Вход
RU
+7 (495) 482-4118
+7 (495) 482-0604
  • Издательство «Медиа Сфера»
    а/я 54, Москва, Россия, 127238
  • info@mediasphera.ru

  • © 1998-2025
+7 (495) 482-43-29
RU
Все журналы
Журнал
Год
Год
Результаты поиска: 0

Мелкумян А.Р.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр колопроктологии им. А.Н. Рыжих» Минздрава России

Чистякова Д.А.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр колопроктологии им. А.Н. Рыжих» Минздрава России

Шафикова А.А.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр колопроктологии им. А.Н. Рыжих» Минздрава России

Спивак М.В.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр колопроктологии им. А.Н. Рыжих» Минздрава России

Ачкасов С.И.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр колопроктологии им. А.Н. Рыжих» Минздрава России

Антибиотикорезистентность облигатно-анаэробных бактерий и роль молекулярных методов в их изучении

Авторы:

Мелкумян А.Р., Чистякова Д.А., Шафикова А.А., Спивак М.В., Ачкасов С.И.

Подробнее об авторах

Журнал: Лабораторная служба. 2024;13(1): 60‑66

DOI: 10.17116/labs20241301160

Просмотров: 936

Загрузок: 3

Купить за 200₽
Связаться с автором
Оглавление

Как цитировать:

Мелкумян А.Р., Чистякова Д.А., Шафикова А.А., Спивак М.В., Ачкасов С.И. Антибиотикорезистентность облигатно-анаэробных бактерий и роль молекулярных методов в их изучении. Лабораторная служба. 2024;13(1):60‑66.
Melkumyan AR, Chistyakova DA, Shafikova AA, Spivak MV, Achkasov SI. Antibiotic resistance of obligate anaerobic bacteria and the role of molecular methods in their study. Laboratory Service. 2024;13(1):60‑66. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/labs20241301160

Подписка 2025-2 (Laboratory Service)
МСФ на ЯМ
Закрыть метаданные
Рекомендуем статьи по данной теме:
Ан­ти­би­оти­ко­ре­зис­тен­тность мик­ро­би­оты вер­хних ды­ха­тель­ных пу­тей у де­тей с но­вой ко­ро­на­ви­рус­ной ин­фек­ци­ей в г. Ря­за­ни. Про­фи­лак­ти­чес­кая ме­ди­ци­на. 2024;(3):45-51
Ин­фильтри­ру­ющие опу­холь лим­фо­ци­ты (TILs) при триж­ды не­га­тив­ном ра­ке мо­лоч­ной же­ле­зы. Ар­хив па­то­ло­гии. 2024;(3):5-11
Ра­ци­ональ­ность при­ема ан­ти­би­оти­ков на­се­ле­ни­ем Рос­сий­ской Фе­де­ра­ции. Про­фи­лак­ти­чес­кая ме­ди­ци­на. 2024;(6):14-21
Го­но­кок­ко­вая ин­фек­ция. Уро­вень бак­те­ри­аль­ной наг­руз­ки N. gono­rrhoeae и осо­бен­нос­ти кли­ни­чес­кой кар­ти­ны за­бо­ле­ва­ния. Кли­ни­чес­кая дер­ма­то­ло­гия и ве­не­ро­ло­гия. 2024;(3):283-289
Осо­бен­нос­ти при­ема ан­ти­бак­те­ри­аль­ных пре­па­ра­тов на­се­ле­ни­ем в Рес­пуб­ли­ке Бе­ла­русь. Про­фи­лак­ти­чес­кая ме­ди­ци­на. 2024;(10):15-22
KID-син­дром у маль­чи­ка 12 лет. Кли­ни­чес­кая дер­ма­то­ло­гия и ве­не­ро­ло­гия. 2024;(5):546-551
Эти­оло­ги­чес­кие осо­бен­нос­ти но­зо­ко­ми­аль­но­го си­ну­си­та. Вес­тник ото­ри­но­ла­рин­го­ло­гии. 2024;(5):35-42
Ин­тег­ра­ция NGS-тес­ти­ро­ва­ния со стан­дар­тны­ми ме­то­да­ми мо­ле­ку­ляр­но-ге­не­ти­чес­ких ис­сле­до­ва­ний в он­ко­ло­гии. Он­ко­ло­гия. Жур­нал им. П.А. Гер­це­на. 2024;(6):84-90
Три­хо­мо­ни­аз. Кон­цен­тра­ция ДНК воз­бу­ди­те­ля и связь с кли­ни­чес­ки­ми про­яв­ле­ни­ями за­бо­ле­ва­ния. Кли­ни­чес­кая дер­ма­то­ло­гия и ве­не­ро­ло­гия. 2024;(6):656-661

Анаэробные бактерии способны вызывать различные инфекционные осложнения, приводя к тяжелым исходам и смерти пациентов. Проблемы, связанные с микробиологической диагностикой облигатно-анаэробных бактерий и определением чувствительности к антибиотикам, ориентируют врачей на назначение препаратов широкого спектра действия при лечении анаэробных инфекций, что ведет к росту резистентности среди анаэробов во всем мире. В настоящей статье рассматриваются современные методы определения чувствительности анаэробов к антибактериальным препаратам. Авторы отмечают как приоритетное и перспективное направление развитие «быстрых» методов лабораторного тестирования с внедрение новых технологий и разработки тест-систем для детекции анаэробных бактерий и генов резистентности.

Ключевые слова:

анаэробные бактерии
гены резистентности
антибиотикорезистентность
ПЦР

Авторы:

Мелкумян А.Р.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр колопроктологии им. А.Н. Рыжих» Минздрава России

Чистякова Д.А.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр колопроктологии им. А.Н. Рыжих» Минздрава России

Шафикова А.А.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр колопроктологии им. А.Н. Рыжих» Минздрава России

Спивак М.В.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр колопроктологии им. А.Н. Рыжих» Минздрава России

Ачкасов С.И.

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр колопроктологии им. А.Н. Рыжих» Минздрава России

Дата поступления:

12.02.2024

Дата принятия в печать:

13.02.2024

Список литературы:

  1. Lassmann B, Gustafson DR, Wood CM, Rosenblatt JE. Reemergence of anaerobic bacteremia. Clinical Infectious Diseases. 2007;44(7):895-900. 
  2. Schuetz AN. Antimicrobial resistance and susceptibility testing of anaerobic bacteria. Clinical Infectious Diseases. 2014;59(5):698-705. 
  3. Nagy E, Urbán E, Nord CE; ESCMID Study Group on Antimicrobial Resistance in Anaerobic Bacteria. Antimicrobial susceptibility of Bacteroides fragilis group isolates in Europe: 20 years of experience. Clinical Microbiology and Infection. 2011;17(3):371-379. 
  4. Wright GD. The antibiotic resistome: the nexus of chemical and genetic diversity. Nature Reviews Microbiology. 2007;5(3):175-186. 
  5. Salyers AA, Gupta A, Wang Y. Human intestinal bacteria as reservoirs for antibiotic resistance genes. Trends in microbiology. 2004;12:9:412-416. 
  6. Boente RF, Ferreira LQ, Falcão LS, et al. Detection of resistance genes and susceptibility patterns in Bacteroides and Parabacteroides strains. Anaerobe. 2010;16(3):190-194. 
  7. Snydman DR, Cuchural GJ Jr, McDermott L, Gill M. Correlation of various in vitro testing methods with clinical outcomes in patients with Bacteroides fragilis group infections treated with cefoxitin: A retrospective analysis. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 1992;36(3):540-544. 
  8. Dubreuil L, Veloo AC, Sóki J; ESCMID Study Group for Anaerobic Infections (ESGAI). Correlation between antibiotic resistance and clinical outcome of anaerobic infections; mini-review. Anaerobe. 2021;72:102463.
  9. Chow AW, Guze LB. Bacteroidaceae bacteremia: clinical experience with 112 patients. Medicine. 1974;53(2):93-126. 
  10. McNamara MJ, Pasquale MD, Evans SR. Acute appendicitis and the use of intraperitoneal cultures. Surgery, Gynecology & Obstetrics. 1993;177(4):393-397. 
  11. Hopkins JA, Lee JC, Wilson SE. Susceptibility of intra-abdominal isolates at operation: A predictor of postoperative infection. The American Surgeon. 1993;59(12):791-796. 
  12. Mosdell DM, Morris DM, Voltura A, et al. Antibiotic treatment for surgical peritonitis. Annals of Surgery. 1991;214(5):543-549. 
  13. Dougherty SH, Saltzstein EC, Peacock JB, Mercer LC, Cano P. Perforated or gangrenous appendicitis treated with aminoglycosides: how do bacterial cultures influence management? Archives of Surgery. 1989;124(11):1280-1283.
  14. Fang H, Li X, Yan M-K, et al. Antimicrobial susceptibility of Bacteroides fragilis group organisms in Hong Kong, 2020-2021. Anaerobe. 2023;82:102756.
  15. Píriz S, Vadillo S, Quesada A, et al. Relationship between penicillin-binding protein patterns and β-lactamases in clinical isolates of Bacteroides fragilis with different susceptibility to β-lactam antibiotics. Journal of Medical Microbiology. 2004;53(3):213-221. 
  16. Ezeji JC, Sarikonda DK, Hopperton A, et al. Parabacteroides distasonis: intriguing aerotolerant gut anaerobe with emerging antimicrobial resistance and pathogenic and probiotic roles in human health. Gut Microbes. 2021;13(1):1922241.
  17. Sherwood JE, Fraser S, Citron DM, et al. Multi-drug resistant Bacteroides fragilis recovered from blood and severe leg wounds caused by an improvised explosive device (IED) in Afghanistan. Anaerobe. 2011;17(4):152-155. 
  18. Yekani M, Rezaee MA, Beheshtirouy S, et al. Carbapenem resistance in Bacteroides fragilis: A review of molecular mechanisms. Anaerobe. 2022;76:102606.
  19. Solomkin JS, Mazuski JE, Bradley JS, et al. Diagnosis and management of complicated intra-abdominal infection in adults and children: guidelines by the Surgical Infection Society and the Infectious Diseases Society of America. Surgical Infections. 2010;11(1):79-109. 
  20. Nagy E, Urbán E, Nord CE; ESCMID Study Group on Antimicrobial Resistance in Anaerobic Bacteria. Antimicrobial susceptibility of Bacteroides fragilis group isolates in Europe: 20 years of experience. Clin Microbiol Infect. 2011;17(3):371-379. 
  21. Gal M, Brazier JS. Metronidazole resistance in Bacteroides spp. carrying nim genes and the selection of slow-growing metronidazole-resistant mutants. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2004;54(1):109-116. 
  22. Snydman DR, Jacobus NV, McDermott LA, et al. Update on resistance of Bacteroides fragilis group and related species with special attention to carbapenems 2006-2009. Anaerobe. 2011;17(4):147-151. 
  23. Niestępski S, Harnisz M, Korzeniewska E, et al. The emergence of antimicrobial resistance in environmental strains of the Bacteroides fragilis group. Environment international. 2019;124:408-419. 
  24. Bahar H, Torun MM, Demirci M, Kocazeybek B. Antimicrobial resistance and β-lactamase production of clinical isolates of Prevotella and Porphyromonas species. Chemotherapy. 2005;51(1):9-14. 
  25. Könönen E, Conrads G, Nagy E. Bacteroides, Porphyromonas, Prevotella, Fusobacterium, and Other Anaerobic Gram‐Negative Rods. Manual of Clinical Microbiology. 2015:967-993. 
  26. Brook I, Wexler HM, Goldstein EJC. Antianaerobic antimicrobials: spectrum and susceptibility testing. Clinical Microbiology Reviews. 2013;26(3):526-546. 
  27. Buboltz JB, Murphy-Lavoie HM. Gas gangrene. StatPearls [Internet]. StatPearls Publishing; 2022.
  28. Murray R, Rosenthal S, Pfaller A. Medical Microbiology. 9th ed. Elsevier Health Sciences: Philadelphia, PA, USA; 2020.
  29. Tansuphasiri U, Matra W, Sangsuk L. Antimicrobial resistance among Clostridium perfringens isolated from various sources in Thailand. Southeast Asian J Trop Med Public Health. 2005 July; 36(4):954-961. 
  30. Banawas SS. Systematic review and meta-analysis on the frequency of antibiotic-resistant clostridium species in Saudi Arabia. Antibiotics. 2022;11(9):1165.
  31. Johansson Å, Greko C, Engström BE, Karlsson M. Antimicrobial susceptibility of Swedish, Norwegian and Danish isolates of Clostridium perfringens from poultry, and distribution of tetracycline resistance genes. Veterinary Microbiology. 2004;99(3-4):251-257. 
  32. Hecht DW. Anaerobes: antibiotic resistance, clinical significance, and the role of susceptibility testing. Anaerobe. 2006;12(3):115-121. 
  33. Camacho N, Espinoza C, Rodríguez C, Rodríguez E. Isolates of Clostridium perfringens recovered from Costa Rican patients with antibiotic-associated diarrhoea are mostly enterotoxin-negative and susceptible to first-choice antimicrobials. Journal of Medical Microbiology. 2008;57(3):343-347. 
  34. Akhi MT, Bidar Asl S, Pirzadeh T, et al. Antibiotic sensitivity of Clostridium perfringens isolated from faeces in Tabriz, Iran. Jundishapur Journal of Microbiology. 2015;8(7):e20863.
  35. Об утверждении санитарных правил и норм СанПиН 3.3686-21 «Санитарно-эпидемиологические требования по профилактике инфекционных болезней» от 28 января 2021. docs.cntd.ru [Электронный ресурс]. Ссылка активна на 14.11.21.  https://docs.cntd.ru/document/573660140
  36. Pike CM, Theriot CM. Mechanisms of colonization resistance against Clostridioides difficile. The Journal of Infectious Diseases. 2021;223(Suppl 3):S194-S200.
  37. Goudarzi M, Seyedjavadi SS, Goudarzi H, et al. Clostridium difficile infection: epidemiology, pathogenesis, risk factors, and therapeutic options. Scientifica. 2014;2014:916826.
  38. Evans CT, Safdar N. Current trends in the epidemiology and outcomes of Clostridium difficile infection. Clinical Infectious Diseases. 2015;60(Suppl 2):S66-S71. 
  39. Дмитриева Н.В., Клясова Г.А., Бакулина Н.В. и др. Распространенность Clostridium difficile-ассоциированной диареи у госпитализированных больных (результаты российского проспективного многоцентрового исследования). Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2017;19(4):268-274. 
  40. Шелыгин Ю.А., Алёшкин В.А., Сухина М.А. и др. Клинические рекомендации национальной Ассоциации специалистов по контролю инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи, и общероссийской общественной некоммерческой организации «Ассоциация колопроктологов России» по диагностике, лечению и профилактике Clostridium difficile-ассоциированной диареи (CDI). Колопроктология. 2018;3:7-23. 
  41. Hecht DW, Galang MA, Sambol SP, et al. In vitro activities of 15 antimicrobial agents against 110 toxigenic Clostridium difficile clinical isolates collected from 1983 to 2004. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2007;51(8):2716-2719.
  42. Spigaglia P, Barbanti F, Mastrantonio P; European Study Group on Clostridium difficile (ESGCD). Multidrug resistance in European Clostridium difficile clinical isolates. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. 2011;66(10):2227-2234.
  43. Peláez T, Alcalá L, Alonso R, et al. Reassessment of Clostridium difficile susceptibility to metronidazole and vancomycin. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2002;46(6):1647-1650.
  44. Tkhawkho L, Nitzan O, Pastukh N, et al. Antimicrobial susceptibility of Clostridium difficile isolates in Israel. Journal of global Antimicrobial Resistance. 2017;10:161-164. 
  45. Goldstein EJC, Citron DM, Merriam CV, et al. Comparative in vitro activities of XRP 2868, pristinamycin, quinupristin-dalfopristin, vancomycin, daptomycin, linezolid, clarithromycin, telithromycin, clindamycin, and ampicillin against anaerobic gram-positive species, actinomycetes, and lactobacilli. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2005;49(1):408-413. 
  46. Nagy E. Anaerobic infections: update on treatment considerations. Drugs. 2010;70:841-858. 
  47. Veloo ACM, Welling GW, Degener JE. Antimicrobial susceptibility of clinically relevant Gram-positive anaerobic cocci collected over a three-year period in the Netherlands. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2011;55(3):1199-1203.
  48. International Organization for Standardization (ISO). Clinical Laboratory Testing and In Vitro Diagnostic Test Systems-Susceptibility Testing of Infectious Agents and Evaluation of Performance of Antimicrobial Susceptibility Test Devices: Reference Method for Testing the In Vitro Activity of Antimicrobial Agents Against Rapidly Growing Aerobic Bacteria Involved in Infectious Diseases. ISO, 2006.
  49. Определение чувствительности микроорганизмов к антимикробным препаратам. Клинические рекомендации. Версия 2021-01. 222 с. 
  50. Кузьменков А.Ю., Виноградова А.Г. Мониторинг антибиотикорезистентности: обзор информационных ресурсов. Бюллетень сибирской медицины. 2020;19(2):163-170. 
  51. Ferreira L, Sánchez-Juanes F, Porras-Guerra I, et al. Microorganisms direct identification from blood culture by matrix-assisted laser desorption/ionization time-of-flight mass spectrometry. Clinical Microbiology and Infection. 2011;17(4):546-551. 
  52. Barnini S, Ghelardi E, Brucculeri V, Morici P, Lupetti A. Rapid and reliable identification of Gram-negative bacteria and Gram-positive cocci by deposition of bacteria harvested from blood cultures onto the MALDI-TOF plate. BMC Microbiology. 2015;15:124. 
  53. Florio W, Tavanti A, Ghelardi E, Lupetti A. MALDI-TOF MS applications to the detection of antifungal resistance: State of the art and future perspectives. Frontiers in Microbiology. 2018;9:2577.
  54. Припутневич Т.В., Ильина Е.Н., Кафарская Л.И. и др. Матрично-активированная лазерная десорбционная/ионизационная времяпролетная масс-спектрометрия (MALDI-TOF MS) в клинической микробиологии. М. 2020:60. 
  55. Мелкумян А.Р., Шиян О.В., Митичкин А.Е. и др. Применение масс-спектрометрического метода типирования высоковирулентных клонов стрептококка группы B в прогнозировании риска развития неонатальных инфекций. Акушерство и гинекология. Новости. Мнения. Обучение. 2020;8(1/27):98. 
  56. Nagy E, Becker S, Sóki J, Urbán E, Kostrzewa M. Differentiation of division I (cfiA-negative) and division II (cfiA-positive) Bacteroides fragilis strains by matrix-assisted laser desorption/ionization time-of-flight mass spectrometry. Journal of Medical Microbiology. 2011;60(11):1584-1590.
  57. Johansson Å, Nagy E, Sóki J; ESGAI (ESCMID Study Group on Anaerobic Infections). Detection of carbapenemase activities of Bacteroides fragilis strains with matrix-assisted laser desorption ionization — time of flight mass spectrometry (MALDI-TOF MS). Anaerobe. 2014;26:49-52. 

Закрыть метаданные

Связаться с автором
Email
Сообщение
Издательство "Медиа Сфера" не оказывает услуги по лечению, не дает рекомендации по обращению в медицинские учреждения и к конкретным специалистам, по назначению лекарственных средств и БАДов.

Подтверждение e-mail

На test@yandex.ru отправлено письмо со ссылкой для подтверждения e-mail. Перейдите по ссылке из письма, чтобы завершить регистрацию на сайте.

Подтверждение e-mail

Обратная связь
Если у вас возникли вопросы, жалобы или предложения, — воспользуйтесь формой обратной связи.
Email
Сообщение
Издательство "Медиа Сфера" не оказывает услуги по лечению, не дает рекомендации по обращению в медицинские учреждения и к конкретным специалистам, по назначению лекарственных средств и БАДов.
Подать заявку

Вы можете стать автором одного из наших журналов, отправьте заявку и мы рассмотрим ее в течении дня.

Имя
Телефон
E-mail
Сообщение
Вход
Регистрация
E-mail
Пароль
Забыли пароль?

Войдите на сайт, используя вашу учетную запись в одном из сервисов

Восстановление пароля
E-mail
Войти
Зарегистрироваться

Мы используем файлы cооkies для улучшения работы сайта. Оставаясь на нашем сайте, вы соглашаетесь с условиями использования файлов cооkies. Чтобы ознакомиться с нашими Положениями о конфиденциальности и об использовании файлов cookie, нажмите здесь.