Dunsky A. Physical Activity-does it Really Increase Bone Density in Postmenopausal Women? A Review of Articles Published Between 2001—2016. Current Aging Science. 2018;11(1):4-9. https://doi.org/10.2174/1874609810666170918170744
- Aboarrage Junior AM, Teixeira CVS, Dos Santos RN, Machado AF, Evangelista AL, Rica RL, Alonso AC, Barroso JA, Serra AJ, Baker JS, Bocalini DS. A High-Intensity Jump-Based Aquatic Exercise Program Improves Bone Mineral Density and Functional Fitness in Postmenopausal Women. Rejuvenation Research. 2018;21(6):535-540. https://doi.org/10.1089/rej.2018.2069
- Wu HY, Wang YR, Wen GW, Tang ZY, Yu YQ, Zhang JR, Liu P, Wu JH. Tai Chi on bone mineral density of postmenopausal osteoporosis: A protocol for systematic review and meta-analysis. Medicine. 2020;99(36):e21928. https://doi.org/10.1097/MD.0000000000021928
- Ferrara PE, Salini S, Maggi L, Foti C, Maccauro G, Ronconi G. Evaluation of quality of life and static balance in postmenopausal osteoporosis women after Tai Chi Chuan practice: an observational randomized case control study. XIX Congresso Nazionale S.I.C.O.O.P. Societa’ Italiana Chirurghi Ortopedici Dell’ospedalita’ Privata Accreditata. Journal of Biological Regulators and Homeostatic Agents. 2019;33(2 suppl 1):163-169.
- Angın E, Erden Z, Can F. The effects of clinical pilates exercises on bone mineral density, physical performance and quality of life of women with postmenopausal osteoporosis. Journal of Back and Musculoskeletal Rehabilitation. 2015;28(4):849-858. https://doi.org/10.3233/BMR-150604
- Su Y, Chen Z, Xie W. Swimming as Treatment for Osteoporosis: A Systematic Review and Meta-analysis. BioMed Research International. 2020;2020: 6210201. https://doi.org/10.1155/2020/6210201
- Marin-Puyalto J, Gomez-Cabello A, Gonzalez-Agüero A, Gomez-Bruton A, Matute-Llorente A, Casajús JA, Vicente-Rodríguez G. Is Vibration Training Good for Your Bones? An Overview of Systematic Reviews. BioMed Research International. 2018;2018:5178284. https://doi.org/10.1155/2018/5178284
- Marín-Cascales E, Alcaraz PE, Ramos-Campo DJ, Martinez-Rodriguez A, Chung LH, Rubio-Arias JÁ. Whole-body vibration training and bone health in postmenopausal women: A systematic review and meta-analysis. Medicine. 2018;97(34):e11918. https://doi.org/10.1097/MD.0000000000011918
- Kazakia GJ, Tjong W, Nirody JA, Burghardt AJ, Carballido-Gamio J, Patsch JM, Link T, Feeley BT, Ma CB. The influence of disuse on bone microstructure and mechanics assessed by HR-pQCT. Bone. 2014;63:132-140. https://doi.org/10.1016/j.bone.2014.02.014
- Aparisi Gómez MP, Weidekamm C, Aparisi F, Bazzocchi A. Sports and Metabolic Bone Disease. Seminars in Musculoskeletal Radiology. 2020;24(3): 277-289. https://doi.org/10.1055/s-0040-1709483
- Herrmann D, Buck C, Sioen I, Kouride Y, Marild S, Molnár D, Mouratidou T, Pitsiladis Y, Russo P, Veidebaum T, Ahrens W; IDEFICS consortium. Impact of physical activity, sedentary behaviour and muscle strength on bone stiffness in 2-10-year-old children-cross-sectional results from the IDEFICS study. The International Journal of Behavioral Nutrition and Physical Activity. 2015;12:112. https://doi.org/10.1186/s12966-015-0273-6
- Nilsson M, Ohlsson C, Mellström D, Lorentzon M. Sport-specific association between exercise loading and the density, geometry, and microstructure of weight-bearing bone in young adult men. Osteoporosis International. 2013;24(5):1613-1622. https://doi.org/10.1007/s00198-012-2142-3
- Tong X, Chen X, Zhang S, Huang M, Shen X, Xu J, Zou J. The Effect of Exercise on the Prevention of Osteoporosis and Bone Angiogenesis. BioMed Research International. 2019;2019:8171897. https://doi.org/10.1155/2019/8171897
- Klein-Nulend J, Bacabac R, Bakker A. Mechanical loading and how it affects bone cells: The role of the osteocyte cytoskeleton in maintaining our skeleton. European Cells and Materials. 2012;24:278-291. https://doi.org/10.22203/ecm.v024a20
- Santos A, Bakker AD, Zandieh-Doulabi B, Semeins CM, Klein-Nulend J. Pulsating fluid flow modulates gene expression of proteins involved in Wnt signaling pathways in osteocytes. Journal of Orthopaedic Research. 2009; 27(10):1280-1287. https://doi.org/10.1002/jor.20888
- Yuan Y, Chen X, Zhang L, Wu J, Guo J, Zou D, Chen B, Sun Z, Shen C, Zou J. The roles of exercise in bone remodeling and in prevention and treatment of osteoporosis. Progress in Biophysics and Molecular Biology. 2016; 122(2):122-130. https://doi.org/10.1016/j.pbiomolbio.2015.11.005
- Guo Y, Wang Y, Liu Y, Liu Y, Zeng Q, Zhao Y, Zhang X, Zhang X. MicroRNA-218, microRNA-191*, microRNA-3070a and microRNA-33 are responsive to mechanical strain exerted on osteoblastic cells. Molecular Medicine Reports. 2015;12(2):3033-3038. https://doi.org/10.3892/mmr.2015.3705
- Zuo B, Zhu J, Li J, Wang C, Zhao X, Cai G, Li Z, Peng J, Wang P, Shen C, Huang Y, Xu J, Zhang X, Chen X. microRNA-103a Functions as a Mechanosensitive microRNA to Inhibit Bone Formation Through Targeting Runx2. Journal of Bone and Mineral Research. 2015;30(2):330-345. https://doi.org/10.1002/jbmr.2352
- Yehya N, Yerrapureddy A, Tobias J, Margulies SS. MicroRNA modulate alveolar epithelial response to cyclic stretch. BMC Genomics. 2012;13:154. https://doi.org/10.1186/1471-2164-13-154
- Nielson CM, Marshall LM, Adams AL, LeBlanc ES, Cawthon PM, Ensrud K, Stefanick ML, Barrett-Connor E, Orwoll ES; Osteoporotic Fractures in Men Study Research Group. BMI and fracture risk in older men: The osteoporotic fractures in men study (MrOS). Journal of Bone and Mineral Research. 2011;26(3):496-502. https://doi.org/10.1002/jbmr.235
- Głogowska-Szeląg J. Assessment of the relationship between bmd and body mass index bmi in women with postmenopausal osteoporosis. Wiadomosci Lekarskie. 2018;71(9):1714-1718.
- Evans AL, Paggiosi MA, Eastell R, Walsh JS. Bone Density, Microstructure and Strength in Obese and Normal Weight Men and Women in Younger and Older Adulthood. Journal of Bone and Mineral Research. 2015;30(5):920-928. https://doi.org/10.1002/jbmr.2407
- De Laet C, Kanis JA, Odén A, Johanson H, Johnell O, Delmas P, Eisman JA, Kroger H, Fujiwara S, Garnero P, McCloskey EV, Mellstrom D, Melton LJ 3rd, Meunier PJ, Pols HA, Reeve J, Silman A, Tenenhouse A. Body mass index as a predictor of fracture risk: A meta-analysis. Osteoporosis International. 2005;16(11):1330-1338. https://doi.org/10.1007/s00198-005-1863-y
- Lee JH, Kim JH, Hong AR, Kim SW, Shin CS. Optimal body mass index for minimizing the risk for osteoporosis and type 2 diabetes. The Korean Journal of Internal Medicine. 2020;35(6):1432-1442. https://doi.org/10.3904/kjim.2018.223
- Johansson H, Kanis JA, Odén A, McCloskey E, Chapurlat RD, Christiansen C, Cummings SR, Diez-Perez A, Eisman JA, Fujiwara S, Glüer CC, Goltzman D, Hans D, Khaw KT, Krieg MA, Kröger H, LaCroix AZ, Lau E, Leslie WD, Mellström D, Melton LJ 3rd, O’Neill TW, Pasco JA, Prior JC, Reid DM, Rivadeneira F, van Staa T, Yoshimura N, Zillikens MC. A Meta-Analysis of the Association of Fracture Risk and Body Mass Index in Women. Journal of Bone and Mineral Research. 2014;29(1):223-233. https://doi.org/10.1002/jbmr.2017
- Cosman F, de Beur SJ, LeBoff MS, Lewiecki EM, Tanner B, Randall S, Lindsay R; National Osteoporosis Foundation. Clinician’s Guide to Prevention and Treatment of Osteoporosis. Osteoporosis International. 2014;25(10): 2359-2381. https://doi.org/10.1007/s00198-014-2794-2
- Lv C, Liu S, Xia J, Xu L, Cheng Y, Li W, Zhang Y, Wang G, Wei W, Shi H, Huang S, Wang N, Hao L. The Mechanism of Dietary Protein Modulation of Bone Metabolism via Alterations in Members of the GH/IGF Axis. Current Protein and Peptide Science. 2019;20(2):115-124. https://doi.org/10.2174/1389203719666180514143828
- Schürch MA, Rizzoli R, Slosman D, Vadas L, Vergnaud P, Bonjour JP. Protein Supplements Increase Serum Insulin-Like Growth Factor-I Levels and Attenuate Proximal Femur Bone Loss in Patients with Recent Hip Fracture: A Randomized, Double-Blind, Placebo-Controlled Trial. Annals of Internal Medicine. 1998;128(10):801-809. https://doi.org/10.7326/0003-4819-128-10-199805150-00002
- Tucker KL. Vegetarian diets and bone status. The American Journal of Clinical Nutrition. 2014;100(suppl 1):329-35. https://doi.org/10.7326/0003-4819-128-10-199805150-00002
- Mehta N, Malootian A, Gilligan J. Calcitonin for Osteoporosis and Bone Pain. Current Pharmaceutical Design. 2003;9(32):2659-2676. https://doi.org/10.2174/1381612033453622
- Weaver CM. Potassium and Health. Advances in Nutrition. 2013;4(3):368-77. https://doi.org/10.3945/an.112.003533
- Arazi H, Samadpour M, Eghbali E. The effects of concurrent training (aerobic-resistance) and milk consumption on some markers of bone mineral density in women with osteoporosis. BMC Women’s Health. 2018;18(1):202. https://doi.org/10.1186/s12905-018-0694-x
- Komoroski M, Azad N, Camacho P. Disorders of bone and bone mineral metabolism. Handbook of Clinical Neurology. 2014;120:865-887. https://doi.org/10.1016/B978-0-7020-4087-0.00058-9
- Michigami T, Kawai M, Yamazaki M, Ozono K. Phosphate as a Signaling Molecule and Its Sensing Mechanism. Physiological Reviews. 2018;98(4): 2317-2348. https://doi.org/10.1152/physrev.00022.2017
- Frassetto L, Banerjee T, Powe N, Sebastian A. Acid Balance, Dietary Acid Load, and Bone Effects — A Controversial Subject. Nutrients. 2018;10(4):517. https://doi.org/10.3390/nu10040517
- Martin GR, Jain RK. Noninvasive measurement of interstitial pH profiles in normal and neoplastic tissue using fluorescence ratio imaging microscopy. Cancer Research. 1994;54(21):5670-5674.
- Lemann J, Bushinsky DA, Hamm LL. Bone buffering of acid and base in humans. American Journal of Physiology. Renal Physiology. 2003;285(5): 811-832. https://doi.org/10.1152/ajprenal.00115.2003
- Bai XC, Lu D, Liu AL, Zhang ZM, Li XM, Zou ZP, Zeng WS, Cheng BL, Luo SQ. Reactive oxygen species stimulates receptor activator of NF-kappaB ligand expression in osteoblast. The Journal of Biological Chemistry. 2005;280(17):17497-17506. https://doi.org/10.1074/jbc.M409332200
- Wachman A, Bernstein DanielS. Diet and osteoporosis. The Lancet. 1968; 7549(291):958-959. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(68)90908-2
- Barzel US. The skeleton as an ion exchange system: implications for the role of acid-base imbalance in the genesis of osteoporosis. Journal of Bone and Mineral Research. 1995;10(10):1431-1436. https://doi.org/10.1002/jbmr.5650101002
- Arnett TR. Acid — base regulation of bone metabolism. International Congress Series. 2007;1297(1):255-267. https://doi.org/10.1016/j.ics.2006.08.005
- Zhu K, Devine A, Prince RL. The effects of high potassium consumption on bone mineral density in a prospective cohort study of elderly postmenopausal women. Osteoporosis International. 2009;20(2):335-340. https://doi.org/10.1007/s00198-008-0666-3
- Alagawany M, Elnesr SS, Farag MR, Abd El-Hack ME, Khafaga AF, Taha AE, Tiwari R, Yatoo MI, Bhatt P, Khurana SK, Dhama K. Omega-3 and Omega-6 Fatty Acids in Poultry Nutrition: Effect on Production Performance and Health. Animals. 2019;9(8):573. https://doi.org/10.3390/ani9080573
- Kajarabille N, Díaz-Castro J, Hijano S, López-Frías M, López-Aliaga I, Ochoa JJ. A New Insight to Bone Turnover: Role of ω-3 Polyunsaturated Fatty Acids. The Scientific World Journal. 2013;2013:589641. https://doi.org/10.1155/2013/589641
- Almeida M, Han L, Martin-Millan M, O’Brien CA, Manolagas SC. Oxidative stress antagonizes Wnt signaling in osteoblast precursors by diverting beta-catenin from T cell factor — to forkhead box O-mediated transcription. The Journal of Biological Chemistry. 2007;282(37):27298-27305. https://doi.org/10.1074/jbc.M702811200
- Li M, Hasegawa T, Masuki H, Liu Z, Guo Y, Suzuki R, Yamamoto T, Freitas PHL, Amizuka N. Ultrastructural Assessment of Mineral Crystallization and Collagen Mineralization in Bone. Journal of Oral Biosciences. 2010; 52(2):94-99. https://doi.org/10.2330/joralbiosci.52.94
- Al Alawi AM, Majoni SW, Falhammar H. Magnesium and Human Health: Perspectives and Research Directions. International Journal of Endocrinology. 2018;2018:9041694. https://doi.org/10.1155/2018/9041694
- Castiglioni S, Cazzaniga A, Albisetti W, Maier JA. Magnesium and Osteoporosis: Current State of Knowledge and Future Research Directions. Nutrients. 2013;5(8):3022-3033. https://doi.org/10.3390/nu5083022
- Farsinejad-Marj M, Saneei P, Esmaillzadeh A. Dietary magnesium intake, bone mineral density and risk of fracture: A systematic review and meta-analysis. Osteoporosis International. 2016;27(4):1389-1399. https://doi.org/10.1007/s00198-015-3400-y
- Lowe NM, Fraser WD, Jackson MJ. Is there a potential therapeutic value of copper and zinc for osteoporosis? The Proceedings of the Nutrition Society. 2002;61(2):181-185. https://doi.org/10.1079/PNS2002154
- Palacios C. The Role of Nutrients in Bone Health, from A to Z. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 2006;46(8):621-628. https://doi.org/10.1080/10408390500466174
- Kim DE, Cho SH, Park HM, Chang YK. Relationship between bone mineral density and dietary intake of β-carotene, vitamin C, zinc and vegetables in postmenopausal Korean women: a cross-sectional study. The Journal of International Medical Research. 2016;44(5):1103-1114. https://doi.org/10.1177/0300060516662402
- Zheng J, Mao X, Ling J, He Q, Quan J. Low Serum Levels of Zinc, Copper, and Iron as Risk Factors for Osteoporosis: a Meta-analysis. Biological Trace Element Research. 2014;160(1):15-23. https://doi.org/10.1007/s12011-014-0031-7
- Prentice A. Diet, nutrition and the prevention of osteoporosis. Public Health Nutrition. 2004;7(1A):227-243. https://doi.org/10.1079/phn2003590
- Whitford GM. Intake and metabolism of fluoride. Advances in Dental Research. 1994;8(1):5-14. https://doi.org/10.1177/08959374940080011001
- ten Cate JM. Current concepts on the theories of the mechanism of action of fluoride. Acta Odontologica Scandinavica. 1999;57(6):325-329. https://doi.org/10.1080/000163599428562
- He F, Wu C, Li P, Li N, Zhang D, Zhu Q, Ren W, Peng Y. Functions and Signaling Pathways of Amino Acids in Intestinal Inflammation. BioMed Research International. 2018;2018:9171905. https://doi.org/10.1155/2018/9171905
- Mahdavi-Roshan M, Ebrahimi M, Ebrahimi A. Copper, magnesium, zinc and calcium status in osteopenic and osteoporotic post-menopausal women. Clinical Cases in Mineral and Bone Metabolism. 2015;12(1):18-21. https://doi.org/10.11138/ccmbm/2015.12.1.018
- Qu X, He Z, Qiao H, Zhai Z, Mao Z, Yu Z, Dai K. Serum copper levels are associated with bone mineral density and total fracture. Journal of Orthopaedic Translation. 2018;14:34-44. https://doi.org/10.1016/j.jot.2018.05.001
- Rodríguez JP, Ríos S, González M. Modulation of the proliferation and differentiation of human mesenchymal stem cells by copper. Journal of Cellular Biochemistry. 2002;85(1):92-100.
- Jugdaohsingh R. Silicon and bone health. The Journal of Nutrition, Health and Aging. 2007;11(2):99-110.
- Mao L, Xia L, Chang J, Liu J, Jiang L, Wu C, Fang B. The synergistic effects of Sr and Si bioactive ions on osteogenesis, osteoclastogenesis and angiogenesis for osteoporotic bone regeneration. Acta Biomaterialia. 2017; 61:217-232. https://doi.org/10.1016/j.actbio.2017.08.015
- Dong M, Jiao G, Liu H, Wu W, Li S, Wang Q, Xu D, Li X, Liu H, Chen Y. Biological Silicon Stimulates Collagen Type 1 and Osteocalcin Synthesis in Human Osteoblast-Like Cells Through the BMP-2/Smad/RUNX2 Signaling Pathway. Biological Trace Element Research. 2016;173(2):306-315. https://doi.org/10.1007/s12011-016-0686-3
- Christakos S, Dhawan P, Verstuyf A, Verlinden L, Carmeliet G. Vitamin D: Metabolism, Molecular Mechanism of Action, and Pleiotropic Effects. Physiological Reviews. 2016;96(1):365-408. https://doi.org/10.1152/physrev.00014.2015
- Drissi H, Pouliot A, Koolloos C, Stein JL, Lian JB, Stein GS, van Wijnen AJ. 1,25-(OH)2-Vitamin D3 Suppresses the Bone-Related Runx2/Cbfa1 Gene Promoter. Experimental Cell Research. 2002;274(2):323-333. https://doi.org/10.1006/excr.2002.5474
- Назаренко Г.И., Кишкун А.А. Клиническая оценка результатов лабораторных исследований. М.: Медицина; 2000.
- García-Gomáriz C, Blasco JM, Macián-Romero C, Guillem-Hernández E, Igual-Camacho C. Effect of 2 years of endurance and high-impact training on preventing osteoporosis in postmenopausal women: randomized clinical trial. Menopause. 2018;25(3):301-306. https://doi.org/10.1097/GME.0000000000001005
- Weaver CM, Alexander DD, Boushey CJ, Dawson-Hughes B, Lappe JM, LeBoff MS, Liu S, Looker AC, Wallace TC, Wang DD. Calcium plus vitamin D supplementation and risk of fractures: an updated meta-analysis from the National Osteoporosis Foundation. Osteoporosis International. 2016; 27(1):367-376. https://doi.org/10.1007/s00198-015-3386-5
- Liu C, Kuang X, Li K, Guo X, Deng Q, Li D. Effects of combined calcium and vitamin D supplementation on osteoporosis in postmenopausal women: a systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials. Food and Function. 2020;11(12):10817-10827. https://doi.org/10.1039/d0fo00787k
- Anagnostis P, Bosdou JK, Kenanidis E, Potoupnis M, Tsiridis E, Goulis DG. Vitamin D supplementation and fracture risk: Evidence for a U-shaped effect. Maturitas. 2020;141:63-70. https://doi.org/10.1016/j.maturitas.2020.06.016
- Burt LA, Billington EO, Rose MS, Raymond DA, Hanley DA, Boyd SK. Effect of High-Dose Vitamin D Supplementation on Volumetric Bone Density and Bone Strength: A Randomized Clinical Trial. JAMA. 2019;322(8): 736-745. https://doi.org/10.1001/jama.2019.11889
- Vacek TP, Kalani A, Voor MJ, Tyagi SC, Tyagi N. The role of homocysteine in bone remodeling. Clinical Chemistry and Laboratory Medicine. 2013; 51(3):579-590. https://doi.org/10.1515/cclm-2012-0605
- Yılmaz N, Eren E. Homocysteine oxidative stress and relation to bone mineral density in post-menopausal osteoporosis. Aging Clinical and Experimental Research. 2009;21(4-5):353-357. https://doi.org/10.1007/BF03324927
- Herrmann M, Umanskaya N, Wildemann B, Colaianni G, Widmann T, Zallone A, Herrmann W. Stimulation of osteoblast activity by homocysteine. Journal of Cellular and Molecular Medicine. 2008;12(4):1205-1210. https://doi.org/10.1111/j.1582-4934.2008.00104.x
- Herrmann M, Tami A, Wildemann B, Wolny M, Wagner A, Schorr H, Taban-Shomal O, Umanskaya N, Ross S, Garcia P, Hübner U, Herrmann W. Hyperhomocysteinemia induces a tissue specific accumulation of homocysteine in bone by collagen binding and adversely affects bone. Bone. 2009; 44(3):467-475. https://doi.org/10.1016/j.bone.2008.10.051
- Tyagi N, Kandel M, Munjal C, Qipshidze N, Vacek JC, Pushpakumar SB, Metreveli N, Tyagi SC. Homocysteine mediated decrease in bone blood flow and remodeling: Role of Folic Acid. Journal of Orthopaedic Research. 2011; 29(10):1511-1516. https://doi.org/10.1002/jor.21415
- Liu G, Nellaiappan K, Kagan HM. Irreversible inhibition of lysyl oxidase by homocysteine thiolactone and its selenium and oxygen analogues. Implications for homocystinuria. The Journal of Biological Chemistry. 1997;272(51): 32370-32377. https://doi.org/10.1074/jbc.272.51.32370
- Renis M, Lobreglio D, Congedo P, Montinaro MC, Muratore M, Lobreglio G. Assessment of Serum Vitamin B12 Levels and Other Metabolic Parameters in Subjects With Different Values of Bone Mineral Density. Journal of Clinical Medicine Research. 2018;10(3):233-239. https://doi.org/10.14740/jocmr3300w
- Zhang H, Tao X, Wu J. Association of homocysteine, vitamin B12, and folate with bone mineral density in postmenopausal women: A meta-analysis. Archives of Gynecology and Obstetrics. 2014;289(5):1003-1009. https://doi.org/10.1007/s00404-013-3075-6
- Walmsley AR, Batten MR, Lad U, Bulleid NJ. Intracellular Retention of Procollagen within the Endoplasmic Reticulum Is Mediated by Prolyl 4-Hydroxylase. Journal of Biological Chemistry. 1999;274(21):14884-14892. https://doi.org/10.1074/jbc.274.21.14884
- Marini JC, Cabral WA, Barnes AM, Chang W. Components of the Collagen Prolyl 3-Hydroxylation Complex are Crucial for Normal Bone Development. Cell Cycle. 2007;6(14):1675-1681. https://doi.org/10.4161/cc.6.14.4474
- Leboy PS, Vaias L, Uschmann B, Golub E, Adams SL, Pacifici M. Ascorbic acid induces alkaline phosphatase, type X collagen, and calcium deposition in cultured chick chondrocytes. The Journal of Biological Chemistry. 1989;264(29):17281-17286.
- Daniel JC, Pauli BU, Kuettner KE. Synthesis of cartilage matrix by mammalian chondrocytes in vitro. III. Effects of ascorbate. Journal of Cell Biology. 1984;99(6):1960-1969. https://doi.org/10.1083/jcb.99.6.1960
- Le Nihouannen D, Barralet JE, Fong JE, Komarova SV. Ascorbic acid accelerates osteoclast formation and death. Bone. 2010;46(5):1336-1343. https://doi.org/10.1016/j.bone.2009.11.021
- Malmir H, Shab-Bidar S, Djafarian K. Vitamin C intake in relation to bone mineral density and risk of hip fracture and osteoporosis: a systematic review and meta-analysis of observational studies. The British Journal of Nutrition. 2018;119(8):847-858. https://doi.org/10.1017/S0007114518000430
- Uchiyama S, Yamaguchi M. Inhibitory effect of β-cryptoxanthin on osteoclast-like cell formation in mouse marrow cultures. Biochemical Pharmacology. 2004;67(7):1297-1305. https://doi.org/10.1016/j.bcp.2003.11.011
- Regu GM, Kim H, Kim YJ, Paek JE, Lee G, Chang N, Kwon O. Association between Dietary Carotenoid Intake and Bone Mineral Density in Korean Adults Aged 30—75 Years Using Data from the Fourth and Fifth Korean National Health and Nutrition Examination Surveys (2008-2011). Nutrients. 2017;9(9):1025. https://doi.org/10.3390/nu9091025
- Wang F, Wang N, Gao Y, Zhou Z, Liu W, Pan C, Yin P, Yu X, Tang M. β-Carotene suppresses osteoclastogenesis and bone resorption by suppressing NF-κB signaling pathway. Life Sciences. 2017;174:15-20. https://doi.org/10.1016/j.lfs.2017.03.002
- Yamaguchi M, Uchiyama S. beta-Cryptoxanthin stimulates bone formation and inhibits bone resorption in tissue culture in vitro. Molecular and Cellular Biochemistry. 2004;258(1-2):137-144. https://doi.org/10.1023/b:mcbi.0000012848.50541.19
- Uchiyama S, Yamaguchi M. beta-Cryptoxanthin stimulates cell proliferation and transcriptional activity in osteoblastic MC3T3-E1 cells. International Journal of Molecular Medicine. 2005;15(4):675-681.
- Uchiyama S, Yamaguchi M. beta-cryptoxanthin stimulates cell differentiation and mineralization in osteoblastic MC3T3-E1 cells. Journal of Cellular Biochemistry. 2005;95(6):1224-1234. https://doi.org/10.1002/jcb.20496
- Lind T, Lind PM, Jacobson A, Hu L, Sundqvist A, Risteli J, Yebra-Rodriguez A, Larsson S, Rodriguez-Navarro A, Andersson G, Melhus H. High dietary intake of retinol leads to bone marrow hypoxia and diaphyseal endosteal mineralization in rats. Bone. 2011;48(3):496-506. https://doi.org/10.1016/j.bone.2010.10.169
- Marcucci G, Brandi ML. Rare causes of osteoporosis. Clinical Cases in Mineral and Bone Metabolism. 2015;12(2):151-156. https://doi.org/10.11138/ccmbm/2015.12.2.151
- Iwamoto J. Vitamin K2 Therapy for Postmenopausal Osteoporosis. Nutrients. 2014;6(5):1971-1980. https://doi.org/10.3390/nu6051971
- Yamaguchi M, Weitzmann MN. Vitamin K2 stimulates osteoblastogenesis and suppresses osteoclastogenesis by suppressing NF-κB activation. International Journal of Molecular Medicine. 2011;27(1):3-14. https://doi.org/10.3892/ijmm.2010.562
- Yamaguchi M, Ma ZJ. Inhibitory effect of menaquinone-7 (vitamin K2) on osteoclast-like cell formation and osteoclastic bone resorption in rat bone tissues in vitro. Molecular and Cellular Biochemistry. 2001;228(1-2):39-47. https://doi.org/10.1023/a:1013360308946
- Hicks J, Garcia-Godoy F, Flaitz C. Biological factors in dental caries: role of remineralization and fluoride in the dynamic process of demineralization and remineralization (part 3). Journal of Clinical Pediatric Dentistry. 2004; 28(3):203-214. https://doi.org/10.17796/jcpd.28.3.w0610427l746j34n
- Booth SL, Tucker KL, Chen H, Hannan MT, Gagnon DR, Cupples LA, Wilson PW, Ordovas J, Schaefer EJ, Dawson-Hughes B, Kiel DP. Dietary vitamin K intakes are associated with hip fracture but not with bone mineral density in elderly men and women. The American Journal of Clinical Nutrition. 2000;71(5):1201-1208. https://doi.org/10.1093/ajcn/71.5.1201
- Hara K, Akiyama Y, Nakamura T, Murota S, Morita I. The inhibitory effect of vitamin K2 (menatetrenone) on bone resorption may be related to its side chain. Bone. 1995;16(2):179-184. https://doi.org/10.1016/8756-3282(94)00027-w
- Hiruma Y, Nakahama K, Fujita H, Morita I. Vitamin K2 and geranylgeraniol, its side chain component, inhibited osteoclast formation in a different manner. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2004; 314(1):24-30. https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2003.12.051
- Koshihara Y, Hoshi K, Okawara R, Ishibashi H, Yamamoto S.Vitamin K stimulates osteoblastogenesis and inhibits osteoclastoge nesis in human bone marrow cell culture. The Journal of Endocrinology. 2003;176(3):339-348. https://doi.org/10.1677/joe.0.1760339
- Notoya K, Yoshida K, Shirakawa Y, Taketomi S, Tsuda M. Similarities and differences between the effects of ipriflavone and vitamin K on bone resorption and formation in vitro. Bone. 1995;16(4 suppl):349-353. https://doi.org/10.1016/8756-3282(94)00046-3
- Mott A, Bradley T, Wright K, Cockayne ES, Shearer MJ, Adamson J, Lanham-New SA, Torgerson DJ. Effect of vitamin K on bone mineral density and fractures in adults: an updated systematic review and meta-analysis of randomised controlled trials. Osteoporosis International. 2019;30(8):1543-1559. https://doi.org/10.1007/s00198-019-04949-0
- Raisz LG. Bone Resorption in Tissue Culture. Factors Influencing the Response to Parathyroid Hormone. Journal of Clinical Investigation. 1965; 44(1):103-116. https://doi.org/10.1172/JCI105117
- Kelly O, Cusack S, Jewell C, Cashman KD. The effect of polyunsaturated fatty acids, including conjugated linoleic acid, on calcium absorption and bone metabolism and composition in young growing rats. The British Journal of Nutrition. 2003;90(4):743-750. https://doi.org/10.1079/bjn2003951
- Casado-Díaz A, Santiago-Mora R, Dorado G, Quesada-Gómez JM. The omega-6 arachidonic fatty acid, but not the omega-3 fatty acids, inhibits osteoblastogenesis and induces adipogenesis of human mesenchymal stem cells: potential implication in osteoporosis. Osteoporosis International. 2013; 24(5):1647-1661. https://doi.org/10.1007/s00198-012-2138-z
- Coetzer H, Claassen N, van Papendorp DH, Kruger MC. Calcium transport by isolated brush border and basolateral membrane vesicles: role of essential fatty acid supplementation. Prostaglandins, Leukotrienes, and Essential Fatty Acids. 1994;50(5):257-266. https://doi.org/10.1016/0952-3278(94)90164-3
- Baggio B, Budakovic A, Nassuato MA, Vezzoli G, Manzato E, Luisetto G, Zaninotto M. Plasma phospholipid arachidonic acid content and calcium metabolism in idiopathic calcium nephrolithiasis. Kidney International. 2000;58(3):1278-1284. https://doi.org/10.1046/j.1523-1755.2000.00283.x
- Gonzalez-Esquerra R, Leeson S. Effects of menhaden oil and flaxseed in broiler diets on sensory quality and lipid composition of poultry meat. British Poultry Science. 2000;41(4):481-488. https://doi.org/10.1080/713654967
- Watkins BA, Lippman HE, Le Bouteiller L, Li Y, Seifert MF. Bioactive fatty acids: role in bone biology and bone cell function. Progress in Lipid Research. 2001;40(1-2):125-148. https://doi.org/10.1016/s0163-7827(00)00016-3
- Watkins BA, Li Y, Lippman HE, Feng S. Modulatory effect of omega-3 polyunsaturated fatty acids on osteoblast function and bone metabolism. Prostaglandins, Leukotrienes and Essential Fatty Acids. 2003;68(6):387-398. https://doi.org/10.1016/s0952-3278(03)00063-2
- Igarashi M, DeMar JC Jr, Ma K, Chang L, Bell JM, Rapoport SI. Docosahexaenoic acid synthesis from α-linolenic acid by rat brain is unaffected by dietary n-3 PUFA deprivation. Journal of Lipid Research. 2007;48(5):1150-1158. https://doi.org/10.1194/jlr.M600549-JLR200
- Demar JC Jr, Ma K, Chang L, Bell JM, Rapoport SI. α-Linolenic acid does not contribute appreciably to docosahexaenoic acid within brain phospholipids of adult rats fed a diet enriched in docosahexaenoic acid: α-LNA is not significantly converted to DHA in brain. Journal of Neurochemistry. 2005;94(4):1063-1076. https://doi.org/10.1111/j.1471-4159.2005.03258.x
- Методические рекомендации. МР 2.3.1.0253-21. Нормы физиологических потребностей в энергии и пищевых веществах для различных групп населения Российской Федерации (утв. Федеральной службой по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека 22 июля 2021 г.). Ссылка активна на 14.02.22. https://base.garant.ru/402816140
- EFSA Panel on Dietetic Products, Nutrition and Allergies (NDA). Scientific Opinion on Dietary Reference Values for vitamin C. EFSA Journal. 2013; 11(11):3418. https://doi.org/10.2903/j.efsa.2013.3418
- EFSA Panel on Dietetic Products, Nutrition and Allergies (NDA). Scientific Opinion on Dietary Reference Values for vitamin A. EFSA Journal. 2015; 13(3):4028. https://doi.org/10.2903/j.efsa.2015.4028
- Fischbach F, Dunning M. A Manual of Laboratory and Disgnostic Tests. Philadelphia: Wolters Kluwer Health/Lippincott Williams and Wilkins; 2009.
- Kish-Trier E, Schwarz EL, Pasquali M, Yuzyuk T. Quantitation of total fatty acids in plasma and serum by GC-NCI-MS. Clinical Mass Spectrometry. 2016;2:11-17. https://doi.org/10.1016/j.clinms.2016.12.001
- Российская ассоциация эндокринологов. Клинические рекомендации: дефицит витамина D. Ссылка активна на 16.03.22. https://rae-org.ru/system/files/documents/pdf/d_2021.pdf
- Единые санитарно-эпидемиологические и гигиенические требования к товарам, подлежащим санитарно-эпидемиологическому надзору (контролю). Утверждены Решением Комиссии таможенного союза от 28 мая 2010 года №299 (с изменениями на 22 февраля 2022 года). Ссылка активна на 16.03.22. https://www.eurasiancommission.org/ru/act/texnreg/depsanmer/sanmeri/Documents/%d1%80%d0%b0%d0%b7%d0%b4%d0%b5%d0%bb%201%20%d0%95%d0%a1%d0%a2.pdf
- Гальченко А.В., Ранджит Р. Витамин D и его статус среди вегетарианцев и веганов. Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2021;24(11):20-27. https://doi.org/10.29296/25877313-2021-11-04
- Wu ZJ, Zhao P, Liu B, Yuan ZC. Effect of Cigarette Smoking on Risk of Hip Fracture in Men: A Meta-Analysis of 14 Prospective Cohort Studies. PloS One. 2016;11(12):e0168990. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0168990
- Jones G, Scott FS. A Cross-Sectional Study of Smoking and Bone Mineral Density in Premenopausal Parous Women: Effect of Body Mass Index, Breastfeeding, and Sports Participation. Journal of Bone and Mineral Research. 1999;14(9):1628-1633. https://doi.org/10.1359/jbmr.1999.14.9.1628
- Trevisan C, Alessi A, Girotti G, Zanforlini BM, Bertocco A, Mazzochin M, Zoccarato F, Piovesan F, Dianin M, Giannini S, Manzato E, Sergi G. The Impact of Smoking on Bone Metabolism, Bone Mineral Density and Vertebral Fractures in Postmenopausal Women. Journal of Clinical Densitometry. 2020;23(3):381-389. https://doi.org/10.1016/j.jocd.2019.07.007
- Ugurlu U, Nayki U, Nayki C, Ulug P, Kulhan M, Yildirim Y. Assessment of smoking for low bone mineral density in postmenopausal Turkish women. Wiener Klinische Wochenschrift. 2016;128(3-4):114-119. https://doi.org/10.1007/s00508-015-0867-7
- Guo R, Wu L, Fu Q. Is There Causal Relationship of Smoking and Alcohol Consumption with Bone Mineral Density? A Mendelian Randomization Study. Calcified Tissue International. 2018;103(5):546-553. https://doi.org/10.1007/s00223-018-0452-y
- Lee JH, Hong AR, Kim JH, Kim KM, Koo BK, Shin CS, Kim SW. Amount of smoking, pulmonary function, and bone mineral density in middle-aged Korean men: KNHANES 2008-2011. Journal of Bone and Mineral Metabolism. 2018;36(1):95-102. https://doi.org/10.1007/s00774-017-0811-1
- Ghadimi R, Hosseini SR, Asefi S, Bijani A, Heidari B, Babaei M. Influence of smoking on bone mineral density in elderly men. International Journal of Preventive Medicine. 2018;9:111. https://doi.org/10.4103/ijpvm.IJPVM_234_16
- Melhus H, Michaëlsson K, Holmberg L, Wolk A, Ljunghall S. Smoking, Antioxidant Vitamins, and the Risk of Hip Fracture. Journal of Bone and Mineral Research. 1999;14(1):129-135. https://doi.org/10.1359/jbmr.1999.14.1.129
- Ehnert S, Aspera-Werz RH, Ihle C, Trost M, Zirn B, Flesch I, Schröter S, Relja B, Nussler AK. Smoking Dependent Alterations in Bone Formation and Inflammation Represent Major Risk Factors for Complications Following Total Joint Arthroplasty. Journal of Clinical Medicine. 2019;8(3):406. https://doi.org/10.3390/jcm8030406
- Chakkalakal DA. Alcohol-Induced Bone Loss and Deficient Bone Repair. Alcoholism: Clinical and Experimental Research. 2005;29(12):2077-2090. https://doi.org/10.1097/01.alc.0000192039.21305.55
- Mandrekar P, Catalano D, White B, Szabo G. Moderate Alcohol Intake in Humans Attenuates Monocyte Inflammatory Responses: Inhibition of Nuclear Regulatory Factor Kappa B and Induction of Interleukin 10. Alcoholism: Clinical and Experimental Research. 2006;30(1):135-139. https://doi.org/10.1111/j.1530-0277.2006.00012.x
- Choi CK, Kweon SS, Lee YH, Nam HS, Park KS, Ryu SY, Choi SW, Shin MH. Association between alcohol and bone mineral density in a Mendelian randomization study: The Dong-gu study. Journal of Bone and Mineral Metabolism. 2022;40(1):167-173. https://doi.org/10.1007/s00774-021-01275-6
- Cho Y, Choi S, Kim K, Lee G, Park SM. Association between alcohol consumption and bone mineral density in elderly Korean men and women. Archives of Osteoporosis. 2018;13(1):46. https://doi.org/10.1007/s11657-018-0462-4
- Jang HD, Hong JY, Han K, Lee JC, Shin BJ, Choi SW, Suh SW, Yang JH, Park SY, Bang C. Relationship between bone mineral density and alcohol intake: A nationwide health survey analysis of postmenopausal women. PLoS One. 2017;12(6):e0180132. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0180132
- Asoudeh F, Salari-Moghaddam A, Larijani B, Esmaillzadeh A. A systematic review and meta-analysis of prospective cohort studies on the association between alcohol intake and risk of fracture. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. 2021;1-15. Online ahead of print. https://doi.org/10.1080/10408398.2021.1888691
- Yi SS, Chung S-H, Kim PS. Sharing Pathological Mechanisms of Insomnia and Osteoporosis, and a New Perspective on Safe Drug Choice. Journal of Menopausal Medicine. 2018;24(3):143-149. https://doi.org/10.6118/jmm.2018.24.3.143
- Tong Q, Wu W, Wu Q, Yu Y, Lv X, Wang B, Wang G. Sleep onset latency is related with reduced bone mineral density in elderly people with insomnia: a retrospective study. Clinical Interventions in Aging. 2018;13:1525-1530. https://doi.org/10.2147/CIA.S161922