Лабораторная диагностика нейросифилиса: пути оптимизации. Часть I. «Классические» методы исследования

Потекаев Н.Н.

ГБУЗ Москвы «Московский научно-практический Центр дерматовенерологии и косметологии Департамента здравоохранения г. Москвы»;
ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России

ORCID: 0000-0002-9578-5490

Дмитриев Г.А.

ГБУЗ Москвы «Московский научно-практический Центр дерматовенерологии и косметологии Департамента здравоохранения г. Москвы»;
ФБУН «Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского» Роспотребнадзора

ORCID: 0000-0002-4440-9516

Фриго Н.В.

ГБУЗ Москвы «Московский научно-практический Центр дерматовенерологии и косметологии Департамента здравоохранения г. Москвы»;
МБУ ИНО ФГБУ «Государственный научный центр Российской Федерации — Федеральный медицинский биофизический центр им. А.И. Бурназяна» Федерального медико-биологического агентства России

ORCID: 0000-0001-6231-971X

Китаева Н.В.

ГБУЗ Москвы «Московский научно-практический Центр дерматовенерологии и косметологии Департамента здравоохранения г. Москвы»

ORCID: 0000-0002-3620-2494

Доля О.В.

ГБУЗ Москвы «Московский научно-практический Центр дерматовенерологии и косметологии Департамента здравоохранения г. Москвы»;
ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов им. Патриса Лумумбы» Минобрнауки России

ORCID: 0000-0001-5019-4593

Махновская Т.С.

ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов им. Патриса Лумумбы» Минобрнауки России

ORCID: 0000-0002-1928-4029

Жданович А.В.

ЗАО «Эколаб»

ORCID: 0000-0001-5131-1501

Лабораторная диагностика нейросифилиса: пути оптимизации. Часть I. «Классические» методы исследования

Авторы:

Потекаев Н.Н., Дмитриев Г.А., Фриго Н.В., Китаева Н.В., Доля О.В., Махновская Т.С., Жданович А.В.

Подробнее об авторах

Журнал: Клиническая дерматология и венерология. 2023;22(6): 652‑660

DOI: 10.17116/klinderma202322061652

Загрузок: 5

Связаться с автором

Оглавление

Как цитировать:

Потекаев Н.Н., Дмитриев Г.А., Фриго Н.В., Китаева Н.В., Доля О.В., Махновская Т.С., Жданович А.В. Лабораторная диагностика нейросифилиса: пути оптимизации. Часть I. «Классические» методы исследования. Клиническая дерматология и венерология. 2023;22(6):652‑660.
Potekaev NN, Dmitriev GA, Frigo NV, Kitaeva NV, Dolya OV, Mahnovskaya TS, Zhdanovich AV. Laboratory diagnostics of neurosyphilis: ways of optimization. Part 1. «Classical» research methods. Russian Journal of Clinical Dermatology and Venereology. 2023;22(6):652‑660. (In Russ.)
https://doi.org/10.17116/klinderma202322061652

Подписка 2025 (Russian Journal of Clinical Dermatology and Venereology)

Использование инфографики авторами научных работ

Закрыть метаданные

Рекомендуем статьи по данной теме:

Лабораторная диагностика «ключевых» инфекций, передаваемых половым путем (обзор литературы). Часть I. Клиническая дерматология и венерология. 2023;(6):643-650

Анатомические предикторы классической невралгии тройничного нерва. Российский журнал боли. 2023;(4):5-10

Клинические особенности и современные диагностические критерии заболевания, ассоциированного с антителами к гликопротеину олигодендроцитарного миелина. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2023;(11):47-56

Потенциал МР-спектроскопии в диагностике когнитивного снижения у пожилых. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2023;(11):105-110

Собственный опыт применения препарата атезолизумаб у пациентов с распространенным мелкоклеточным раком легкого. Онкология. Журнал им. П.А. Герцена. 2023;(6):63-67

Активность ацетилхолинэстеразы крови и слюны при боковом амиотрофическом склерозе. Журнал неврологии и психиатрии им. С.С. Корсакова. 2024;(1):128-134

Диагностика ВИЧ-инфекции в Чеченской Республике: современное состояние и перспективы. Профилактическая медицина. 2024;(1):17-24

Эндобронхиальная гамартома. Онкология. Журнал им. П.А. Герцена. 2024;(1):59-62

Хирургия тератомы средостения, содержащей ткань поджелудочной железы. Хирургия. Журнал им. Н.И. Пирогова. 2024;(2):75-83

АКТУАЛЬНОСТЬ

В Российской Федерации в последние десятилетия, по официальным статистическим данным, на фоне снижения общей заболеваемости сифилисом отмечено увеличение удельного веса нейросифилиса (НС) — тяжелой формы инфекции, лабораторная диагностика которой представляет затруднения.

ЦЕЛЬ РАБОТЫ

Анализ современных данных литературы, касающихся использования классических подходов к ликвородиагностике НС.

РЕЗУЛЬТАТЫ

Отмечено, что традиционным в диагностике НС остается определение количества лейкоцитов и общего белка в цереброспинальной жидкости (ЦСЖ), хотя эти показатели и неспецифичны для НС. Использование прямых способов обнаружения T. pallidum в ЦСЖ на настоящий момент ограничено. Темнопольная микроскопия имеет низкую чувствительность, другие прямые методы трудоемки и малодоступны. Приемлемым прямым методом исследования является ПЦР, однако обнадеживающие результаты получены только с вариантом гнездной ПЦР. Приоритетными остаются результаты иммунологических тестов; при этом среди нетрепонемных тестов предпочтение отдается VDRL ввиду ее высокой специфичности. Среди трепонемных тестов приоритетными методами являются реакция иммунофлюоресценции с цельным ликвором (РИФ-ц) и реакция пассивной гемагглютинации (РПГА) с определением титра антител к T. pallidum. Значения титра РПГА более 1:320 или более 1:640 свидетельствуют об интратекальном синтезе антител к T. pallidum.

Ключевые слова:

нейросифилис

T.pallidum

диагностика

прямые тесты

нетрепонемные тесты

трепонемные тесты

Авторы:

Потекаев Н.Н.

ORCID: 0000-0002-9578-5490

Дмитриев Г.А.

ORCID: 0000-0002-4440-9516

Фриго Н.В.

ORCID: 0000-0001-6231-971X

Китаева Н.В.

ORCID: 0000-0002-3620-2494

Доля О.В.

ORCID: 0000-0001-5019-4593

Махновская Т.С.

ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов им. Патриса Лумумбы» Минобрнауки России

ORCID: 0000-0002-1928-4029

Жданович А.В.

ЗАО «Эколаб»

ORCID: 0000-0001-5131-1501

Дата поступления:

19.06.2023

Дата принятия в печать:

25.09.2023

Список литературы:

Tan X, Zhang J, Li J, Yue X, Gong X. The prevalence of asymptomatic neurosyphilis among HIV-negative serofast patients in China: a meta-analysis. PLoS ONE. 2020;15:e0241572. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0241572
Бакулев А.Л., Колоколов А.П., Суворов А.П. Об особенностях сифилиса нервной системы. Вестник дерматологии и венерологии. 2002;4:53-57.
Родиков М.В., Прохоренков В.И. Нейросифилис. От диагноза к лечению. Часть I. Эпидемиология, патогенез, клиника. Вестник дерматологии и венерологии. 2010;1:28-34.
Britton LJ, Jorner BE, Ewart AN. Neurosyphilis: not be forgotten. Intern med J. 2004;34(5):299-300.
Катунин Г.Л., Фриго Н.В., Ротанов С.В., Мелехина Л.Е., Китаева Н.В., Лесная И.Н. Анализ заболеваемости и качества лабораторной диагностики нейросифилиса в Российской Федерации. Вестник дерматологии и венерологии. 2011;3:18-26.
Блейхер В.М., Крук И.В. Сухотка спинная. Толковый словарь психиатрических терминов. МОДЭК. 1995.
Приказ Минздрава России от 15.11.12 №926н «Об утверждении Порядка оказания медицинской помощи взрослому населению при заболеваниях нервной системы».
Приказ Департамента здравоохранения г. Москвы от 11.08.17 №565 «О дальнейшем совершенствовании организации оказания специализированной медицинской помощи больным нейросифилисом».
Нейросифилис: клиника, диагностика, лечение и тактика ведения больных. Инструкция Департамента здравоохранения г. Москвы. М. 2012.
Marra CM, Maxwell CL, Tantalo LC, Sahi SK, Lukehart SA. Normalization of serum rapid plasma reagin titer predicts normalization of cerebrospinal fluid and clinical abnormalities after treatment of neurosyphilis. Clin Infect Dis. 2008;47(7):893-899.
Куляш Г.Ю. Диагностика нейросифилиса: проблемы трактовки результатов лабораторных исследований. Клиническая дерматология и венерология. 2011;9(4):6-14.
Hay PE, Clarke JR, Taylor-Robinson D, Goldmeier D. Detection of treponemal DNA in the CSF of patients with syphilis and HIV infection using the polymerase chain reaction. Genitourin Med. 1990;66(6):428-432.
García P, Bruno Grassi B, Fich F, Salvo A, Araya L, Fernando Abarzúa F, Soto J, Poggi H, Lagos M, Vásquez P, León EP, Pérez C, Wozniak A. Laboratory diagnosis of Treponema pallidum infection in patients with early syphilis and neurosyphilis through a PCR-based test. Rev Chilena Infectol. 2011;28(4):310-315.
Vanhaecke C, Grange P, Benhaddou N, Blanche P, Salmon D, Parize P, Lortholary O, Caumes E, Pelloux I, Epaulard O, Guinard J, Dupin N. Clinical and Biological Characteristics of 40 Patients With Neurosyphilis and Evaluation of Treponema pallidum Nested Polymerase Chain Reaction in Cerebrospinal Fluid Samples. Clin Infect Dis. 2016;63(9):1180-1186. https://doi.org/10.1093/cid/ciw499
Castro R, Águas MJ, Batista T, Araújo C, Mansinho K, Pereira F da L. Detection of Treponema pallidum Sp. pallidum DNA in cerebrospinal fluid (CSF) by two PCR techniques. J Clin Lab Anal. 2016;30(5):628-632.
Janier M, Unemo M, Dupin N, Tiplica GS, Potocnik M, Patel R. 2020 European Academy of Dermatology and Venereology. J Eur Acad Dermatol Venerol. 2021;35(3):574-588. https://doi.org/10.1111/jdv.16946
Marks M, Lawrence D, Kositz C, Mabey D. Diagnostic performance of PCR assays for the diagnosis of neurosyphilis: a systematic review. Sex Transm Infect. 2018;94:585-588.
Fraga D, Muller AL, Czykiel MS, De Armas Y, Wissmann G, Goldani LZ. Detection of Treponema pallidum by semi-nested PCR in the cerebrospinal fluid of asymptomatic HIV-infected patients with latent syphilis. Clin Lab. 2014;60(12):2051-2054.
Theel ES, Katz SS, Pillay A. Molecular and direct detection tests for Treponema pallidum subspecies pallidum: a review of the literature, 1964–2017. Clin Infect Dis. 2020;71(1):S4-S12. https://doi.org/10.1093/cid/ciaa176
Edmondson DG, Hu B, Norris SJ. Long-term in vitro culture of the syphilis spirochete Treponema pallidum subsp. pallidum. mBio. 2018;9(3):e01153-18 e01118.
Потекаев Н.Н., Фриго Н.В., Дмитриев Г.А., Китаева Н.В., Доля О.В., Гущин А.Е., Негашева Е.С., Марданлы С.Г., Махновская Т.С. Лабораторная диагностика сифилиса. Современные подходы и перспективы. Часть II. Непрямые (серологические) методы диагностики. Клиническая дерматология и венерология. 2022;3:271-280. https://doi.org/10.17116/klinderma202221031271
Потекаев Н.Н., Негашева Е.С., Савинов Г.В., Стуколова О.А., Карасева И.П., Судьина А.Е. Маркелов М.Л., Шипулин Г.А., Дмитриев Г.А., Фриго Н.В. Эффективность современных методов диагностики нейросифилиса. Возможности и перспективы применения VDRL и иммуночипов. Клиническая дерматология и венерология. 2016;6:11-21. https://doi.org/10.17116/klinderma201615611-21
Фриго Н.В., Потекаев Н.Н., Негашева Е.С. Известные и инновационные технологии диагностики нейросифилиса. Клиническая дерматология и венерология. 2017;5:73-82.
Клинические рекомендации. Сифилис. 2020. Ссылка активна на 12.05.23. https://cr.minzdrav.gov.ru/recomend/197_1
Centers for Disease Control and Prevention. Sexually Transmitted Infections Treatment Guidelines, 2021; Morbidity and Mortality Weekly Report Recommendations and Reports. Vol. 70 No. 4. July 23, 2021. Accessed May 12, 2023. https://www.cdc.gov/std/treatment-guidelines/syphilis.htm
Потекаев Н.Н., Фриго Н.В., Ротанов С.В. Диагностика сифилиса: от Вассермана до наших дней. Владимир. 2018.
Ликвородиагностика нейросифилиса: пособие для врачей. Екатеринбург. 2018.
Marra CM, Tantalo LC, Maxwell CL, Dougherty K. Wood B. Alternative cerebrospinal fluid tests to diagnose neurosyphilis in HIV-infected individuals. Neurology. 2004;63(1):85-88. https://doi.org/10.1212/01.wnl.0000131902.69113.34
Marra CM, Critchlow CW, Hook EW, Collier AC, Lukehart SA. Cerebrospinal-fluid treponemal antibodies in untreated early syphilis. Arch Neurol. 1995;52(1):68-72. https://doi.org/10.1001/archneur.1995.00540250072015
https://www.erbalachema.com/en/products-and-solutions/immunology/immunology-analyzer-mago-4/AccessedMay12,2023.
Потекаев Н.Н., Ротанов С.В., Фриго Н.В., Дмитриев Г.А., Доля О.В., Китаева Н.В., Круглова Л.С., Марданлы С.Г. Лабораторные методы диагностики сифилиса: учебное пособие. Орехово-Зуево. 2020.
Лабораторная диагностика сифилиса: методические рекомендации. СПб. 2009.
Приказ Министерства здравоохранения Российской Федерации от 25.07.03 №327 «Об утверждении протокола ведения больных «Сифилис». М. 2003.
Luger AF, Schmidt BL, Kaulich M. Significance of laboratory findings for the diagnosis of neurosyphilis. Int J STD AIDS. 2000;11(4):224-234.
Фриго Н.В., Ротанов С.В., Куляш Г.Ю., Сабаев М.И., Ерко Л.В., Шерстобитова Л.А. Реакция пассивной гемагглютинации для диагностики нейросифилиса. Вестн. дерматол. венерол. 2007;2:28-32.
Катунин Г.Л., Фриго Н.В., Ротанов С.В., Китаева Н.В., Нестеренко В.Г., Суслов А.П. Автоматизированный учет результатов исследования ликвора в реакции пассивной гемагглютинации. Вестн. дерматол. венерол. 2010;3:37-42.
Пронькина Е.В., Иванова Ю.А., Казанцев И.В., Эйрих А.Р., Подгурский Г.М. Возможности отдельных серологических тестов в диагностике нейросифилиса. Бюллетень медицинской науки. 2018;3(11):77-80.
Тимченко Г.Ф. Реакция пассивной гемагглютинации в серодиагностике сифилиса: Дис. ... д-ра мед. наук. М. 1991.
Марданлы С.Г., Туголуков А.Е., Старовойтова Т.А., Кирдановская О.И., Венгеров Ю.Ю. Видеоцифровая система на основе комплекса «Эксперт-Лаб» для автоматической регистрации результатов иммунного блоттинга при диагностике сифилиса. Вестник современной клинической медицины. 2013;6(4):62-67.
Marra CM, Maxwell CL, Dunaway SB, Sahi SK, Tantalo LC. Cerebrospinal fluid Treponema pallidum particle agglutination assay for neurosyphilis diagnosis. J Clin Microbiol. 2017;55:1865-1870. https://doi.org/10.1128/JCM.00310-17
Guarner J, Jost H, Pillay A, Sun Y, Cox D, Notenboom R, Workowski K. Evaluation of treponemal serum tests performed on cerebrospinal fluid for diagnosis of neurosyphilis. Am J Clin Pathol. 2015;143(4):479-484. https://doi.org/10.1309/AJCPWSL3G8RXMCQR
Park IU, Tran A, Pereira L, Fakile Y. Sensitivity and specificity of treponemal-specific tests for the diagnosis of syphilis. Clin Infect Dis. 2020;71:13-20. https://doi.org/10.1093/cid/ciaa349
Негашева Е.С. Новые подходы и алгоритмы в лабораторной диагностике нейросифилиса: Дис. ... канд. мед. наук. М. 2019.
Jaffe HW, Larsen SA, Peters M, Jove DF, Lopez B, Schroeter AL. Tests for treponemal antibody in CSF. Arch Intern Med. 1978;138:252-255. PMID: 343742. https://doi.org/10.1001/archinte.1978.03630260050016
Kingston M, French P, Higgins S, McQuillan O, Sukthankar A, Stott S, McBrien B, Tipple C, Turner A, Sullivan AK. UK national guidelines on the management of syphilis 2015. Int J STD AIDS. 2016;27(6):421-446. https://doi.org/10.1177/0956462415624059
Приказ Минздрава России от 26.03.01 №87 «О совершенствовании серологической диагностики сифилиса».
Luger A, Schmidt BL, Steyrer K, Schonwald E. Diagnosis of neurosyphilis by examination of the cerebrospinal fluid. Br J Vener Dis. 1981;57(4):232-237.
Gendrel D, Mefane C, Nardou M, Moreno JL, Engohan E, Moussavou A, Nguemby-Mbina C. Serological tests in cerebrospinal fluid for congenital syphilis in central Africa. Ann Trop Paediatr. 1992;12(3):273-276.
Kotnik V, Jordan K, Stopinsek S, Simcic S, Potocnik M. Intrathecal antitreponemal antibody synthesis determination using the Inno-Lia Syphilis Score. Acta Dermatoven Alp Panonica Adriat. 2007;16(4):135-114.
Huang X, Ying S, Luo L, Li L, Li D, Xie Y. Intrathecal immunoglobin synthesis and its role in patients with neurosyphilis. Front Public Health. 2022; 10:without pages. https://doi.org/10.3389/fpubh.2022.1008595
Behr W, Barnert J, Wienbeck M. Diagnostic problems in neurosyphilis. Dtsch Med Wochenschr. 1988;113(44):1718-1722.
Satyaputra F, Hendry S, Braddick M, Sivabalan P, Norton R. The Laboratory Diagnosis of Syphilis. J Clin Microbiol. 2021;59(10):e0010021. https://doi.org/10.1128/JCM.00100-21
Яковлев Н.А., Дубенский В.В. Нейросифилис (клиника, диагностика и лечение): учебное пособие. Тверь. 2004.
Лукьянов А.М. Нейросифилис: современные аспекты клиники, диагностики, терапии. Минск. 2009.
Frigo NV, Katunin GL, Rotanov SV, Levin OS. Up-to-date immunology methods for examination of the cerebrospinal fluid in patients suffering from neurosyphilis. Vestnik dermatologii i venerologii. 2011;6:49-57.
Катунин Г.Л. Сравнительная эффективность современных иммунологических методов исследования цереброспинальной жидкости для диагностики нейросифилиса: Дис. ... канд. мед. наук. М. 2012.
Сифилис (клиника, диагностика, лечение, профилактика): методические рекомендации. М. 2013.
Paraskevas GP, Kapaki E, Kararizou E, Mitsonis C, Sfagos C, Vassilopoulos D. Cerebrospinal fluid tau protein is increased in neurosyphilis: a discrimination from syphilis without nervous system involvement? Sex Transm Dis. 2007;34:220-223. https://doi.org/10.1097/01.olq.0000233738.23278.4e
Приказ Минздрава России от 30.07.01 №291 «Тактика взаимодействия врачей дерматовенерологов и других специалистов по диагностике и лечению больных ранним нейросифилисом».
Marra CM, Maxwell CL, Smith SL, Lukehart SA, Rompalo AM, Eaton M, Stoner BP, Augenbraun M, Barker DE, Corbett JJ, Zajackowski M, Raines C, Nerad J, Kee R, Barnett SH. Cerebrospinal fluid abnormalities in patients with syphilis: association with clinical and laboratory features. J Infect Dis. 2004;189(3):369-376. PMID: 14745693. https://doi.org/10.1086/381227
Дмитриев Г.А. Нейросифилис: проблемы и решения. М. 2016.
Merritt HH, et al. Neurosyphilis. New York. 1946.
Марра К.М. Нейросифилис. ИППП. 2004;4:7-11.
Заторская Н.Ф., Перламутров Е.Н., Лосева О.К., Рассовская Н.Е., Шульгина И.Г. Значение рентгенографии трубчатых костей в диагностике раннего врожденного сифилиса. Клиническая дерматология и венерология. 2009;6:37-41.

Закрыть метаданные